RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/63505-v
Lyubomyr Lytvynchuk*1,2, Zbynek Stranak*3, Hana Studenovska4, David Rais4, Štěpán Popelka4, Lucie Tichotová5,6, Yaroslav Nemesh5,6, Anastasiia Kolesnikova5,6, Ruslan Nyshchuk5,6, Anna Brymová5,6, Zdeňka Ellederová5, Jana Čížková5, Jana Juhásová5, Štefan Juhás5, Pavla Jendelová7, Richárd Nagymihály8, Igor Kozak9, Slaven Erceg10, Susanne Binder11, Brigitte Müller1, Knut Stieger1, Jan Motlik5, Goran Petrovski*8, Taras Ardan*5
1Eye Clinic, Department of Ophthalmology,University Hospital Giessen and Marburg GmbH, 2Karl Landsteiner Institute for Retinal Research and Imaging, 3Department of Ophthalmology, University Hospital Kralovske Vinohrady and Third Faculty of Medicine,Charles University in Prague, 4Institute of Macromolecular Chemistry,Czech Academy of Sciences, 5Institute of Animal Physiology and Genetics,Czech Academy of Sciences, 6Department of Cell Biology, Faculty of Science,Charles University, 7Institute of Experimental Medicine,Czech Academy of Sciences, 8Center for Eye Research, Department of Ophthalmology, Oslo University Hospital and Institute of Clinical Medicine, Faculty of Medicine,University of Oslo, 9Moorfields Eye Hospitals UAE, 10Stem Cell Therapies in Neurodegenerative Diseases Lab,Research Center “Principe Felipe”, 11Eye Center Donaustadt, Department of Ophthalmology,Sigmund Freud University
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Implantacja podsiatkówkowa pigmentowego nabłonka siatkówki (RPE) jest jednym z najbardziej obiecujących podejść do leczenia chorób zwyrodnieniowych siatkówki. Jednak wyniki badań przedklinicznych na modelach zwierzęcych z dużymi oczami pozostają wyzwaniem. W niniejszym raporcie przedstawiono wytyczne dotyczące podsiatkówkowego przeszczepiania RPE na nośniku komórkowym do świnek miniaturowych.
Zwyrodnienie plamki żółtej związane z wiekiem jest uważane za jedną z głównych przyczyn utraty widzenia centralnego. Postępująca degeneracja i dysfunkcja warstwy RPE jest cechą charakterystyczną wczesnej postaci AMD. Pomimo postępów w leczeniu chorób siatkówki, opracowanie skutecznej metody leczenia pozostaje wyzwaniem.
Jedną z najbardziej obiecujących koncepcji leczenia jest zastąpienie RPE komórkami RPE hodowanymi in vitro o różnym pochodzeniu. RPE są zwykle dostarczane do przestrzeni podsiatkówkowej w postaci zawiesiny komórkowej, samonośnego arkusza komórkowego lub monowarstwy komórkowej wspartej na sztucznym nośniku. Główną zaletą dwóch późnych metod jest to, że po implantacji komórki znajdują się w zróżnicowanym stanie jednowarstwowym w przestrzeni podsiatkówkowej.
Badania przedkliniczne na zwierzętach przeprowadzone in vivo mają na celu ustalenie powtarzalnej i bezpiecznej procedury chirurgicznej na modelu zwierzęcym dużego oka w celu uzyskania danych, które mogą być przydatne i potencjalnie możliwe do zastosowania u ludzi. Dzięki temu protokołowi mamy na celu przedstawienie zasad techniki chirurgicznej podsiatkówkowej stosowanej do implantacji in vivo podsiatkówkowej nośnika komórkowego w dużym modelu zwierzęcym, który może być wykorzystany do badań eksperymentalnych in vivo z implantacją różnych typów komórek i nośników komórkowych. W tym filmie chcielibyśmy przedstawić krok po kroku protokół chirurgicznego zabiegu implantacji podsiatkówkowej nośnika komórkowego w oczach świnki Libechov mini.
Włóż wziernik pokrywki. Otwórz spojówkę po stronie nosa dwa do trzech milimetrów od rąbka, aby odsłonić twardówkę do sklerotomii. Włóż trzy trokary o rozmiarze 25 trzy milimetry od rąbka w obszarze pars plana.
Utrzymuj rogówkę mokrą lub pokryj ją metylocelulozą podczas całej operacji, aby zapobiec osmotycznemu obrzękowi rogówki. Usuń środkową część ciała szklistego za pomocą standardowego podejścia do witrektomii pars plana z trzema portami. Ostrożnie usuń ciało szkliste za soczewką w obszarze przyszłej dużej sklerotomii.
Użyć iniekcji acetonidu triamcynolonu do ciała szklistego w celu zabarwienia tylnego ciała szklistego, które zwykle przylega do siatkówki, w celu wykonania kontrolowanego odwarstwienia tylnego ciała szklistego. Następnie powoli wykonaj podsiatkówkowe wstrzyknięcie BSS za pomocą kaniuli o rozmiarze 41 bardziej centralnie, unikając tworzenia się pęcherzyka w kierunku obwodu. Zmniejsz ustawienie ciśnienia wewnątrzgałkowego w systemie irygacyjnym do 15 milimetrów słupa rtęci podczas wstrzyknięcia podsiatkówkowego, aby zapobiec przejściowej niedrożności naczyń siatkówki.
