-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
<<<<<<< HEAD
K12 Schools
Biopharma
=======
K12 Schools
>>>>>>> dee1fd4 (fixed header link)

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Behavior
Budowanie gniazd jako wskaźnik zdrowia i dobrostanu myszy laboratoryjnych
Budowanie gniazd jako wskaźnik zdrowia i dobrostanu myszy laboratoryjnych
JoVE Journal
Behavior
This content is Free Access.
JoVE Journal Behavior
Nest Building as an Indicator of Health and Welfare in Laboratory Mice

Budowanie gniazd jako wskaźnik zdrowia i dobrostanu myszy laboratoryjnych

Full Text
27,990 Views
06:12 min
December 24, 2013

DOI: 10.3791/51012-v

Brianna N. Gaskill1, Alicia Z. Karas2, Joseph P. Garner3,4, Kathleen R. Pritchett-Corning1

1Research Models and Services,Charles River, 2Department of Clinical Sciences,Tufts University, 3Department of Comparative Medicine,Stanford University, 4Department of Psychiatry and Behavioral Sciences,Stanford University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Pokazujemy użyteczność budowania gniazd u myszy laboratoryjnych jako wskaźnik dobrostanu. Punktacja gniazdowa to wrażliwa technika, która jest zmieniana przez temperaturę, chorobę i agresję. Czas integracji z testem gniazdowym (TINT) to prosta ocena przy klatce, która może wykryć ból pooperacyjny.

Ogólnym celem poniższego eksperymentu jest obserwacja wpływu eksperymentalnego leczenia na zachowania związane z budowaniem gniazd u myszy. Osiąga się to poprzez zapewnienie myszom materiału do gniazdowania, aby zapewnić im podłoże do wykazywania zachowania. W drugim kroku zwierzęta mogą wchodzić w interakcje z materiałem, co może skutkować budową gniazda.

Następnie gniazdo jest oceniane w celu oceny jego jakości i złożoności. Uzyskuje się wyniki, które pokazują efekt różnych interwencji w oparciu o jakość i złożoność gniazda. Główną przewagą tej techniki nad istniejącymi metodami, takimi jak prosta obserwacja, jest to, że testy wykorzystują wysoce umotywowane naturalne zachowania u myszy, które można łatwo zaobserwować, po stronie klatki, gdy myszy są nieaktywne.

Chociaż ta metoda może zapewnić wgląd w podstawowe aspekty zachowania myszy. Może być potencjalnie stosowany w innych systemach, takich jak ocena dobrostanu myszy lub zaburzeń spowodowanych chorobą neurologiczną lub zakaźną. Ogólnie rzecz biorąc, osoby, które dopiero zaczynają korzystać z tej metody, będą miały trudności, ponieważ próba zdobycia gniazda bez szablonu przyniesie zmienne dane Na początek zważ od ośmiu do 10 gramów materiału do gniazdowania.

Papier marszczony jest zalecany w celu uzyskania najlepszych rezultatów budowy gniazda, ale można użyć innych materiałów. Następnie zidentyfikuj klatki, które mają zostać ocenione w dowolnym dogodnym momencie. W przypadku badacza lub personelu zajmującego się opieką nad zwierzętami umieść papierowy materiał zagnieżdżający w klatce.

Materiał można położyć na wierzchu lub wymieszać z pościelą, aby zbadać szerszy repertuar zachowań. Wróć następnego dnia, siedem do dziewięciu godzin po zapaleniu świateł, aby ocenić gniazda w czasie, gdy myszy będą mniej aktywne. Korzystając ze wskazówek dotyczących punktacji gniazda, oceń każde gniazdo w skali od zera do pięciu.

Najpierw ustal, czy materiał został zmanipulowany przez myszy. Obejmuje to przetwarzanie lub przemieszczanie po klatce. Jeśli materiał jest nietknięty, całe gniazdo otrzymuje wynik zerowy.

Następnie ustal, czy większość materiału gniazdowego została zebrana w centralnym miejscu gniazdowania. Jeśli nie ma wyraźnego miejsca na gniazdo, a materiał został zmanipulowany, klatka otrzymuje wynik jeden. Jeśli obecne jest scentralizowane miejsce gniazdowania, traktuj je tak, jakby było kwadratem.

Każdy z czterech boków kwadratu może otrzymać osobną ocenę od dwóch do pięciu. Cztery wyniki są następnie uśredniane dla wyniku gniazda w klatce. Gniazdo otrzymuje dwa punkty, gdy jest płaskie i nie ma płytkich ścian.

Jeśli gniazdo ma lekko miseczkowany kształt, w którym ściana jest mniejsza niż połowa wysokości kopuły, otrzymuje trójkę. Przyznawany jest wynik cztery. Gdy ściana jest o połowę mniejsza od wysokości kopuły, ściany są wyższe niż połowa wysokości kopuły, które mogą, ale nie muszą, w pełni zakryć gniazdo, otrzymuje się wynik pięć.

Alternatywnie, punktacja może nastąpić trzy do czterech dni po dostarczeniu nowego materiału. Gdy często osiągane są szczytowe wyniki na czas integracji z testem gniazda lub odcieniem, pokrój dwucalowy kwadrat bawełnianego materiału gniazdowego na ćwiartki. Aby uzyskać cztery jednocalowe kwadraty testowe.

