RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/64681-v
Emily A. Gardea1, Destiny DeNicola1, Samuel Freitas1, Will Peterson1, Hope Dang1, Karissa Shuck1, Christopher Fang-Yen2, George L. Sutphin1
1Department of Molecular & Cellular Biology,University of Arizona, 2Department of Bioengineering, School of Engineering and Applied Sciences,University of Pennsylvania
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This study presents an optimized protocol for culturing isolated nematodes, enabling monitoring of individual animals throughout their lifespan. This approach facilitates the investigation of various phenotypes related to aging and health, such as activity, body size, movement, and survival.
Prezentowany tutaj jest zoptymalizowany protokół hodowli izolowanych pojedynczych nicieni na stałych podłożach w mikrofabrykowanych urządzeniach wielodołkowych. Takie podejście pozwala na monitorowanie poszczególnych zwierząt przez całe życie pod kątem różnych fenotypów związanych ze starzeniem się i zdrowiem, w tym aktywności, wielkości i kształtu ciała, geometrii ruchu i przeżycia.
Kiedy badamy starzenie się i eleganów morskich, zazwyczaj śledzimy populację zwierząt w czasie. Daje nam to wgląd w to, co badany przez was proces zachodzi w populacji w każdym punkcie czasowym, ale nie mówi nam, jak proces ten zmienia się u poszczególnych zwierząt w czasie. Te środowiska hodowli pojedynczych zwierząt pozwalają nam śledzić dynamiczne zmiany w procesach molekularnych i procesach fizjologicznych u poszczególnych zwierząt w czasie dla setek zwierząt równolegle.
Odkryliśmy, że istnieją dwie główne rzeczy, które mogą naprawdę wpłynąć na jakość tych wielodołkowych systemów hodowli. Jednym z nich jest nadmierne lub niedostateczne suszenie studni, a drugim zanieczyszczenie. Staramy się również odnotowywać w całym protokole konkretne kroki, w których można spróbować złagodzić te problemy.
Protokół zademonstruje dziś Emily Gardea. Jest technikiem w moim laboratorium i wykonała wiele pracy, aby zoptymalizować ten protokół. Po przygotowaniu wszystkich odczynników wymieszaj 60 gramów bazy PDMS i sześć gramów utwardzacza na formę w dużej jednorazowej łodzi za pomocą jednorazowej szpatułki.
Umieść mieszaninę PDMS w komorze próżniowej na 30 minut w temperaturze minus 0,08 mega pascala, aby usunąć pęcherzyki. Wlej i napełnij mieszaninę PDMS do każdej formy wydrukowanej w 3D. Umieść napełnioną formę i dodatkową mieszaninę PDMS w komorze próżniowej na 25 minut w temperaturze minus 0,08 mega paskala.
Wyjmij wypełnioną formę z komory próżniowej i przebij pozostałe bąbelki jednorazową szpatułką. Zaczynając od jednej krawędzi, powoli opuść płaski arkusz akrylowy na wierzch formy wypełnionej PDMS. Jeśli dojdzie do powstania pęcherzyków, postępuj zgodnie z opisem w manuskrypcie.
Umieść ciężarek o wadze 2.5 funta na akrylu i umieść obciążone foremki w piekarniku. Pozwól im utwardzić się w temperaturze 55 stopni Celsjusza przez noc. Pod koniec inkubacji wyjmij ciężarki i foremki z piekarnika.
Następnie umieść żyletkę między akrylem a utwardzonym PDMS Aby złamać pieczęć Za pomocą brzytwy lub metalowej szpatułki ostrożnie poluzuj boki utwardzonego PDMS i wyjmij je z formy. Owiń urządzenie PDMS folią aluminiową. Uszczelnij go taśmą autoklawu i sterylizuj w autoklawie w suchym cyklu przez co najmniej 15 minut w temperaturze 121 stopni Celsjusza i ciśnieniu manometrycznym 15 funtów na cal kwadratowy.
Aby przygotować urządzenie wielodołkowe, podgrzej inkubator do suchej kąpieli perełkowej do 90 stopni Celsjusza. Rozwiń autoklawowane urządzenie wielodołkowe i wytnij małe wcięcie w prawym górnym rogu urządzenia. Umieść do trzech nieopakowanych urządzeń w myjce plazmowej studzienkami skierowanymi do góry i uruchom myjkę plazmową.
Wysterylizuj jedną tackę z polistyrenu na urządzenie, spryskując wnętrze tacki 70% etanolem i wycierając ją do sucha chusteczką zadaniową. Wyjmij każde urządzenie z myjki plazmowej ręką w rękawiczce i umieść je na wyczyszczonej tacy. Następnie umieść 25-mililitrową jednorazową miskę na pipety w inkubatorze do kąpieli perełkowej podgrzanym do 90 stopni Celsjusza.
Weź jedną tubkę zestalonej mieszaniny wstępnej LMNGM na urządzenie, które ma być napełnione i umieść ją w szklanej zlewce o pojemności 200 mililitrów. Zdejmij nakrętkę i Parafilm i kuchenkę mikrofalową, aż nośnik stopi się na tyle, aby się rozlać. Wlej stopioną mieszaninę wstępną LMNGM do innej sterylnej zlewki o pojemności 200 mililitrów.
