-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Простая генерация высокой урожайности культуры искусственных нейронов из фибробластов кожи взросл...

Research Article

Простая генерация высокой урожайности культуры искусственных нейронов из фибробластов кожи взрослого человека

DOI: 10.3791/56904

February 5, 2018

Shelby Shrigley1, Karolina Pircs1, Roger A. Barker1,2, Malin Parmar1, Janelle Drouin-Ouellet1

1Department of Experimental Medical Science, Wallenberg Neuroscience Center, Division of Neurobiology and Lund Stem Cell Center,Lund University, 2John van Geest Centre for Brain Repair & Department of Neurology, Department of Clinical Neurosciences and Cambridge Stem Cell Institute,University of Cambridge

Cite Watch Download PDF Download Material list
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

In This Article

Summary Abstract Introduction Protocol Representative Results Discussion Disclosures Acknowledgements Materials References Reprints and Permissions

Erratum Notice

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Retraction Notice

The article Assisted Selection of Biomarkers by Linear Discriminant Analysis Effect Size (LEfSe) in Microbiome Data (10.3791/61715) has been retracted by the journal upon the authors' request due to a conflict regarding the data and methodology. View Retraction Notice

Summary

Прямые нейрональных перепрограммирования генерирует нейронов, которые поддерживают возраст начала соматических клеток. Здесь мы описываем одного вектора на основе метода для создания искусственных нейронов из дермы фибробластов, полученные от взрослого человека доноров.

Abstract

Искусственных нейронов (iNs), продукт соматических клеток, непосредственно преобразованы в нейронах, являются способом для получения нейронов, пациент производные от ткани, которая легко доступна. Через этот маршрут зрелых нейронов могут быть получены в течение нескольких недель. Здесь мы описываем простых и быстрых одношаговый протокол для получения iNs от дермального фибробластов, полученные через биопсии образцы от взрослого человека доноров. Мы объяснить каждый шаг процесса, включая поддержание дермального фибробласты, процедуре замораживания для построения запас клеточной линии, заполнение ячейки для перепрограммирования, а также в условиях культуры во время процесса преобразования. Кроме того мы описываем подготовки стекла coverslips для электрофизиологических записей, долгосрочных условий покрытия и клеток активированных флуоресцированием сортируя (FACS). Мы также показываем примеры результатов можно ожидать. Протокол, описанные здесь легко выполнить, и может быть прикладной для человека фибробластов, производным от биопсии кожи человека от пациентов с различными разные диагнозы и возрастов. Этот протокол генерирует достаточное количество модулей, которые могут использоваться для широкого спектра биомедицинских приложений, включая моделирование болезней, наркотиков скрининг и целевые проверки.

Introduction

Разработка эффективных методов лечения неврологических расстройств сдерживаются ограниченным доступом к живые клетки мозга человека для выполнения механистический исследования и функциональных анализов. Около десяти лет назад эта ситуация радикально изменилась с развитием индуцированных плюрипотентных стволовых клеток (iPSCs) технологии1,2. Это, в сочетании с более глубокое понимание механизмов нейронных дифференциации, происходящих во время нормального человеческого развития, позволила для генерации определены и различных нейрональных подтипы от пациента и болезни конкретного материала. С таким материалом это теперь возможно изучить лежащие в основе неврологических заболеваний и потенциал различных соединений, чтобы облегчить эти патологические особенности3внутриклеточных механизмов.

В то время как iPSCs был революционным в области неврологии, один главный недостаток этих клеток является, что их старения подпись удаляется в процессе перепрограммирования таким образом, что помолодевшим нейрон не сохраняют уязвимость, связанная с старение4,5,6. Эта особенность нейронов, которые производятся может в конечном итоге решающее значение для изложив многие аспекты внутриклеточных патогенных Каскад, особенно в случае заболеваний, для которых старости является важным фактором риска.

