-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Długoterminowy, ciągły pomiar przepływu krwi w nerkach u przytomnych szczurów
Długoterminowy, ciągły pomiar przepływu krwi w nerkach u przytomnych szczurów
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
Long-Term Continuous Measurement of Renal Blood Flow in Conscious Rats

Długoterminowy, ciągły pomiar przepływu krwi w nerkach u przytomnych szczurów

Full Text
3,027 Views
05:09 min
February 8, 2022

DOI: 10.3791/63560-v

Satoshi Shimada1, Allen W. Cowley, Jr.1

1Department of Physiology,Medical College of Wisconsin

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Obecny protokół opisuje długotrwały, ciągły pomiar przepływu krwi w nerkach u przytomnych szczurów i jednoczesne rejestrowanie ciśnienia krwi za pomocą wszczepionych cewników (wypełnionych płynem lub za pomocą telemetrii).

Ciągłe rejestrowanie przepływu krwi przez nerki u szczurów z instrumentami pozwala nam tymczasowo określić sekwencję zdarzeń, które prowadzą do procesu chorobowego, który badamy. W naszym przypadku jest to nadciśnienie tętnicze i staramy się ustalić, czy zmniejszenie przepływu krwi przez nerki, które występuje w nadciśnieniu, poprzedza, czy jest konsekwencją wysokiego ciśnienia krwi. System, który dzisiaj zademonstrujemy i przygotowanie zwierzęcia jest tak naprawdę zaprojektowany, aby umożliwić ciągłe 24-godzinne określanie przepływu krwi w nerkach przez wiele tygodni w celu zbadania przewlekłych zdarzeń i zbadania szczurów w ich środowisku domowym, klatkach.

Podobnie jak w przypadku wszystkich technik chirurgicznych, praktyki, cierpliwości i dbałości o szczegóły, będziemy musieli opanować te procedury, dopóki narzędzie nie będzie mogło zostać wykonane na czas. Na początek ogol cały brzuch w okolicy drzemki wokół siódmego kręgu szyjnego znieczulonego szczura za pomocą elektrycznej maszynki do strzyżenia. Po goleniu przetrzyj obszar trzy razy na przemian 10% jodowidonu i 70% etanolu.

Ułóż szczura w pozycji leżącej. Wykonaj jednocentymetrowe cięcie skalpelem na włosie i lewym boku. Następnie wykonaj wycięcie kleszczami hemostatycznymi w wolnej przestrzeni podskórnej od nacięcia bocznego do tyłu szyi.

Przymocuj przycisk skin do sondy przepływu i przeprowadź sondę przepływu przez ten podskórny tunel od szyi do nacięcia bocznego za pomocą kleszczy hemostatycznych. Następnie umieść szczura w pozycji leżącej na plecach i wykonaj od czterech do pięciu centymetrów nacięcia brzucha w linii środkowej. Wypreparuj obszar wokół lewej tętnicy nerkowej za pomocą zakrzywionych kleszczy do mikropreparacji, odsłaniając przestrzeń wystarczającą do umieszczenia sondy przepływu.

Następnie tępo przekłuć kleszczykami hemostatycznymi lewy mięsień czworoboczny lędźwiowy i przeciągnąć głowicę sondy przepływowej przez tętnicę nerkową pod tkanką tłuszczową do jamy brzusznej. Umieść siatkę z włókna poliestrowego na ścianie brzucha. Zaczepić końcówkę sondy przepływu o lewą tętnicę nerkową i podłączyć ją do przepływomierza.

Dodaj trochę żelu wokół końcówki sondy, a wartość natężenia przepływu pojawi się na przepływomierzu. Przyklej siatkę z włókna poliestrowego przymocowaną do sondy do ściany brzucha za pomocą kleju tkankowego i przytrzymaj, aż wyschnie i zostanie związana. Po umieszczeniu sondy na miejscu odłącz sondę przepływu od przepływomierza i przykryj brzuch gazą nasączoną solą fizjologiczną.

Aby zszyć sondę, obróć szczura do pozycji leżącej. Przymocuj przycisk skin do sondy przepływu i wykonaj okrężną pętlę sondy przepływu podskórnie z boku. Zszyj nacięcie na szyi i guzik do skóry.

Następnie zszyj bok czterema szwami chirurgicznymi ott. Ponownie podłącz sondę przepływu do przepływomierza i obróć szczura z powrotem do pozycji grzbietowej, aby sprawdzić przepływ krwi przez nerki. Dokonaj końcowej regulacji sondy przepływu, aby zoptymalizować jej położenie na tętnicy nerkowej.

