-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Model iniekcji żyły zaoczodołowej u noworodków gryzoni
Model iniekcji żyły zaoczodołowej u noworodków gryzoni
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
A Neonatal Rodent Model of Retroorbital Vein Injection

Model iniekcji żyły zaoczodołowej u noworodków gryzoni

Full Text
9,848 Views
04:39 min
February 23, 2024

DOI: 10.3791/65386-v

Eridan Rocha-Ferreira1, Syam Nair1, Owen Herrock1, Erik Axel Andersson2, Carl Joakim Ek2, Carina Mallard2, Henrik Hagberg1

1Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Clinical Sciences, Department of Obstetrics and Gynecology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg, 2Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Neuroscience and Physiology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol highlights a reproducible retro-orbital injection method for intravenous drug administration in neonatal rats and mice. The technique facilitates compound delivery into the venous circulation, which is particularly crucial for preclinical studies mimicking neonatal care unit conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Pharmacology
  • Animal models

Background

  • Intravenous administration is commonly used in neonatal intensive care units.
  • Injections via the tail vein are difficult in neonates, making alternative routes necessary.
  • The retro-orbital route is simpler and can be used effectively for compound administration.
  • This method allows for real-time monitoring of injection success through visible dye tracking.

Purpose of Study

  • To optimize intravenous drug administration techniques in neonatal rodents.
  • To provide a reliable method for compound delivery that can be used in various preclinical settings.
  • To enhance reproducibility and outcomes in rodent studies related to neonatal care.

Methods Used

  • The retro-orbital injection method is demonstrated using trypan blue dye.
  • Subjects include neonatal rats and mice under anesthesia during the procedure.
  • New sterile syringes are utilized for each animal to prevent contamination.
  • Injection occurs at the medial canthus of the eye at a 40-degree angle.
  • Recovery protocols ensure the well-being of the animals post-injection.

Main Results

  • The protocol enables successful visualization of compounds in the venous system.
  • Effective tracer administration allows for assessment of vascular responses after injury.
  • These results highlight the potential for quantifying vascular leakage and injury assessment.
  • The method does not cause adverse effects when performed properly.

Conclusions

  • This study establishes the retro-orbital injection as a reliable method for drug administration in neonatal rodents.
  • The technique presents significant clinical relevance in translational research.
  • Enhanced understanding of venous drug delivery mechanisms supports future studies in neonatal pharmacology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the retro-orbital injection method?
The retro-orbital injection method simplifies intravenous administration in neonatal rodents, providing a more accessible alternative to tail vein injections, which can be challenging.
How is the retro-orbital injection performed?
The injection is performed with the animal under anesthesia, using a 29 to 31 gauge needle positioned at the medial canthus of the eye, angled appropriately to access the venous plexus.
What types of data can this method help obtain?
The method allows for real-time monitoring of compounds in the blood circulation, enabling assessments of tracer distributions and vascular responses.
Can this method be adapted for other substances?
Yes, this injection technique can be used for various compounds, including antibodies, cells, and other therapeutic agents directly into the venous circulation.
Are there any limitations to this injection method?
Care must be taken to ensure proper needle placement to avoid complications, and the procedure should only be performed by trained individuals for optimal animal welfare.
How does this study contribute to neonatal pharmacology?
The study presents a reliable method for intravenous drug administration that can improve translational research on drug effects in neonatal care settings.

Ten protokół ma na celu zademonstrowanie powtarzalnej drogi podawania dożylnego, która może być stosowana u szczurów i myszy przez cały okres noworodkowy. Procedura ta jest ważna dla przedklinicznych badań na gryzoniach, które mają na celu odzwierciedlenie podawania leków na oddziałach opieki neonatologicznej, głównie przy użyciu podawania dożylnego.

Iniekcja zaoczodołowa jest specjalistyczną metodą iniekcji stosowaną do podawania związków do krążenia żylnego. Badania na zwierzętach są ważnym krokiem w kierunku pracy klinicznej. W ramach badań na zwierzętach istnieje potrzeba podawania różnych rodzajów związków różnymi drogami.

