-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Długotrwała hodowla i monitorowanie izolowanych Caenorhabditis elegans na pożywkach stał...
Długotrwała hodowla i monitorowanie izolowanych Caenorhabditis elegans na pożywkach stał...
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Long-Term Culture and Monitoring of Isolated Caenorhabditis elegans on Solid Media in Multi-Well Devices

Długotrwała hodowla i monitorowanie izolowanych Caenorhabditis elegans na pożywkach stałych w urządzeniach wielodołkowych

Full Text
2,099 Views
09:32 min
December 9, 2022

DOI: 10.3791/64681-v

Emily A. Gardea1, Destiny DeNicola1, Samuel Freitas1, Will Peterson1, Hope Dang1, Karissa Shuck1, Christopher Fang-Yen2, George L. Sutphin1

1Department of Molecular & Cellular Biology,University of Arizona, 2Department of Bioengineering, School of Engineering and Applied Sciences,University of Pennsylvania

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents an optimized protocol for culturing isolated nematodes, enabling monitoring of individual animals throughout their lifespan. This approach facilitates the investigation of various phenotypes related to aging and health, such as activity, body size, movement, and survival.

Key Study Components

Research Area

  • Aging
  • Phenotypic monitoring
  • Nematode culture techniques

Background

  • Traditional studies typically follow populations of nematodes.
  • Individual animal culture environments permit close tracking of changes over time.
  • Culturing techniques must mitigate drying and contamination risks.

Methods Used

  • Microfabricated multi-well devices for maintaining single nematodes.
  • Use of various media and techniques for sterilization and preparation.
  • Protocols include detailed instructions for device assembly and animal transfer.

Main Results

  • Establishment of successful culturing conditions for dynamic observation of individual nematodes.
  • Insights into biological effects such as lifespan and activity variations impacted by genetic mutations.
  • Validated conclusions on the significance of individual monitoring in aging studies.

Conclusions

  • This study demonstrates the effectiveness of individualized culturing protocols in nematode research.
  • Findings have implications for broader biological research on aging and health.

Frequently Asked Questions

What is the main benefit of using single animal culture systems?
Single animal culture systems allow researchers to observe the dynamic changes in molecular and physiological processes in individual nematodes over time.
What are the key challenges in culturing nematodes?
Key challenges include preventing over or under drying of wells and avoiding contamination during culture preparation.
How does this study impact aging research?
The study provides a robust method for tracking aging changes in individual organisms rather than relying on population averages.
What specific phenotypes can be monitored using this protocol?
Phenotypes such as activity level, body size, movement geometry, and survival can all be monitored using this method.
Who contributed to demonstrating the protocol?
Emily Gardea, a technician in the lab, contributed significantly to optimizing the culturing protocol.
What species of nematodes is focused on in this research?
The research focuses on Caenorhabditis elegans, widely used in aging studies.
How was the multi-well device prepared?
The multi-well device was prepared using a custom protocol involving PDMS molds, plasma cleaning, and sterilization procedures.

Prezentowany tutaj jest zoptymalizowany protokół hodowli izolowanych pojedynczych nicieni na stałych podłożach w mikrofabrykowanych urządzeniach wielodołkowych. Takie podejście pozwala na monitorowanie poszczególnych zwierząt przez całe życie pod kątem różnych fenotypów związanych ze starzeniem się i zdrowiem, w tym aktywności, wielkości i kształtu ciała, geometrii ruchu i przeżycia.

Kiedy badamy starzenie się i eleganów morskich, zazwyczaj śledzimy populację zwierząt w czasie. Daje nam to wgląd w to, co badany przez was proces zachodzi w populacji w każdym punkcie czasowym, ale nie mówi nam, jak proces ten zmienia się u poszczególnych zwierząt w czasie. Te środowiska hodowli pojedynczych zwierząt pozwalają nam śledzić dynamiczne zmiany w procesach molekularnych i procesach fizjologicznych u poszczególnych zwierząt w czasie dla setek zwierząt równolegle.

