-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Pierwotna hodowla komórek nabłonka barwnikowego siatkówki świń
Pierwotna hodowla komórek nabłonka barwnikowego siatkówki świń
JoVE Journal
Biology
Author Produced
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Primary Culture of Porcine Retinal Pigment Epithelial Cells

Pierwotna hodowla komórek nabłonka barwnikowego siatkówki świń

Full Text
2,823 Views
07:59 min
September 23, 2022

DOI: 10.3791/64244-v

Feng Wen*1,2,3, Yanzi Wang*1,2,3, Danxue He1,2,3, Chunyan Liao1,2,3, Weijie Ouyang1,2,3, Zuguo Liu1,2,3, Wei Li1,2,3, Yi Liao1,2,3

1Eye Institute of Xiamen University, Fujian Provincial Key Laboratory of Ophthalmology and Visual Science, School of Medicine,Xiamen University, 2Department of Ophthalmology, Xiang'an Hospital of Xiamen University, School of Medicine,Xiamen University, 3Xiamen University Affiliated Xiamen Eye Center, School of Medicine,Xiamen University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a straightforward protocol for culturing primary porcine retinal pigment epithelial (RPE) cells in vitro, addressing the challenges associated with RPE-related disorders. The method aims to create a reliable model for studying the physiological and pathological aspects of these disorders, facilitating new treatment development.

Key Study Components

Research Area

  • Retinal Pigment Epithelium (RPE) cell culture
  • Pathological studies on RPE disorders
  • Modeling of RPE related diseases

Background

  • RPE disorders contribute significantly to visual impairment.
  • Existing culture methods are inadequate for effective modeling.
  • The goal is to enhance accessibility for laboratories studying RPE cells.

Methods Used

  • Step-by-step protocol for tissue digestion and cell culture
  • Porcine model system
  • Use of enzymatic solutions for cell dissociation and characterization techniques

Main Results

  • Successful generation and maintenance of porcine RPE cells
  • Demonstrated capabilities for future drug screenings
  • Validation of gene expression and protein levels relevant to RPE function

Conclusions

  • This study establishes a replicable method for culturing RPE cells.
  • It provides a new tool for research into RPE-related treatments.

Frequently Asked Questions

What types of cells are being cultured in this study?
The study focuses on primary porcine retinal pigment epithelial cells.
Why is it important to culture RPE cells?
Culturing RPE cells is crucial for studying diseases affecting the retina and testing potential therapies.
What are the advantages of the presented method?
The method is easy to follow and allows for rapid generation of RPE cells suitable for various experiments.
How does this research impact future studies?
It provides a reliable model for drug testing and understanding RPE-related disorders, helping advance treatment options.
What technologies are utilized in this study?
Key technologies include enzymatic digestion and cell culture techniques for RPE cell analysis.
Are there any specific results mentioned in the study?
Yes, the study includes observations on gene expression and protein analysis relevant to RPE health.

Tutaj prezentowana jest łatwa do naśladowania metoda hodowli pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego siatkówki świni in vitro.

Zaburzenia związane z RPE pozostają główną częścią łączenia chorób, ale bez skutecznych pozostałości w wirtualnej hodowli pierwotnych komórek RPE, które mogłyby służyć jako dobry model do fizjologicznych i patologicznych badań zaburzeń związanych z RPE. W tym protokole zapewniamy łatwy do naśladowania protokół hodowli pierwotnych IPC, który może szybko przywrócić i utrzymać późniejsze cechy RP, wierzymy, że przy użyciu tej metody ludzie mogą szybko wygenerować komórki RP z badań klinicznych i badań przesiewowych leków ochronnych, co może ułatwić opracowanie nowego leczenia zaburzeń RPE. Demonstracja wartości krok po kroku znacznie ułatwi powtórzenie tej metody w różnych laboratoriach, które chcą badać komórki RP.

Aby rozpocząć rozmrażanie enzymu trawienia tkanek malaquad i sterylizować 1X PBS. Uzupełniony 2% penicyliną i 2% streptomycyną przez filtrowanie roztworu przez strzykawkowy filtr o średnicy 0,22 mikrometra. Umyj dołki płytki hodowlanej i wkładek transwell za pomocą 1X PBS.

Usunąć PBS ze studzienek i transwelli za pomocą pipety i dodać jeden mililitr świeżego 1X PBS do dolnej komory i 600 mikrolitrów po 10 mikrogramów na mililitr roztworu Lamininy do górnej komory. Inkubuj płytki i wkładki transwell w tym inkubatorze helicikultury przez noc w temperaturze 37 stopni Celsjusza i 5% dwutlenku węgla. Następnie wyjmij roztwór laminatu z górnej komory i umyj jednym mililitrem zimnego 1X PBS dwa razy przed umieszczeniem ogniwa Wyczyść okap przepływowy laminatu za pomocą 75% etanolu i światła UV.