Прямые, нейронные перепрограммирования – это технология, где соматической клетки преобразуется непосредственно в в без прохождения через плюрипотентных промежуточные стадии. Это позволяет для быстрого поколения человеческих нейронов в vitro который может быть как пациента, так и конкретных болезней. Замечательной особенностью прямых перепрограммирования, что начальный возраст донора клеток поддерживается, и с тем, ее уязвимость к процессы старения, таких как увеличил производство Оксидативный стресс4,7. В результате Син от больных с неврологическими заболеваниями связанные с старения, такие, как болезнь Альцгеймера и болезнь Паркинсона, хорошо подходят для широкого спектра биомедицинских приложений, включая болезни, моделирование, наркотиков скрининговых анализов и токсикологических исследований .

Основные предостережение, что помешало iNs пациентов с нейродегенеративных расстройств широко используется является, что они не являются легко перепрограммировать, и это становится еще более сложным с расширением фибробластов. В результате поколения в клетках в количествах, необходимых для этих типов приложений не был достигнут пока лишь недавно8. Теперь мы разработали простой метод для перепрограммирования фибробластов от доноров любого возраста очень эффективным образом. Этот метод сочетает в себе принудительного выражение нейрональных транскрипционных факторов, Ascl1 и Brn2 с нокдаун репрессор белки RE1 глушителей транскрипционного фактора (REST) с помощью одного вектора. Здесь мы описываем различные шаги, ведущие к поколение модулей, преобразованные из фибробластов кожи биопсию пожилых доноров.

Protocol

Взрослые фибробласты дермы были получены от исследований болезнь Паркинсона и болезнь Хантингтона клиник в центре Джона Ван Geest для ремонта мозга (Кембридж, Великобритания) и используются под местные этические утверждения (REC 09/H0311/88). Дополнительные сведения о процедуре отбора проб биопсии кожи смотрите ссылку8.

1. Подготовка фибробластов кожи для перепрограммирования

  1. С помощью автоматизированной ячейки, размораживания системы или ванну воды 37 ° C, оттепель взрослых человека фибробластов дермы (aHDFs) и тарелка 200000 в колбу (счетчик с автоматизированной клеток счетчиком) T75 в 10 мл среды фибробластов (см. таблицу 1) при 37 ° C в 5% CO2.
  2. Выполнение полного среднего изменения с фибробластов среднего на следующий день.
  3. Изменение среднего фибробластов каждые 3 – 4 дня до 95% confluency клетки.
    Примечание: Один вырожденная настой будет содержать около 1 000 000 ячеек. AHDFs могут быть заморожены построить акции клеточной линии (раздел 2) или непосредственно повторно покрытием готовых для перепрограммирования (раздел 3).

2. Замораживание фибробластов кожи

  1. Поместите контейнер контролировать скорость замораживания в коробке со льдом или в холодильнике при температуре 4 ° C.
  2. Разбить ячейки с 0,05% трипсина (1,5 мл на колбу T75) при 37 ° C для 3-5 мин.
  3. Добавьте средне фибробластов (содержащие плода бычьим сывороточным (ФБС)) для нейтрализации трипсина (3 мл очищаемых за флакон T75) и собирать отдельные ячейки в 15 мл, смыв клетки в колбу дважды.
  4. Подсчет количества ячеек, используя счетчик автоматизированных клеток; (рекомендуется) заморозить около 500 000 aHDFs за флакон.
  5. Спин вниз клетки на 400 x g за 5 мин.
  6. Ресуспензируйте Пелле клеток в 1 мл замораживания среды (см. таблицу 1) и передача в криогенных трубку. Место труб непосредственно в контролируемых скорость замораживания контейнер.
  7. Храните руемой скорости замораживания аппарат в-80 ° C на ночь. На следующий день, передача трубы в морозильной камере-140 ° C и хранить до тех пор, пока требуется.