Wykonaj liniową dużą endodiatermię siatkówki za pomocą sondy endodiatermicznej o rozmiarze 27 w pobliżu podstawy pęcherzyka nosowego. Następnie wykonaj trzymilimetrową retinotomię za pomocą ostrza MVR o rozmiarze 25 lub pionowych nożyczek z podwyższonym ciśnieniem wewnątrzgałkowym, ustawiając system irygacyjny na do 60 milimetrów słupa rtęci przez trzy do pięciu minut. Następnie wykonaj sklerotomię o średnicy trzech milimetrów trzy milimetry od rąbka za pomocą noża fakologicznego o średnicy 2,75 milimetra.
Zwróć uwagę na egzodiatermię możliwego krwawienia naczyń twardówkowych i ciała rzęskowego wewnątrz dużej sklerotomii. Usunąć wypadający ciałko szkliste po stronie dużej sklerotomii za pomocą wirektora. Następnie delikatnie wprowadzić wstrzykiwacz dominującą ręką do jamy ciała szklistego przez dużą sklerotomię.
Wszczepić nośnik komórkowy przez retinotomię do przestrzeni podsiatkówkowej. Wycofać wstrzykiwacz z oka i zamknąć dużą sklerotomię za pomocą 8-0 Szew Vicryl, aby uniknąć powikłań związanych z hipotonią wewnątrzgałkową. Wykonaj pełną wymianę płyn-powietrze za pomocą kaniuli z silikonową końcówką.
Następnie wstrzyknij olej silikonowy do jamy ciała szklistego, aż ciśnienie wewnątrzgałkowe będzie normalne. Pod koniec operacji usuń trokary i zamknij trzy sklerotomia i spojówkę za pomocą 8-0 Szwy Vicryl. Więcej informacji można znaleźć w rozdziale Zabieg chirurgiczny.
Oczyść okolicę oka. Użyj kleszczy i nożyczek, aby usunąć górną i dolną powiekę. Zdejmij trzecią powiekę.
Przeciąć spojówkę. Przetnij mięśnie oczu nożyczkami. Kontynuuj cięcie okrężnie od powierzchni na głębokość.
Przeciąć nerw wzrokowy. Usuń oko z orbity. Przejrzystość jamy ciała szklistego wypełnionej olejem silikonowym pozwala na wizualizację stanu siatkówki za pomocą nośnika komórek podsiatkówkowych w dowolnym momencie okresu pooperacyjnego.
Obrazy bez czerwieni pokazują, że współczynnik odbicia hodowanych ludzkich komórek RPE w ramie nośnej komórek nie różni się od współczynnika odbicia rodzimej warstwy RPE świni. Obrazowanie OCT in vivo ujawnia, że nośnik komórkowy wszczepiony w przestrzeń podsiatkówkową nie zwiększa znacząco całej grubości siatkówki. Wydaje się, że błona Brucha również pozostaje nieuszkodzona.
Ramka nośnej komórki powoduje tylko niewielkie zacienienie sygnału OCT. Badanie histologiczne pośmiertnych kriogenicznych odcinków siatkówki wykazało tworzenie się ciągłej i nieregularnej warstwy barwnikowej komórek w obszarze wszczepionego pierwotnego ludzkiego RPE, co dowodzi przeżycia hodowanych na komórkach nośnikowych. Analiza immunohistochemiczna przekroju tkankowego pokazuje ludzkie komórki RPE, które są obecne w obszarze implantacji i wyrażają typowy marker RPE podobny do rodzimych komórek RPE świnki miniaturowej.
Mimo to wszczepione komórki RPE nie wyglądają jak monowarstwa komórkowa. Mimo to komórki te znajdują się w określonej przestrzeni podsiatkówkowej. Model zwierzęcy świnek miniaturowych z dużym okiem, w tym przypadku świnek miniaturowych Libechova, uważamy za jeden z najbardziej odpowiednich modeli do przyszłego zastosowania nowatorskich koncepcji w leczeniu chorób zwyrodnieniowych siatkówki, ze względu na ich podobieństwo do anatomii i fizjologii ludzkiego oka.
Podobieństwa te pozwalają na opracowanie technik chirurgicznych i oprzyrządowania do implantacji podsiatkówkowej nośnika komórkowego, a technika ta może być łatwo przeniesiona do leczenia chorób oczu u ludzi. Ważne jest, aby zapewnić, że operacje na świnkach miniaturowych są wykonywane przy użyciu tego samego oprzyrządowania, w tym narzędzi do implantacji, które byłyby również wykorzystywane w operacjach u ludzi, dzięki czemu zastosowanie zdobytego doświadczenia i know-how u ludzi nie sprawia trudności. Szczegółowy opis przedoperacyjnych procedur chirurgicznych i pooperacyjnych może być pomocny w przyszłych badaniach poprzez zwiększenie wydajności i standaryzacji generowania danych.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
06:04
Related Videos
18.2K Views
12:31
Related Videos
16K Views
12:45
Related Videos
10K Views
11:03
Related Videos
10.5K Views
11:20
Related Videos
4.3K Views
04:16
Related Videos
983 Views
08:36
Related Videos
13K Views
09:39
Related Videos
17.3K Views
11:17
Related Videos
12.2K Views
09:28
Related Videos
16.1K Views