Niektóre z tych dróg obejmują podskórne, dootrzewnowe i dożylne. Wstrzyknięcie dożylne jest najczęściej stosowaną drogą u noworodków przebywających na oddziale intensywnej terapii noworodków. Jednak w badaniach na gryzoniach, szczególnie u dorosłych gryzoni, rutynowo wykonuje się zastrzyki dożylne na żyłę ogonową.

U noworodków niezwykle trudno jest wykonać skuteczne i powtarzalne wstrzyknięcie do żyły ogonowej. Dlatego trasa retroorbitalna może być używana jako łatwiejsza alternatywa. Najpierw pokażemy, jak używać barwnika, błękitu trypanowego, tak aby widz mógł wyraźnie zobaczyć, jak barwnik wchodzi do krążenia żylnego.

Nowonarodzony szczur umieszcza się w pełnej narkozie, z głową leżącą na boku, spoczywającą nad źródłem światła, dzięki czemu oko i boczne unaczynienie są odsłonięte i widoczne. Igła jest wprowadzana z przodu oczodołu, co jest odpowiednikiem kantu przyśrodkowego. Wstrzykiwać roztwór delikatnym, płynnym i płynnym ruchem.

Aby lepiej odtworzyć tę procedurę, ważne jest zrozumienie anatomii żyły oczodołu. U szczura znajduje się sieć kilku żył tuż pod okiem, które umożliwiają łatwy i bezpośredni dostęp do splotu żylnego. U nowonarodzonych szczurów albinosów widoczne są również zarówno żyły skroniowe, jak i twarzowe.

Ta procedura może być wykonana w dokładnie ten sam sposób. U nowonarodzonych myszy. Użyj igły o rozmiarze od 29 do 31 około 0,30 milimetra.

W celu uzyskania dokładnych objętości należy pobrać roztwór do wstrzyknięcia z odpipetowanej objętości. Umieść zwierzęta na płaskiej powierzchni w pozycji bocznej. Wywołaj znieczulenie izofluranem całego ciała.

5% indukcji, 3% konserwacji. Sprawdź głębokość znieczulenia za pomocą metody odruchu wycofania ciągnięcia. Z głową skierowaną w prawo, podać wstrzyknięcie do prawej zatoki zaoczodołowej.

Wbić igłę pod kątem w dół z przodu oczodołu, odpowiednika środkowego kąta, pod kątem około 40 stopni. Kąt ten pozwala na skierowanie igły do tylnej części oczodołu. Wstrzyknąć delikatnym, płynnym i płynnym ruchem.

Odczekać chwilę przed wycofaniem igły, powoli, aby uniknąć przepływu wstecznego. Dla każdego zwierzęcia należy użyć nowej sterylnej strzykawki, aby uniknąć zakażenia. Umieść szczeniaka w pudełku regeneracyjnym, spoczywającego na chronionym urządzeniu grzewczym, w temperaturze około 35 do 37 stopni Celsjusza.

Poczekaj na powrót do zdrowia i sprawdź, czy nie ma oznak niepokoju, zanim zwrócisz szczenię do tamy. Technika ta została wykorzystana do podania znacznika biotyny-dekstranu do układu naczyniowego mózgu zwierząt, które przeszły krwotok z macierzy rozrodczej. Zwierzęta, które otrzymały zastrzyk z soli fizjologicznej jako kontrolę, nie wykazują widocznego zabarwienia naczyń krwionośnych w mózgu.

Udane wstrzyknięcie znacznika biotyny-dekstranu za orbitę pozwoliło na ocenę jego obecności w układzie naczyniowym mózgu w ciągu 10 minut po podaniu zaorbitalnym. Technika ta została następnie wykorzystana do wykrycia nieszczelności naczyniowej znacznika na poziomie poszczególnych naczyń krwionośnych u zwierząt z obrażeniami GMH. Wynik ten pozwala na przykład na ilościowe określenie urazu poprzez ilościowe określenie ilości naczyń krwionośnych, które przeciekają po uszkodzeniu mózgu GMH.