Przygotuj trzy 50-mililitrowe sterylne probówki wirówkowe zawierające około 25 mililitrów 75% etanolu, trzy 50-mililitrowe sterylne probówki wirówkowe zawierające około 25 mililitrów 1X PBS i trzy 10-centymetrowe sterylne naczynia do hodowli komórkowych zawierające około 15 mililitrów 1X PBS. Namocz cztery gałki oczne świni w około 15 mililitrach 75% etanolu na 10-centymetrowej szalce Petriego i użyj nożyczek i kleszczy, aby odciąć wszystkie pozostałe tkanki łączne i mięśnie. Aby odkazić gałki oczne, namocz i umyj cztery gałki oczne w trzech 50-mililitrowych sterylnych probówkach wirówkowych wypełnionych kolejno 75% etanolem.

Następnie umyj gałki oczne w trzech 50-mililitrowych sterylnych probówkach wirówkowych wypełnionych sekwencyjnie 1X PBS. Odwracaj rurki co minutę, aby dokładnie umyć gałki oczne. Przenieś cztery gałki oczne do 10-centymetrowego sterylnego naczynia do hodowli komórek zawierającego 1X PBS.

Ponownie przytnij zewnętrzną powierzchnię każdej gałki ocznej, aby usunąć nerw wzrokowy i drobne zanieczyszczenia. Użyj nożyczek, aby wykonać małe nacięcie na przecięciu rąbka i twardówki. A następnie usuń rogówkę, tęczówkę, soczewkę, ciało szkliste i siatkówkę nerwową.

Przenieś kompleks twardówki naczyniówkowej RPE do nowego 10-centymetrowego naczynia do hodowli komórkowej i wykonaj cztery cięcia, aby spłaszczyć muszlę oczną w kształt czterolistnej koniczyny. Wykonuj wycieczki w trawieniu roztworu EDTA, umieszczając cztery kompleksy twardówki naczyniówki RPE w nowym 10-centymetrowym naczyniu i wlewając 20 mililitrów świeżego roztworu EDTA trypsyny, aby połączyć kompleksy twardówki naczyniówki RPE. Umieść naczynie w inkubatorze do hodowli komórkowych w temperaturze 37 stopni Celsjusza na prawie 30 minut.

Po 30 minutach wyjmij naczynie z inkubatora i dodaj do naczynia 20 mililitrów wstępnie podgrzanej pożywki do hodowli komórkowych z 10% FBS. Aby zneutralizować wyzwalacze w roztworze EDTA, użyj pięciomililitrowej pipety transferowej, aby oddzielić komórki RPE poprzez delikatne kilkakrotne pipetowanie. Zbierz zawiesiny komórek do 15-mililitrowych probówek wirówkowych, a następnie delikatnie odpipetuj kolejne 10 mililitrów świeżej pożywki hodowlanej za pomocą FBS, aby przemyć kompleksy twardówki RPE Choroids na szalce.

Zebrać komórki RPE, odwirowując probówki o sile 300 G przez pięć minut w temperaturze pokojowej. Odessać SuperAgent za pomocą pipety i dodać kolejne pięć mililitrów pożywki hodowlanej z FBS, aby ponownie zawiesić komórki. Wirować przy 300 G przez kolejne pięć minut.

Zdekantować SuperAgent i ponownie zawiesić komórki za pomocą 12 mililitrów pożywki hodowlanej. Następnie wysiewaj od 100 000 do 200 000 komórek na studzienkę do 12 dołków na płytki hodowlane lub wkładki transwell. Zmieniaj pożywkę hodowlaną co dwa dni i zmniejsz stężenie surowicy do 1%, gdy komórki całkowicie pokryją powierzchnię studzienek na wkładkę.

Zmieniaj pożywkę hodowlaną co dwa dni, aż do pobrania komórek. Reprezentatywne obrazy pierwotnych komórek RPE świń w dniu drugim, szóstym i dziesiątym przedstawiono tutaj. Analiza QRTPCR poziomów mRNA genów sygnaturowych w pierwotnych komórkach RPE świni, pierwotnych ludzkich komórkach RPE, komórkach ARPE 19 i tkance naczyniówki RPE świni jest wykrywana na tym obrazie graficznym

.