3. покрытие для перепрограммирования (день −1)

Примечание: Рекомендуется использовать покрытие желатин для краткосрочных экспериментов (до 30 дней); Кроме того для экспериментов в долгосрочной перспективе рекомендуется начать на поли L-орнитин, фибронектин и Ламинин (PFL) покрытие.

  1. 60 мин до покрытие aHDFs для перепрограммирования, пальто 24-ну плита с 0,1% желатина (250 мкл/а) и Инкубируйте на 37 ° C.
  2. Аспирационная фибробластов средство на aHDFs. Мыть раз с DPBS. Разбить ячейки с 0,05% трипсина (1,5 мл на колбу T75) при 37 ° C для 3-5 мин.
  3. Добавьте фибробластов среднего для нейтрализации трипсина (3 мл очищаемых за флакон T75) и собирать отдельные ячейки в 15 мл, смыв клетки в колбу дважды.
  4. Спин вниз клетки на 400 x g для 5 минут удалить супернатант и Ресуспензируйте Пелле клеток в 1 мл среды фибробластов.
  5. Подсчет количества ячеек, используя счетчик автоматизированных клеток (для обеспечения хорошего качества преобразования убедитесь, что жизнеспособность клеток выше 90% с Трипановый синий окрашивание).
  6. Для полного 24-ну плита готовить подвеска 1,320,000 клеток в 13,2 мл среды фибробластов добиться приостановления 100000 клеток/мл среды (или 55 000 клеток/колодец в 550 мкл среды фибробластов, умноженное на количество скважин необходимо).
  7. Аспирационная желатин с плиты и мыть дважды с DPBS. Добавить 500 мкл суспензии клеток в каждой скважине и инкубировать на ночь при 37 ° C в 5% CO2.

4. вирусные трансдукции (день 0)

Примечание: Работа с лентивирусные частиц требует 2 категории оборудования и использования агента для нейтрализации вируса. Также настоятельно рекомендуется носить двойной пары перчаток.

  1. Разминка 13.2 мл фибробластов средних 37 ° C.
  2. Оттепель лентивирусные вектор, содержащий факторов транскрипции, Ascl1 и Brn2 с двумя шпильки короткие РНК (индуцируемый) ориентация отдых при комнатной температуре.
    Примечание: Обратитесь к ссылки8; Конструкция доступен в репозитории плазмиды. Для подробной информации о процедуре производить lentiviruses обратитесь к ссылка9.
  3. Добавьте необходимый объем человека заразить aHDFs на обилие инфекции (МВД) 20 средних без каких-либо трансдукции усилителей.
    Equation
  4. Заменить средний в пластине 24-ну фибробластов носитель, содержащий лентивирусные вектор (500 мкл/а) и инкубировать на ночь при 37 ° C в 5% CO2.
  5. Следующий день, замените свежие фибробластов среднего без лентивирусные вектор средних в скважинах.
    Примечание: Средство считается инфекционных за 7 дней и как таковой, адекватной защиты и процедуры обработки должны использоваться в течение первой недели после вирусных трансдукции.

5. техническое обслуживание преобразования ячеек

Примечание: После того, как начинается преобразование клетки чувствительны к отмене; Позаботьтесь, чтобы наконечник пластину и использовать 1000 мкл пипетки, когда удаление средств массовой информации, чтобы избежать клетки отсоединение.