Odkryliśmy, że istnieją dwie główne rzeczy, które mogą naprawdę wpłynąć na jakość tych wielodołkowych systemów hodowli. Jednym z nich jest nadmierne lub niedostateczne suszenie studni, a drugim zanieczyszczenie. Staramy się również odnotowywać w całym protokole konkretne kroki, w których można spróbować złagodzić te problemy.

Protokół zademonstruje dziś Emily Gardea. Jest technikiem w moim laboratorium i wykonała wiele pracy, aby zoptymalizować ten protokół. Po przygotowaniu wszystkich odczynników wymieszaj 60 gramów bazy PDMS i sześć gramów utwardzacza na formę w dużej jednorazowej łodzi za pomocą jednorazowej szpatułki.

Umieść mieszaninę PDMS w komorze próżniowej na 30 minut w temperaturze minus 0,08 mega pascala, aby usunąć pęcherzyki. Wlej i napełnij mieszaninę PDMS do każdej formy wydrukowanej w 3D. Umieść napełnioną formę i dodatkową mieszaninę PDMS w komorze próżniowej na 25 minut w temperaturze minus 0,08 mega paskala.

Wyjmij wypełnioną formę z komory próżniowej i przebij pozostałe bąbelki jednorazową szpatułką. Zaczynając od jednej krawędzi, powoli opuść płaski arkusz akrylowy na wierzch formy wypełnionej PDMS. Jeśli dojdzie do powstania pęcherzyków, postępuj zgodnie z opisem w manuskrypcie.

Umieść ciężarek o wadze 2.5 funta na akrylu i umieść obciążone foremki w piekarniku. Pozwól im utwardzić się w temperaturze 55 stopni Celsjusza przez noc. Pod koniec inkubacji wyjmij ciężarki i foremki z piekarnika.

Następnie umieść żyletkę między akrylem a utwardzonym PDMS Aby złamać pieczęć Za pomocą brzytwy lub metalowej szpatułki ostrożnie poluzuj boki utwardzonego PDMS i wyjmij je z formy. Owiń urządzenie PDMS folią aluminiową. Uszczelnij go taśmą autoklawu i sterylizuj w autoklawie w suchym cyklu przez co najmniej 15 minut w temperaturze 121 stopni Celsjusza i ciśnieniu manometrycznym 15 funtów na cal kwadratowy.

Aby przygotować urządzenie wielodołkowe, podgrzej inkubator do suchej kąpieli perełkowej do 90 stopni Celsjusza. Rozwiń autoklawowane urządzenie wielodołkowe i wytnij małe wcięcie w prawym górnym rogu urządzenia. Umieść do trzech nieopakowanych urządzeń w myjce plazmowej studzienkami skierowanymi do góry i uruchom myjkę plazmową.

Wysterylizuj jedną tackę z polistyrenu na urządzenie, spryskując wnętrze tacki 70% etanolem i wycierając ją do sucha chusteczką zadaniową. Wyjmij każde urządzenie z myjki plazmowej ręką w rękawiczce i umieść je na wyczyszczonej tacy. Następnie umieść 25-mililitrową jednorazową miskę na pipety w inkubatorze do kąpieli perełkowej podgrzanym do 90 stopni Celsjusza.

Weź jedną tubkę zestalonej mieszaniny wstępnej LMNGM na urządzenie, które ma być napełnione i umieść ją w szklanej zlewce o pojemności 200 mililitrów. Zdejmij nakrętkę i Parafilm i kuchenkę mikrofalową, aż nośnik stopi się na tyle, aby się rozlać. Wlej stopioną mieszaninę wstępną LMNGM do innej sterylnej zlewki o pojemności 200 mililitrów.