Przetestuj zwierzęta w ciągu pierwszych trzech godzin cyklu świetlnego, aby wykorzystać zwiększone zachowania związane z budowaniem gniazd przed bezczynnością w ciągu dnia. Gdy będziesz gotowy, otwórz pokrywę klatki i umieść jeden kwadrat testowy po przeciwnej stronie klatki niż główne miejsce gniazda. Badany materiał powinien być umieszczany w tym samym miejscu za każdym razem, gdy przeprowadzane jest badanie.

Umieść kwadrat testowy w miejscu, w którym jest widoczny z zewnątrz klatki. Wróć do klatki po 10 minutach, aby dokonać obserwacji. Jeśli kwadrat testowy nie znajduje się w swoim pierwotnym położeniu, klatka jest cyna dodatnia.

Jeśli kwadrat testowy pozostanie w pierwotnym miejscu, może być konieczne przeprowadzenie dodatkowych obserwacji w klatce i dodatkowych obserwacji, aby ustalić, czy myszy wymagają pomocy weterynaryjnej. W tym przykładzie budowanie gniazd oceniano w klatkach trzymanych w trzech różnych temperaturach otoczenia, ponieważ temperatura zwiększała wynik gniazda, zmniejszony kształt gniazda może identyfikować grupy samców myszy o wysokim poziomie agresji, co może skutkować zranieniem. W ciągu pięciotygodniowego eksperymentu stwierdzono, że wynik gniazda ujemnie koreluje ze średnią liczbą rannych sześciu czarnych samców myszy C 57.

Dane te pokazują, że bolesny zabieg chirurgiczny może zmienić zachowanie związane z budowaniem gniazda. Liczba zwierząt z negatywnym odcieniem wzrosła o około 60% po bolesnej operacji, ale myszy wracają do dodatniego poziomu wyjściowego trzy dni po operacji Podczas próby tej procedury. Ważne jest, aby pamiętać, że chociaż wykazano, że metoda punktacji ma wysoką wiarygodność między oceniającymi i między oceniającymi, ta zmienność w punktacji może mieć wpływ na wyniki.

Dlatego upewnij się, że odpowiednio przeszkoliłeś i oceniłeś zmienność swoich wyników przed rozpoczęciem eksperymentu, postępując zgodnie z procedurą. Inne metody, takie jak bezpośrednia obserwacja lub testy behawioralne, mogą być wykonane w celu udzielenia odpowiedzi na dodatkowe pytania dotyczące zdrowia i dobrostanu lub deficytów behawioralnych myszy. Po obejrzeniu tego filmu powinieneś dobrze zrozumieć, jak podzielić gniazdo na ćwiartki, jak ocenić gniazdo i jak zarządzać czasem na integrację z testem zagnieżdżenia.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Słowa kluczowe: budowa gniazda wskaźnik dobrostanu myszy laboratoryjne ocena stresu wskaźniki fizjologiczne wskaźniki behawioralne ocena przy klatce stres termiczny agresja choroba ból

Related Videos

Węchowe testy behawioralne u dorosłej myszy

09:00

Węchowe testy behawioralne u dorosłej myszy

Related Videos

20.2K Views

Ocena kopania, budowy gniazd i gromadzenia u myszy

08:23

Ocena kopania, budowy gniazd i gromadzenia u myszy

Related Videos

33K Views

Fenotypowanie behawioralne modeli chorób myszy za pomocą Zintegrowanej Stacji Behawioralnej (INBEST)

12:18

Fenotypowanie behawioralne modeli chorób myszy za pomocą Zintegrowanej Stacji Behawioralnej (INBEST)

Related Videos

10.4K Views

Protokół trzymania myszy w wzbogaconym środowisku

09:30

Protokół trzymania myszy w wzbogaconym środowisku

Related Videos

18.9K Views

Schemat fenotypowania dla genetycznie zmodyfikowanych myszy używany do badania genów związanych z chorobami człowieka związanymi ze starzeniem się

09:37

Schemat fenotypowania dla genetycznie zmodyfikowanych myszy używany do badania genów związanych z chorobami człowieka związanymi ze starzeniem się

Related Videos

8.7K Views

Systematyczna ocena dobrostanu myszy przed zabiegami ze względu na znieczulenie ogólne

06:50

Systematyczna ocena dobrostanu myszy przed zabiegami ze względu na znieczulenie ogólne

Related Videos

12.8K Views

Określenie kompetencji rozrodczych poprzez potwierdzenie początku dojrzewania i przeprowadzenie testu płodności u myszy i szczurów

06:38

Określenie kompetencji rozrodczych poprzez potwierdzenie początku dojrzewania i przeprowadzenie testu płodności u myszy i szczurów

Related Videos

16.3K Views

Zachowanie związane z budowaniem gniazda jako wczesny wskaźnik deficytów behawioralnych u myszy

06:11

Zachowanie związane z budowaniem gniazda jako wczesny wskaźnik deficytów behawioralnych u myszy

Related Videos

21.1K Views

Ocena błędu oceny myszy za pomocą zadania kopania węchowego

12:10

Ocena błędu oceny myszy za pomocą zadania kopania węchowego

Related Videos

3.1K Views

Ograniczone ściółkowanie i gniazdowanie jako model przeciwności losu we wczesnym okresie życia u myszy

04:20

Ograniczone ściółkowanie i gniazdowanie jako model przeciwności losu we wczesnym okresie życia u myszy

Related Videos

2.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code