Ponadto procedura ta może być również wykonywana bez źródła światła, co czyni ją prostą, nieskomplikowaną i powtarzalną techniką, która umożliwia podawanie związku bezpośrednio do krążenia żylnego noworodków szczurów i myszy. Przy prawidłowym wykonaniu zabieg ten nie powinien powodować żadnych działań niepożądanych. Ten korzeń podania umożliwia wstrzykiwanie przeciwciał, komórek i innych związków bezpośrednio do krążenia sprzedawczego noworodków.

Ta droga ma większe znaczenie kliniczne w porównaniu z innymi drogami, takimi jak wstrzyknięcia dootrzewnowe lub podskórne.

Explore More Videos

Iniekcja zaoczodołowa model gryzonia noworodka krążenie żylne badania na zwierzętach wstrzyknięcie dożylne wstrzyknięcie do żyły ogonowej znieczulenie anatomia żyły oczodołowej noworodek szczura nowonarodzone myszy znieczulenie izofluranem technika iniekcji splot żylny

Related Videos

Wstrzyknięcie zaoczodołowe u dorosłych danio pręgowanego

04:50

Wstrzyknięcie zaoczodołowe u dorosłych danio pręgowanego

Related Videos

26.1K Views

Pobieranie próbek krwi za oczodołem: metoda izolowania komórek jednojądrzastych z zatoki zadoczodołowej myszy

03:18

Pobieranie próbek krwi za oczodołem: metoda izolowania komórek jednojądrzastych z zatoki zadoczodołowej myszy

Related Videos

11.4K Views

Model odwarstwienia siatkówki u gryzoni przez podsiatkówkowe wstrzyknięcie hialuronianu sodu

05:58

Model odwarstwienia siatkówki u gryzoni przez podsiatkówkowe wstrzyknięcie hialuronianu sodu

Related Videos

21.5K Views

Śródmózgowe wstrzyknięcie wirusa do mózgu nowonarodzonego myszy w celu trwałej i rozległej transdukcji neuronalnej

10:15

Śródmózgowe wstrzyknięcie wirusa do mózgu nowonarodzonego myszy w celu trwałej i rozległej transdukcji neuronalnej

Related Videos

63.9K Views

Wstrzyknięcia dożylne u nowonarodzonych myszy

05:17

Wstrzyknięcia dożylne u nowonarodzonych myszy

Related Videos

61.9K Views

Minimalnie inwazyjna technika wstrzykiwania do nerwu wzrokowego szczura

07:34

Minimalnie inwazyjna technika wstrzykiwania do nerwu wzrokowego szczura

Related Videos

10.3K Views

Model gryzoni nonartericznej przedniej niedokrwiennej neuropatii nerwu wzrokowego (rNAION)

06:49

Model gryzoni nonartericznej przedniej niedokrwiennej neuropatii nerwu wzrokowego (rNAION)

Related Videos

9.5K Views

Wstrzyknięcie dokomorowe u szczurów o niskim ryzyku wystąpienia działań niepożądanych

06:19

Wstrzyknięcie dokomorowe u szczurów o niskim ryzyku wystąpienia działań niepożądanych

Related Videos

1.8K Views

Leczenie ogólnoustrojowe dorosłych myszy po porodzie, młodych i biegowych przez wstrzyknięcie do zatoki zagałkowej

02:39

Leczenie ogólnoustrojowe dorosłych myszy po porodzie, młodych i biegowych przez wstrzyknięcie do zatoki zagałkowej

Related Videos

2.9K Views

Podejście przezspojówkowe do wstrzyknięcia do nerwu wzrokowego szczura

02:33

Podejście przezspojówkowe do wstrzyknięcia do nerwu wzrokowego szczura

Related Videos

972 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code