Na koniec zszyj mięsień jedwabiem three ott w skórze za pomocą czterech ott szwów chirurgicznych. Kiedy szczur w pełni wyzdrowieje ze znieczulenia, wróć do systemu klatkowego reagującego na ruch, podłącz sondę przepływu do miernika przepływu krwi i poczekaj na okres rekonwalescencji wynoszący około tygodnia, aby ustabilizować sondę i pomiar przepływu. Średnie ciśnienie tętnicze i przepływ krwi były stale mierzone u szczurów wrażliwych na sól podczas przechodzenia z diety o niskiej zawartości soli na dietę o wysokiej zawartości soli.

Te reprezentatywne dane od samca szczura były rejestrowane przez okres czterech tygodni i są pokazane ze średnią minutową. Zaobserwowano wyraźną dobową różnicę w średnim ciśnieniu tętniczym i przepływie krwi. Podczas gdy ciśnienie krwi wzrasta wraz z dietą bogatą w sól, przepływ krwi ma tendencję do zmniejszania się, a nie wzrostu, co sugeruje zwiększony opór naczyniowy nerek.

Ogromną zaletą tej techniki jest to, że może ona badać przepływ krwi przez nerki przez długi czas, a co najważniejsze w warunkach nieznieczulonych. Ma to ogromne znaczenie podczas badania reakcji na różne bodźce, gdzie można użyć tego samego zwierzęcia w kontrolowanych, nieznieczulonych warunkach i śledzić to samo zwierzę przez krótkie lub bardzo długie okresy, aby zobaczyć, jaka jest reakcja na jakiś konkretny bodziec lub chorobę patologiczną.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Przepływ krwi w nerkach ciągły pomiar nadciśnienie oprzyrządowane szczury technika chirurgiczna znieczulenie sonda przepływu zdarzenia przewlekłe nacięcie brzucha kleszcze do mikrodysparacji tunel podskórny kleszcze hemostatyczne siatka z włókien poliestrowych klej tkankowy przygotowanie zwierząt

Related Videos

Cewnikowanie tętnic i żył udowych w celu pobrania krwi, podania leków oraz świadomych pomiarów ciśnienia krwi i tętna

09:38

Cewnikowanie tętnic i żył udowych w celu pobrania krwi, podania leków oraz świadomych pomiarów ciśnienia krwi i tętna

Related Videos

127.2K Views

Wysokoprzepustowa metoda pomiaru współczynnika filtracji kłębuszkowej u świadomych myszy

07:07

Wysokoprzepustowa metoda pomiaru współczynnika filtracji kłębuszkowej u świadomych myszy

Related Videos

44.2K Views

Zautomatyzowany pomiar prędkości przepływu krwi w mikrokrążeniu w przerzutach do płuc szczurów

10:56

Zautomatyzowany pomiar prędkości przepływu krwi w mikrokrążeniu w przerzutach do płuc szczurów

Related Videos

8.9K Views

Wczesne wykrywanie farmakologicznej dysfunkcji hemodynamicznej nerek za pomocą technologii sonograficznej u szczurów

06:38

Wczesne wykrywanie farmakologicznej dysfunkcji hemodynamicznej nerek za pomocą technologii sonograficznej u szczurów

Related Videos

12.6K Views

Demonstracja w laboratorium fizjologii: szybkość filtracji kłębuszkowej u szczura

06:58

Demonstracja w laboratorium fizjologii: szybkość filtracji kłębuszkowej u szczura

Related Videos

18.1K Views

Przezskórna ocena czynności nerek u świadomych gryzoni

07:18

Przezskórna ocena czynności nerek u świadomych gryzoni

Related Videos

12.9K Views

Nowatorskie podejście do jednoczesnego rejestrowania aktywności nerek współczulnych i ciśnienia krwi za pomocą wlewu dożylnego u przytomnych, nieskrępowanych myszy.

11:08

Nowatorskie podejście do jednoczesnego rejestrowania aktywności nerek współczulnych i ciśnienia krwi za pomocą wlewu dożylnego u przytomnych, nieskrępowanych myszy.

Related Videos

10.9K Views

Transdermalny pomiar szybkości filtracji kłębuszkowej u myszy

07:25

Transdermalny pomiar szybkości filtracji kłębuszkowej u myszy

Related Videos

23.3K Views

Ciągłe pobieranie próbek krwi w pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej małych zwierząt umożliwia pomiar funkcji wejściowej tętnicy

10:21

Ciągłe pobieranie próbek krwi w pozytonowej tomografii emisyjnej/tomografii komputerowej małych zwierząt umożliwia pomiar funkcji wejściowej tętnicy

Related Videos

8.8K Views

Ocena autoregulacji przepływu krwi w mózgu u szczura za pomocą laserowej przepływomierza dopplerowskiego

07:12

Ocena autoregulacji przepływu krwi w mózgu u szczura za pomocą laserowej przepływomierza dopplerowskiego

Related Videos

9.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code