-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
In vivo (in vivo) Obrazowanie myszy reporterowych Cx3cr1gfp/gfp z op...
In vivo (in vivo) Obrazowanie myszy reporterowych Cx3cr1gfp/gfp z op...
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
In Vivo Imaging of Cx3cr1gfp/gfp Reporter Mice with Spectral-domain Optical Coherence Tomography and Scanning Laser Ophthalmoscopy

In vivo (in vivo) Obrazowanie myszy reporterowych Cx3cr1gfp/gfp z optyczną koherentną tomografią w domenie spektralnej i skaningową oftalmoskopią laserową

Full Text
10,910 Views
06:19 min
November 11, 2017

DOI: 10.3791/55984-v

Despina Kokona1, Joël Jovanovic1, Andreas Ebneter1, Martin S. Zinkernagel1

1Department of Ophthalmology and Department of Clinical Research,Bern University Hospital and University of Bern

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Ten protokół opisuje, jak techniki obrazowania o wysokiej rozdzielczości, takie jak optyczna koherentna tomografia w domenie spektralnej i skaningowa oftalmoskopia laserowa, mogą być wykorzystane u małych gryzoni, przy użyciu systemu platformy obrazowania okulistycznego, aby uzyskać informacje odpowiednio o grubości siatkówki i rozmieszczeniu komórek mikrogleju.

Transcript

Ogólnym celem tej procedury jest wykorzystanie spektralnej optycznej koherentnej tomografii koherentnej i skaningowej oftalmoskopii laserowej w celu uzyskania informacji na temat odpowiednio grubości siatkówki i rozmieszczenia komórek mikrogleju. Metoda ta może pomóc odpowiedzieć na kluczowe pytania w dziedzinie okulistyki eksperymentalnej dotyczące korelacji między nieprawidłowościami siatkówki a akumulacją komórek mikrogleju. Główną zaletą tej techniki jest to, że informacje te można uzyskać w czasie rzeczywistym w sposób nieinwazyjny.

Po potwierdzeniu braku odpowiedzi na wymaz z rogówki, umieść mysz w pozycji leżącej po lewej stronie platformy, z prawą orbitą skierowaną w stronę soczewki. Nałóż kroplę hydroksypropylometylocelulozy w sztywnej, przepuszczającej gaz soczewce kontaktowej plus cztery dioptrie na prawe oko i uruchom moduł akwizycji. W przypadku skanów B wybierz opcję Podczerwień i optyczna tomografia koherentna W obszarze Application and Structure (Zastosowanie) i structure (Zastosowanie) wybierz opcję Retina (Siatkówka) i za pomocą mikromanipulatora przesuń soczewkę w kierunku oka myszy.

Przed ustawieniem ostrości na siatkówce upewnij się, że wybrano wskaźnik Oculus dexter, a następnie użyj pokrętła ostrości, aby powiększyć siatkówkę, aż duże naczynia będą wyraźnie widoczne na obrazie dna oka po lewej stronie ekranu monitora. Użyj mikromanipulatora, aby dostosować położenie kamery, w razie potrzeby obracając pokrętło czułości, aby odpowiednio zmniejszyć lub zwiększyć jasność obrazu dna oka. Wybierz opcję Line Scan (Skanowanie liniowe) z menu Pattern (Wzór) i użyj mikromanipulatora, aby przesunąć skan B między górnym i dolnym rogiem okna skanowania optycznej tomografii koherentnej w dziedzinie spektralnej (SD-OCT).

Ustaw wartość Automatycznie w czasie rzeczywistym na co najmniej dziewięć, aby uzyskać wysoką jakość obrazu, a następnie kliknij przycisk Pobierz. Po uzyskaniu wszystkich obrazów przenieś soczewkę kontaktową z oka do świeżo zbilansowanego roztworu soli i nawodnij rogówkę świeżą kroplą hydroksypropylometylocelulozy. Po zobrazowaniu lewego oka obróć standardową optykę o 30 stopni w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara, aby ją wyjąć i zamontuj soczewkę 55 stopni, aby przeprowadzić drugą rundę obrazowania.

Aby ocenić autofluorescencję, bez poruszania myszką, wybierz Podczerwień na panelu sterowania i skup się na dużych naczyniach siatkówki. Wybierz automatyczne obrazowanie fluorescencyjne i w razie potrzeby użyj pokrętła czułości, aby dostosować jasność obrazu. Naciśnij raz pokrętło czułości i ustaw automatyczną wartość czasu rzeczywistego na co najmniej 67.

Po osiągnięciu automatycznej wartości w czasie rzeczywistym uzyskaj obraz i naciśnij pokrętło czułości po raz drugi, aby zatrzymać uśrednianie. Dostosuj ostrość, aby uwidocznić różne warstwy siatkówki, zgodnie z eksperymentalnie odpowiednimi potrzebami. Po uzyskaniu wszystkich obrazów, przenieś się do szerokokątnej soczewki 102 stopni na optykę i wyobraź sobie automatyczną fluorescencję w każdym oku, jak właśnie pokazano.

Aby ręcznie zmierzyć grubość siatkówki na każdym obrazie, kliknij dwukrotnie nazwę pierwszego zwierzęcia doświadczalnego, aby otworzyć skan OCT. Otwórz skan B uzyskany za pomocą soczewki 30 lub 55 stopni i wybierz profil grubości. Kliknij ikonę Edytuj segmentacje warstw.