W tej zlewce można połączyć wiele probówek, jeśli jednocześnie napełnionych jest więcej niż jedno urządzenie. Podgrzewaj wstępną mieszaninę LMNGM w kuchence mikrofalowej przez dodatkowe 20 sekund. Jeśli mieszanina wstępna zacznie wrzeć, zatrzymaj kuchenkę mikrofalową i pozwól jej się uspokoić.

Wyjmij stopioną mieszaninę wstępną LMNGM z kuchenki mikrofalowej i ostudź ją do 60 stopni Celsjusza. Dodaj pozostałe składniki LMNGM do mieszanki wstępnej i wlej stopiony LMNGM do 25-mililitrowej miski w kąpieli perełkowej. Napełnij studzienki urządzenia za pomocą wielokanałowej pipety repeater o pojemności 200 mikrolitrów.

Ustaw repeater tak, aby dozował porcje 14 mikrolitrów i zamontuj pięć końcówek do pipet. Załaduj końcówki stopionym LMNGM i wlej pierwsze 14 mikrolitrów z powrotem do miski zawierającej LMNGM. Poruszając się szybko, ale ostrożnie, dozuj 14 mikrolitrów do wewnętrznych studzienek urządzenia i dozuj pozostały LMNGM z powrotem do miski, ponieważ końcowa porcja jest zwykle mniejsza niż 14 mikrolitrów.

Następnie ustaw repeater tak, aby dozował porcje 15 mikrolitrów i napełnij najbardziej zewnętrzny pierścień studzienek. Za pomocą pipety o pojemności 200 mikrolitrów dozuj 200 mikrolitrów roztworu siarczanu miedzi do fosy urządzenia w każdym rogu. Unikaj przepełniania fosy i upewnij się, że siarczan miedzi nie dotyka górnej powierzchni studni.

Jeśli siarczan miedzi nie przepływa łatwo przez całą fosę, użyj krótkiego szpikulca z drutu platynowego, aby przerwać napięcie i przeciągnąć siarczan miedzi przez fosę. Po przepłynięciu siarczanu miedzi przez całą fosę należy usunąć jak najwięcej siarczanu miedzi za pomocą pipety o pojemności 200 mikrolitrów lub aspiracji z próżnią. Za pomocą wyciskanej butelki dodaj kryształki wody w przestrzeniach między urządzeniem a ściankami tacy.

Zamknij pokrywę tacki i owiń wszystkie cztery boki kawałkiem Parafilmu. Dodaj dwa dodatkowe kawałki Parafilmu, aby całkowicie uszczelnić płytkę. Za pomocą pipety powtarzalnej umieść w każdym dołku pięć mikrolitrów skoncentrowanych bakterii.

Unikać bezpośredniego kontaktu z powierzchnią LMNGM. Wysusz urządzenia za pomocą specjalnie zbudowanego pojemnika do suszenia, które można zbudować przy minimalnych kosztach przy użyciu wentylatorów obudowy komputera i filtrów HEPA. W ramach zakresu preparacji sprawdź studnie, aby upewnić się, że wszystkie studzienki pomyślnie wyschły.

Za pomocą platynowego kilofa przenieś zwierzęta z przygotowanych płytek robaków i dodaj jednego robaka do dołka. Dodaj kroplę przygotowanego roztworu detergentu do wewnętrznej strony pokrywy tacki i przecieraj chusteczką zadaniową, aż roztwór detergentu wyschnie. Owiń tacę trzema kawałkami Parafilmu zgodnie z opisem w rękopisie.

Wydłużenie żywotności z daf-2 (RNAi) jest blokowane przez mutację zerową daf-16. Długość zdrowia zmniejszyła się również w obecności daf-2(RNAi)Trzydniowa średnia krocząca aktywności w całym okresie życia jest zmniejszona przez mutanta daf-16 i daf-2(RNAi)Pokazano różnicę w długości życia i długości zdrowia u poszczególnych zwierząt porównaną w wartościach bezwzględnych lub jako ułamek całkowitej długości życia. Skumulowana aktywność poszczególnych zwierząt w ciągu całego życia koreluje lepiej z długością życia niż aktywność poszczególnych zwierząt w dowolnym konkretnym dniu w ciągu całego życia.