W tym przypadku GAP DH został użyty jako gen porządkowy dla RTPCR. Cztery kontrpróby biologiczne zastosowano do pierwotnych komórek RPE świni i komórki RPE 19, w których trzy kontrpróby biologiczne zastosowano do pierwotnych ludzkich komórek RPE i tkanki naczyniówki świni RPE. Poziomy ekspresji genów w komórkach ARPE 19 ustalono jako kontrolę.

Na tym rysunku przedstawiono zachodnią analizę krwi białek RPE 65 w komórkach ARPE 19 i świńskich komórkach RPE oraz w pierwotnych ludzkich komórkach RPE i tkankach naczyniówki świni RPE. Winkulina była tutaj używana jako kontrola obciążenia. Rysunek ten przedstawia dwutygodniową hodowlę komórek RPE świni w pożywce DMEM Basic z 1% FBS.

Komórki hodowane z laminą lub bez niej barwiono RPE 65, APTA sodowo-potasowymi, Z01 i Hex. Pomiary TR w arkuszach komórek, hodowanych z lamininą lub bez, przedstawiono na tym rysunku. Na tym rysunku pokazano zachodnią analizę krwi czynnika wzrostu śródbłonka naczyniowego lub VEGF i czynnika pochodzącego z nabłonka barwnikowego lub PEDF w pierwotnych komórkach RPE i ARPE 19 świń.

Na obrazach przedstawiono funkcje sektorowe hodowanych pierwotnych komórek RPE i ARPE 19 świń. Dużą częścią tego protokołu jest rozpuszczenie komórek RP z kompleksów glejowych chodów RPE. Zalecamy każdorazowe stosowanie świeżych porcji i roztworu oraz odpowiednie kontrolowanie czasu trawienia, aby rozpuścić osiem komórek RP.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Komórki nabłonka barwnikowego siatkówki świni zaburzenia RPE hodowla pierwotna badania fizjologiczne badania patologiczne protokół hodowli enzym trawienia tkanek roztwór laminyny inkubator helicikultury dekontaminacja sterylne probówki wirówkowe sterylne naczynia do hodowli komórek mycie etanolem płukanie PBS wytwarzanie komórek RP

Related Videos

Hodowla organotypowa siatkówki dorosłej świni o pełnej grubości

08:17

Hodowla organotypowa siatkówki dorosłej świni o pełnej grubości

Related Videos

15.4K Views

Izolacja komórek IPE i RPE: technika uzyskiwania pigmentowanych komórek nabłonkowych z izolowanego oka świni

02:57

Izolacja komórek IPE i RPE: technika uzyskiwania pigmentowanych komórek nabłonkowych z izolowanego oka świni

Related Videos

2.6K Views

Izolowanie komórek RPE i IPE z oka bydła: procedura zbierania i hodowli pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego bydła

04:09

Izolowanie komórek RPE i IPE z oka bydła: procedura zbierania i hodowli pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego bydła

Related Videos

2.9K Views

Pierwotne hodowle komórkowe z nabłonka barwnikowego siatkówki myszy

09:35

Pierwotne hodowle komórkowe z nabłonka barwnikowego siatkówki myszy

Related Videos

22.1K Views

Izolacja, hodowla i inżynieria genetyczna pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego ssaków do niewirusowej terapii genowej

09:46

Izolacja, hodowla i inżynieria genetyczna pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego ssaków do niewirusowej terapii genowej

Related Videos

3.6K Views

Skuteczna dyssekcja i hodowla pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego siatkówki myszy

08:33

Skuteczna dyssekcja i hodowla pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego siatkówki myszy

Related Videos

7K Views

Izolacja komórek nabłonka barwnikowego siatkówki z oczu świnki morskiej

05:06

Izolacja komórek nabłonka barwnikowego siatkówki z oczu świnki morskiej

Related Videos

2.6K Views

Izolacja pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego siatkówki świń do modelowania in vitro

06:37

Izolacja pierwotnych komórek nabłonka barwnikowego siatkówki świń do modelowania in vitro

Related Videos

1.6K Views

Uproszczona metoda izolacji i hodowli komórek nabłonka barwnikowego siatkówki od dorosłych myszy

05:04

Uproszczona metoda izolacji i hodowli komórek nabłonka barwnikowego siatkówki od dorosłych myszy

Related Videos

2.3K Views

Ex vivo Posiew pierwotnych komórek nabłonka ludzkiego jajowodu

11:46

Ex vivo Posiew pierwotnych komórek nabłonka ludzkiego jajowodu

Related Videos

20.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code