W tej zlewce można połączyć wiele probówek, jeśli jednocześnie napełnionych jest więcej niż jedno urządzenie. Podgrzewaj wstępną mieszaninę LMNGM w kuchence mikrofalowej przez dodatkowe 20 sekund. Jeśli mieszanina wstępna zacznie wrzeć, zatrzymaj kuchenkę mikrofalową i pozwól jej się uspokoić.
Wyjmij stopioną mieszaninę wstępną LMNGM z kuchenki mikrofalowej i ostudź ją do 60 stopni Celsjusza. Dodaj pozostałe składniki LMNGM do mieszanki wstępnej i wlej stopiony LMNGM do 25-mililitrowej miski w kąpieli perełkowej. Napełnij studzienki urządzenia za pomocą wielokanałowej pipety repeater o pojemności 200 mikrolitrów.
Ustaw repeater tak, aby dozował porcje 14 mikrolitrów i zamontuj pięć końcówek do pipet. Załaduj końcówki stopionym LMNGM i wlej pierwsze 14 mikrolitrów z powrotem do miski zawierającej LMNGM. Poruszając się szybko, ale ostrożnie, dozuj 14 mikrolitrów do wewnętrznych studzienek urządzenia i dozuj pozostały LMNGM z powrotem do miski, ponieważ końcowa porcja jest zwykle mniejsza niż 14 mikrolitrów.
Następnie ustaw repeater tak, aby dozował porcje 15 mikrolitrów i napełnij najbardziej zewnętrzny pierścień studzienek. Za pomocą pipety o pojemności 200 mikrolitrów dozuj 200 mikrolitrów roztworu siarczanu miedzi do fosy urządzenia w każdym rogu. Unikaj przepełniania fosy i upewnij się, że siarczan miedzi nie dotyka górnej powierzchni studni.
Jeśli siarczan miedzi nie przepływa łatwo przez całą fosę, użyj krótkiego szpikulca z drutu platynowego, aby przerwać napięcie i przeciągnąć siarczan miedzi przez fosę. Po przepłynięciu siarczanu miedzi przez całą fosę należy usunąć jak najwięcej siarczanu miedzi za pomocą pipety o pojemności 200 mikrolitrów lub aspiracji z próżnią. Za pomocą wyciskanej butelki dodaj kryształki wody w przestrzeniach między urządzeniem a ściankami tacy.
Zamknij pokrywę tacki i owiń wszystkie cztery boki kawałkiem Parafilmu. Dodaj dwa dodatkowe kawałki Parafilmu, aby całkowicie uszczelnić płytkę. Za pomocą pipety powtarzalnej umieść w każdym dołku pięć mikrolitrów skoncentrowanych bakterii.
Unikać bezpośredniego kontaktu z powierzchnią LMNGM. Wysusz urządzenia za pomocą specjalnie zbudowanego pojemnika do suszenia, które można zbudować przy minimalnych kosztach przy użyciu wentylatorów obudowy komputera i filtrów HEPA. W ramach zakresu preparacji sprawdź studnie, aby upewnić się, że wszystkie studzienki pomyślnie wyschły.
Za pomocą platynowego kilofa przenieś zwierzęta z przygotowanych płytek robaków i dodaj jednego robaka do dołka. Dodaj kroplę przygotowanego roztworu detergentu do wewnętrznej strony pokrywy tacki i przecieraj chusteczką zadaniową, aż roztwór detergentu wyschnie. Owiń tacę trzema kawałkami Parafilmu zgodnie z opisem w rękopisie.
Wydłużenie żywotności z daf-2 (RNAi) jest blokowane przez mutację zerową daf-16. Długość zdrowia zmniejszyła się również w obecności daf-2(RNAi)Trzydniowa średnia krocząca aktywności w całym okresie życia jest zmniejszona przez mutanta daf-16 i daf-2(RNAi)Pokazano różnicę w długości życia i długości zdrowia u poszczególnych zwierząt porównaną w wartościach bezwzględnych lub jako ułamek całkowitej długości życia. Skumulowana aktywność poszczególnych zwierząt w ciągu całego życia koreluje lepiej z długością życia niż aktywność poszczególnych zwierząt w dowolnym konkretnym dniu w ciągu całego życia.
Ważne jest, aby napełnić studzienki i dodać robaki tak szybko, jak to możliwe. W przeciwnym razie studnie mogą wyschnąć, a robaki nie przetrwają. System ten jest kompatybilny z automatycznym obrazowaniem, które może być wykorzystywane do gromadzenia danych o wysokiej przepustowości, takich jak długość życia, aktywność oraz rozmiar lub kształt ciała.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
12:49
Related Videos
30.9K Views
08:26
Related Videos
17.9K Views
09:01
Related Videos
18.6K Views
11:58
Related Videos
9.9K Views
09:00
Related Videos
6.9K Views
05:08
Related Videos
6.8K Views
08:51
Related Videos
5.6K Views
10:45
Related Videos
2.4K Views
11:40
Related Videos
3.2K Views
07:25
Related Videos
2.1K Views