Oprogramowanie automatycznie zidentyfikuje wewnętrzne membrany ograniczające i podstawowe. Aby ręcznie skorygować położenie membran, wybierz warstwę, która ma zostać zmodyfikowana, a także opcję czerwonego kółka. Przytrzymując wciśnięty przycisk myszy, przesuń okrąg, aby zmodyfikować linię, aż odpowiednia warstwa zostanie prawidłowo umieszczona, a następnie kliknij Zapisz i zamknij, aby wyjść z okna.

W opcji Warstwa wybierz Siatkówka i kliknij inną pozycję na diagramie, aby wyświetlić grubość siatkówki dla wybranej pozycji. Następnie zmierz grubość siatkówki i żądaną odległość od głowy nerwu wzrokowego i wyeksportuj wartości do arkusza kalkulacyjnego. W tych reprezentatywnych pojedynczych skanach SD-OCT od myszy homozygotycznej pod względem ekspresji gfp pod promotorem Cx3cr1, architektura siatkówki jest wyraźnie uwidoczniona zarówno na obrazach soczewek 30 stopni, jak i 55 stopni.

Jednak wysoki współczynnik odbicia naczyniówki obserwuje się w skanach uzyskanych za pomocą soczewki 30 stopni. Po SD-OCT skaningowa oftalmoskopia laserowa umożliwia wizualizację poszczególnych komórek mikrogleju gfp dodatnich w siatkówce za pomocą soczewki 55 stopni lub 102 stopni z większym pokryciem dna oka uzyskanym za pomocą soczewki 102 stopni. W skanach SD-OCT, po ręcznej korekcji wewnętrznych granic granicznych i błony podstawowej siatkówki, zwykle obserwuje się dobrą korelację pomiaru grubości siatkówki między soczewkami 30 i 55 stopni, gdy mierzona jest ta sama odległość od głowy nerwu wzrokowego.

Po opanowaniu tej techniki można ukończyć w mniej niż pięćdziesiąt minut, jeśli zostanie wykonana prawidłowo. Po jej opracowaniu technika ta utorowała drogę naukowcom z dziedziny okulistyki eksperymentalnej do zbadania patologii siatkówki u małych gryzoni in vivo.

Explore More Videos

Słowa kluczowe: obrazowanie in vivo myszy reporterowe Cx3cr1gfp/gfp optyczna koherentna tomografia w domenie spektralnej skaningowa oftalmoskopia laserowa grubość siatkówki rozmieszczenie komórek mikrogleju nieinwazyjna soczewki kontaktowe rogówki obrazowanie w podczerwieni obrazowanie autofluorescencyjne

Related Videos

Obrazowanie optycznej koherentnej tomografii do oceny zapalenia błony naczyniowej oka w modelu mysim

03:12

Obrazowanie optycznej koherentnej tomografii do oceny zapalenia błony naczyniowej oka w modelu mysim

Related Videos

492 Views

Obrazowanie in vivo mikrogleju siatkówki w mysim modelu jaskry

04:55

Obrazowanie in vivo mikrogleju siatkówki w mysim modelu jaskry

Related Videos

361 Views

Obrazowanie in vivo siatkówki myszy za pomocą optycznej koherentnej tomografii

04:08

Obrazowanie in vivo siatkówki myszy za pomocą optycznej koherentnej tomografii

Related Videos

391 Views

In vivo (in vivo)Dynamika aktywacji mikrogleju siatkówki podczas neurodegeneracji: konfokalne obrazowanie oftalmoskopowe i morfometria komórkowa w jaskrze myszy

12:48

In vivo (in vivo)Dynamika aktywacji mikrogleju siatkówki podczas neurodegeneracji: konfokalne obrazowanie oftalmoskopowe i morfometria komórkowa w jaskrze myszy

Related Videos

10.8K Views

Optyczna tomografia koherentna: obrazowanie komórek zwojowych siatkówki myszy in vivo

08:17

Optyczna tomografia koherentna: obrazowanie komórek zwojowych siatkówki myszy in vivo

Related Videos

19.7K Views

In vivo (in vivo) Multimodalne obrazowanie i analiza mysiego modelu neowaskularyzacji naczyniówki indukowanej laserem

09:56

In vivo (in vivo) Multimodalne obrazowanie i analiza mysiego modelu neowaskularyzacji naczyniówki indukowanej laserem

Related Videos

9.5K Views

Multimodalne obrazowanie wolumetryczne siatkówki za pomocą skośnej skaningowej oftalmoskopii laserowej (oSLO) i optycznej koherentnej tomografii (OCT)

12:22

Multimodalne obrazowanie wolumetryczne siatkówki za pomocą skośnej skaningowej oftalmoskopii laserowej (oSLO) i optycznej koherentnej tomografii (OCT)

Related Videos

8.7K Views

Wykorzystanie optycznej tomografii koherentnej i odpowiedzi optokinetycznej jako strukturalnych i funkcjonalnych odczytów układu wzrokowego u myszy i szczurów

07:08

Wykorzystanie optycznej tomografii koherentnej i odpowiedzi optokinetycznej jako strukturalnych i funkcjonalnych odczytów układu wzrokowego u myszy i szczurów

Related Videos

10.3K Views

Strukturalne oceny in vivo chorób oczu w modelach gryzoni przy użyciu optycznej koherentnej tomografii

07:44

Strukturalne oceny in vivo chorób oczu w modelach gryzoni przy użyciu optycznej koherentnej tomografii

Related Videos

3.2K Views

Zastosowanie optycznej koherentnej tomografii do mysiego modelu retinopatii

08:22

Zastosowanie optycznej koherentnej tomografii do mysiego modelu retinopatii

Related Videos

4.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code