Ważne jest, aby napełnić studzienki i dodać robaki tak szybko, jak to możliwe. W przeciwnym razie studnie mogą wyschnąć, a robaki nie przetrwają. System ten jest kompatybilny z automatycznym obrazowaniem, które może być wykorzystywane do gromadzenia danych o wysokiej przepustowości, takich jak długość życia, aktywność oraz rozmiar lub kształt ciała.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Caenorhabditis elegans badanie starzenia hodowla pojedynczych zwierząt systemy hodowli wielodołkowych mieszanina PDMS komora próżniowa optymalizacja protokołu zapobieganie zanieczyszczeniom forma drukowana w 3D usuwanie pęcherzyków proces utwardzania sterylizacja przygotowanie urządzenia wielodołkowego

Related Videos

Pomiar długości życia Caenorhabditis elegans na nośnikach stałych

12:49

Pomiar długości życia Caenorhabditis elegans na nośnikach stałych

Related Videos

30.9K Views

Hodowla Caenorhabditis elegans w płynnych pożywkach aksenicznych i tworzenie transgenicznych robaków przez bombardowanie mikrocząsteczkami

08:26

Hodowla Caenorhabditis elegans w płynnych pożywkach aksenicznych i tworzenie transgenicznych robaków przez bombardowanie mikrocząsteczkami

Related Videos

17.9K Views

Uprawa Caenorhabditis elegans w trzech wymiarach w laboratorium

09:01

Uprawa Caenorhabditis elegans w trzech wymiarach w laboratorium

Related Videos

18.6K Views

Nicienie Caenorhabditis elegans - wszechstronny model in vivo do badania interakcji gospodarz-mikroorganizm

11:58

Nicienie Caenorhabditis elegans - wszechstronny model in vivo do badania interakcji gospodarz-mikroorganizm

Related Videos

9.9K Views

Platforma mikroprzepływowa do obrazowania podłużnego u Caenorhabditis elegans

09:00

Platforma mikroprzepływowa do obrazowania podłużnego u Caenorhabditis elegans

Related Videos

6.9K Views

Hodowla Caenorhabditis elegans na dużych obszarach na płytkach: przygotowanie próbki do badania zmian metabolicznych w cukrzycy

05:08

Hodowla Caenorhabditis elegans na dużych obszarach na płytkach: przygotowanie próbki do badania zmian metabolicznych w cukrzycy

Related Videos

6.8K Views

Kultura i analiza populacji dużoskalowych o mieszanym stadium Caenorhabditis elegans

08:51

Kultura i analiza populacji dużoskalowych o mieszanym stadium Caenorhabditis elegans

Related Videos

5.6K Views

Prosty chip mikroprzepływowy do długoterminowego wzrostu i obrazowania Caenorhabditis elegans

10:45

Prosty chip mikroprzepływowy do długoterminowego wzrostu i obrazowania Caenorhabditis elegans

Related Videos

2.4K Views

Wysokoprzepustowe badania przesiewowe izolatów drobnoustrojów mające wpływ na zdrowie Caenorhabditis elegans

11:40

Wysokoprzepustowe badania przesiewowe izolatów drobnoustrojów mające wpływ na zdrowie Caenorhabditis elegans

Related Videos

3.2K Views

Długotrwała hodowla poszczególnych Caenorhabditis elegans na pożywkach stałych do długotrwałego monitorowania fluorescencji i interwencji awersyjnych

07:25

Długotrwała hodowla poszczególnych Caenorhabditis elegans na pożywkach stałych do długotrwałego monitorowania fluorescencji i interwencji awersyjnych

Related Videos

2.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code