  1. На 3 день, удалите средство фибробластов и 500 мкл ранних нейронов преобразования среды (см. таблицу 1).
  2. Два-три раза в неделю, вывезти 225 мкл старой среды из колодца и -в 250 мкл свежие ранних нейронов преобразования среды.
  3. В день 18, удалить все среды из каждой скважины и заменить 500 мкл конце нейрональных преобразования среды (см. таблицу 1).
  4. Продолжайте изменять половина среды как выше с конца среднего нейрональных преобразования каждые 2-3 дня до дня 25 или эксперимент конечной точки (Рисунок 1A).
    Примечание: Если не клетки покрыты в каждый хорошо для эксперимента, заполните пустые скважин с PBS или воды для предотвращения испарения открытой среды и свести к минимуму различия между скважинами.
Складе концентрация Рабочая концентрация
Средний фибробластов
Базальные среднего Н/Д Н/Д
Пенициллин/стрептомицина 10 000 ед/мл 100 мг/мл
FBS Н/Д 10%
Замораживание среднего
Средний фибробластов Н/Д 45%
FBS Н/Д 45%
ДМСО Н/Д 10%
Ранних нейронов преобразования среднего (ENM)
Нейронные дифференциации среднего Н/Д Н/Д
Пенициллин/стрептомицина 10 000 ед/мл 100 мг/мл
CHIR99021 10 мм 2 МКМ
SB-431542 20 мм 10 МКМ
Башка 100 мкг/мл 0,5 мкг/мл
LDN-1931189 10 мм 0,5 МКМ
VPA 2. 1 мм
LM-22A4 20 мм 2 МКМ
GDNF 20 мкг/мл 2 нг/мл
STN 10 мкг/мл 10 нг/мкл
DB лагерь 50 мм 0,5 мм
Конце нейрональных преобразования среднего (компании)
Нейронные дифференциации среднего Н/Д Н/Д
Пенициллин/стрептомицина 10 000 ед/мл 100 мг/мл
LM-22A4 20 мм 2 МКМ
GDNF 20 мкг/мл 2 нг/мл
STN 10 мкг/мл 10 нг/мкл
DB лагерь 50 мм 0,5 мм
СУИМ буфер
HBSS 1 x [- кальций, магний, - фенола Красного] Н/Д Н/Д
BSA Н/Д 1%
DNAase Н/Д 0,05%

Таблица 1: состав различных средств массовой информации используется. Полное описание состава для всех средств массовой информации, необходимой в настоящем Протоколе, включая средний фибробластов, замораживание среднего, ранних нейронов преобразования среды, конце нейрональных преобразования средних и СУИМ буфера.

6. стекла Coverslips для электрофизиологических записей

Примечание: Рекомендуется носить пальто лаборатории, очки, двойные перчатки и завершить всю работу в зонта. Этот протокол является адаптирована из 10.

  1. Место coverslips стекла в нижней части стекла блюдо без перекрытия.
  2. Добавление общего Лаборатория очистки моющим средством, чтобы потопить все coverslips без рискуя переполнения во время встряхивания (около 30 мл). Поместите на орбитальный шейкер на медленной скорости за 2 ч.
  3. Вымойте шесть раз (30 мин) автоклавного деионизированной водой.
  4. Добавьте этанола 95% за 2 ч.
  5. Удаление этанола и ждать, пока coverslips сухой.
  6. После высыхания, передачи coverslips в стеклянный стакан и добавить 70% азотной кислоты, до тех пор, пока coverslips погружены.
  7. Место стеклянный стакан в sonicator ванну для 60 мин.
  8. Удаление азотной кислоты и мыть три раза газобетона деионизированной водой.
    Предупреждение: Всегда добавьте кислоты воду, никогда не другой путь вокруг, как это может привести к бурной реакции.
  9. Удалить столько воды из стакана как можно и добавить концентрированной соляной кислоты (HCI), до тех пор, пока coverslips будут погружены в воду; водоворот, стакан и крышку с парафином фильм.
  10. Sonicate 60 мин (50 – 60 Гц, 30 Вт).
  11. Удалите столько HCI из coverslips как можно скорее и место в соответствующей мусорное ведро. Промыть газобетона деионизированную воду дважды.
  12. Взять coverslips из капюшона и промыть 20 раз (или более) автоклавного деионизированной воды до тех пор, пока все HCI будет удалена.
  13. После высыхания, место coverslips в стерильных пластин 24-хорошо.
  14. Поместите пластины под ультрафиолетового (УФ) света на ночь. Следующий день coverslips готовы к использованию.
    Примечание: Если используется стекло coverslips, рекомендуется использовать покрытие PFL. Просто поместите один coverslip в каждую лунку 24-ну плиты (с использованием стерильный пинцет) и следовать протоколу как показано ниже.

7. PFL покрытие для долгосрочной перспективе культуры

  1. Слой 24-ну пластины с поли L-орнитин (500 мкл/а) и оставить на ночь при 37 ° C в 5% CO2.
  2. Аспирационная поли L-орнитин и подождать до тех пор, пока он достаточно сухой, в форме капель на вершине.
  3. Сделайте падение (примерно 60 мкл) Ламинин в центре каждого Ну и распространился на всю поверхность coverslip. Оставьте на 2 ч 45 мин при 37 ° C в 5% CO2.
  4. Промыть DPBS три раза.
  5. Добавить фибронектина (500 мкл/а) и оставить на ночь при 37 ° C в 5% CO2.
  6. Мыть раз с DPBS перед добавлением клетки.
    Примечание: PFL покрытие может использоваться для долгосрочной термин культуры iNs (свыше 100 дней), хотя прогрессивный клеточную смерть следует ожидать от дня 30.

8. СУИМ

Примечание: Чтобы повторно пластины клетки после СУИМ сортировки PFL-покрытием плиты 48 h заранее подготовить. Клетки могут быть отсортированы с помощью нейронных клеток сцепления молекул (NCAM) антитела от 20-й день года после трансдукции.

  1. Удалите средства массовой информации с 1000 мкл пипетки (не мыть, чтобы избежать отсоединение клетки).
  2. Добавить ячейку отделения агент (250 мкл/а), оставить на 10-20 мин до клетки лифта и поплавок как отдельные клетки.
  3. В это время подготовьте СУИМ буфера.
  4. Нарезанных нежно с 1000 мкл пипетки. Если остаются некоторые сгустки, Инкубируйте немного дольше.
  5. Как только одну ячейку подвеска получается, удалите его из скважины и место в 1,5 мл трубку.
  6. Заподлицо хорошо дважды с конца нейрональных преобразования средних и место в том же 1,5 мл трубку.
  7. Спин вниз на 400 g x 5 минут и удалить супернатант.
  8. Ресуспензируйте Пелле клеток в 200 мкл буфера СУИМ.
  9. Спин вниз клетки на 400 g x 5 минут и удалить супернатант.
  10. Повторите шаги 8.8 и 8,9 дважды.
  11. Ресуспензируйте Пелле клеток в 50 мкл буфера СУИМ, содержащих человеческие антитела CD56 (NCAM) в концентрации 1:50 для 15 мин на льду. Защищайте от света.
  12. Спин вниз клетки на 400 x g за 5 мин.
  13. Ресуспензируйте 200 мкл буфера СУИМ мыть и спин вниз клетки на 400 x g за 5 мин.
  14. Повторите шаг 8.13.
  15. Ресуспензируйте в 200 мкл буфера СУИМ, содержащий пропидий йодидом (PI; 10 мкг/мл). Сортировать NCAM положительные (iNs) и PI отрицательные (live) клетки с помощью СУИМ, строб, основанный на уровень интенсивности флуоресценции контрольных образцов, которые не были окрашены с NCAM антитела или PI.
  16. Соберите NCAM положительные клетки в тубы конце среднего нейрональных преобразования.
  17. Подсчет количества ячеек, используя счетчик автоматизированных клеток и повторно пластины клетки на высокой плотности (50 000 клеток/см2) в конце среднего нейрональных преобразования в блюдо PFL покрытием.
  18. Продолжайте изменять половина среды 2 – 3 раза в неделю с конца нейрональных преобразования среднего до конечной точки эксперимента (рис. 1A).

Representative Results

Четкое изменение в морфологии клеток должен быть виден с дня 5 года (рис. 1B). Некоторые смерти клетки ожидается после вирусных трансдукции, хотя не открыто. От каждой скважины в пластине 24-ну ячейке доходность 20 000-40 000 ячеек следует ожидать в день 25, из которых около половины должен был стать нейронов. Важно отметить, что урожайность и чистоты может варьироваться по всей линии клеток, а также с сериями государства и вирус болезни.

Клетки будут выражать большинство стандартных маркеров нейронов, включая MAP2 и Тау (рис. 1 c) на день 25 в дополнение к выставке зрелых нейронов морфологии. Это позволяет получить чистый населения, делая СУИМ, основанные на маркер NCAM (см. ссылки8,11). Клетки могут впоследствии быть либо повторно покрытием на тройной покрытия PFL (см. ссылку10) или непосредственно замороженных биомолекулярных анализа.

Если клетки не сортируются, иммунофлюоресценции маркировки с MAP2 или Тау должны быть выполнены для идентификации успешно преобразованных ячеек и совместно помечены протеина интереса.

Figure 1
Рисунок 1: эволюция в преобразования над временем. (A) Хронология эксперимент и карта конструкции, упакованы в Лентивирусы, используемый для перепрограммирования взрослых фибробластов дермы. Каждая черная стрелка представляет собой средний изменение. (B) представитель этап контрастность изображения изображающие изменениям в морфологии клеток во время процесса преобразования между день 0 день 22 (как указано в верхнем правом углу каждой группы). Изображения были взяты на микроскопе контраст фазы с использованием 10 X цель. (C) образ иммунофлюоресценции Тау и MAP2 двойной пятнать в день 35 после трансдукции. Клетки были зафиксированы в параформальдегида 4% и permeabilized с 0,1% Тритон в DPBS за 10 мин клетки были заблокированы на 30 мин в сыворотке 5% раствор в DPBS. Антитела были разводят в преграждая разрешение и применяется на ночь при 4 ° C. Флюорофор конъюгированных вторичные антитела были разводят в преграждая разрешение и применять за 2 ч. клетки были counterstained с DAPI 15 мин, следуют 3 стирок с DPBS. Изображения были взяты на Перевернутый флуоресценции микроскопа с помощью 20 X цель. Масштаб баров = 100 мкм (B, C). Сокращения: ENM: ранних нейронов среднего; LNM: поздно нейронов среднего. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Discussion

Авторы не имеют ничего сообщать.

Disclosures

Прямые нейрональных перепрограммирования генерирует нейронов, которые поддерживают возраст начала соматических клеток. Здесь мы описываем одного вектора на основе метода для создания искусственных нейронов из дермы фибробластов, полученные от взрослого человека доноров.

Acknowledgements

Мы благодарим Мария Перссон Vejgården для оказания технической помощи. Исследований, приведших к эти результаты получил финансирование от Нью-Йоркского фонда стволовых клеток, Европейский исследовательский совет по седьмой рамочной программы Европейского союза: FP/2007-2013 нейро стволовых клеток ремонт (№ 602278) и КЧП Грант соглашения нет. 30971, Шведский исследовательский совет (грантовое соглашение 521-2012-5624, 2016-00873 и 70862601 / Bagadilico), Шведский фонд Паркинсона (Parkinsonfonden) и стратегическая область исследований в Лундском университете Multipark (междисциплинарных исследований в Болезнь Паркинсона). Джанель Drouin-Уэлле поддерживается стипендий Канадского институтов здравоохранения исследований (КНИИЗ) (#358492), и Роджер Баркер поддерживается грантом NIHR центр биомедицинских исследований в университете в Кембридже/Адденбрукс. Малин Parmar является следователь Робертсон фонд стволовых клеток Нью-Йорке. Шелби Shrigley финансируется программой Европейского союза Horizon 2020 (H2020-МСКА-ITN-2015) под Марии Склодовской-Кюри инновационной учебной сети и Грант соглашение № 676408.

Materials

Контроллер для пипеток
<сильно>клеточные линии
Дермальные фибробласты взрослого человека [C2 отрывок #7] Донором была 67-летняя женщина. Клетки, полученные в результате болезни Паркинсона Исследования болезней и Гентингтона Клиники болезней в Центре восстановления мозга им. Джона ван Геста (Кембридж, Великобритания).
<сильно>реагенты для культивирования, трансдукции и конверсии фибробластов
фосфатно-солевой буфер Дульбекко (DPBS) [-CaCl2, -MgCl2]Gibco14190094
Trypsin-EDTA [0,5%]Gibco15400-054Разведите до 0,05% в DPBS.
Виркон (средство для нейтрализации вируса) Виродерм7511 Разведите до 1% раствора теплой водой.
Milli-Q ВодаMillipore
Basal medium - Dulbecco' s Модифицированная среда Eagle (DMEM) + GlutaMaxGibco61965059
пенициллин/стрептомицин [10,000 ед/мл]Gibco15140-122
Фетальная бычья сыворотка (FBS)Gibco10270-106
CryoMACS®   диметилсульфоксид (ДМСО) 10Милтеньи170-076-303
<сильный>Среда нейронной дифференцировки - NDiff 227Takara-ClontechY40002
LM-22A4 Tocris4607Разбавить 10 мг в 1450 & микро; L ДМСО. <сильно>стоковая концентрация: 20 мМ.фактор
нейротрофического фактора глиальной клеточной линии (GDNF) [рекомбинантный человеческий]R& D системы212-GD-010Разбавить 10 мкг в 500 мк; L 0,1% BSA в DPBS. Stock Концентрация: 20 &м; г/мл. 
NT3 [рекомбинантный человек]R& D системы267-N3-025Разбавить 25 & микро; г в 2,5 мл 0,1% BSA в DPBS. Stock Концентрация: 10 &m; г/мл. 
db-cAMP Sigma AldrichD0627Развести 1 г в 40,7 мл воды Milli-Q. Фильтруем и делаем 500 & микро; L аликвоты или стоковые пробирки по 10 мл. <Концентрация > сильных: 50 мМ.
CHIR99021Axon1386Dilute 2 &микро; г в 429,8 & микро; L ДМСО. Концентрация <сильных>стоковых: 10 мМ.
SB-431542Axon1661Разбавить 5 мг в 595 &микро; L ДМСО. <Концентрация > сильныхзапасных: 20 мМ. 
Noggin [рекомбинантный человек]Miltenyi130-103-456Dilute 100 µ g в 100 и микро; л воды Milli-Q + 900 &; L 0,1% BSA в DPBS. Stock Концентрация: 100 &m; г/мл.
LDN-193189Аксон1509Развести 2 мг в 360 &микро; L ДМСО. <сильно>стоковая концентрация: 10 мМ.
вальпроевая кислота натриевая кислота (ДПА)Merck Millipore676380Разведите 5 г в воде Milli-Q для достижения концентрации <сильно> 1 м. ВНИМАНИЕ: Избегайте приема внутрь, контакта с кожей и вдыхания образования пыли.
<сильно>реагенты для покрытий
желатин;Sigma AldrichG2500развести до 0,1% в воде Milli-Q.
Поли-L-орнитинSigma AldrichP3655растворить в воде Milli-Q. <сильно>Использовать при 15&м; г/мл. 
ФибронектинThermoFisher Scientific33010-0182 мл воды Milli-Q + 70 &; Л 0,25 М NaOH. <сильный>Используйте при 5 и микро; г/мл. 
LamininThermoFisher Scientific23017-015Хранить при -80°C. Разморозить на льду, хранить в прохладе и использовать 30 &ΰL. Использовать при 5 &m; г/мл. 
<сильный>реагенты для сортировки флуоресцентно активированных клеток
клеточный диссоциатор - Аккутаза (Stem Pro)ThermoFisher ScientificA1110501
Сбалансированный раствор соли Хэнкса (HBSS) 1X [-кальций, -магний, - феноловый красный]ThermoFisher Scientific14175-046
Бычий сывороточный альбумин (БСА)Sigma AldrichA2153Используйте в 1% концентрации для античеловеческого CD56 (NCAM).
ДНКазаСигма ОлдричDN-25Использовать в концентрации 0,05%.
Антитело к человеческому CD56 (NCAM) [мышь]BD фарминген555518применение в 1 : 50.
Йодид пропидияSigma AldrichP4170разбавить до 1 мг/мл в PBS и хранить стерильным. <сильно>Использовать в дозе 1:1000 для достижения концентрации 10&м; г/мл.
<сильный>Реагенты для стеклянных покровных стекол
автоклавный деионизированный вода
моющее средство AlconoxSigma AldrichZ273228
этанол 95%
азотной кислотыSigma Aldrich438073-M<сильно>ВНИМАНИЕ: Концентрированная азотная кислота очень агрессивна, и ее пары потенциально вредны.
Концентрированная соляная кислота (HCI)<сильная>ВНИМАНИЕ: Концентрированная соляная кислота обладает высокой коррозионной активностью, и ее пары потенциально вредны.
<сильно>Реагенты для иммуноцитохимии
Параформальдегид (PFA)Merck Millipore1040051000Используйте в концентрации 4%. <сильно>ВНИМАНИЕ: PFA является мощным фиксатором. Избегать попадания внутрь и попадания на кожу
Triton X-100Fisher Scientific10254640Использовать в концентрации 0,1%.
Сыворотка [Осел]Merck MilliporeS30-100ML
Anti-MAP2 Антитела [Курица]Abcamab5392Используйте в концентрации 1 : 5,000.
Моноклональное антитело Tau HT7 [мышь]ThermoFisher ScientificMN1000Применение в концентрации 1 : 500.
Антитела к курице Cy3 [Donkey]Jackson ImmunoResearch703-165-155Применение в концентрации 1 : 400.
Alexa Fluor488 Anti-Mouse Антитела [Donkey]Jackson ImmunoResearch715-545-150Применение в концентрации 1 : 400.
4′,6-Diamidine-2′-фенилиндола дигидрохлорид (DAPI)Sigma AldrichD9542Восстановите порошок в воде Milli-Q до 1 мг/мл. Аликвот и хранить при -20°С; C, <сильный>светочувствительный. Используйте в концентрации 1 : 500.
Equipment
T75 колба [Nunclon Delta Surface]ThermoFisher Scientific156499
24-луночная пластина [Nunc]ThermoFisher Scientific142485
1,5 мл полипропиленовая трубкаSigma AldrichZ336769
15 мл соколиная трубка Sarstedt62.554.502
50 мл соколиная трубка Sarstedt62.547.254
Пробирка CryoPure 1,6 млSarstedt72.380
PippetteДля пипетирования объемом 1-25 мл.
Стерильные серологические пипетки: 5, 10 и 25 мл&nbл;Sarstedt86.1253.001, 86.1254.001, 86.1685.001
Дозаторы регулируемого объема: 5, 20, 200 и 1 000 &; Л 
Стерильные наконечникиДля дозирования объемом 0,5 - 1 000 мкл.
Стеклянные покровные стеклаNeuVitroGG-12-1.5-oz #1.5 толщина, диаметр 12 мм, 0.5oz, сертифицированы CE, подходят для 24 луночных планшетов.
Стеклянная тарелкадиаметром около 150 мм.
Стеклянный стаканУбедитесь, что у вас есть стакан подходящего размера для ванны с ультразвуковым аппаратом. Вода из ванны с ультразвуковым аппаратом не должна переливаться в стеклянный стакан.
Parafilm MVWR
ThawSTAR Автоматизированная система размораживания клетокBioCisionBCS-601
Countess II Автоматизированный счетчик клетокThermoFisher ScientificAMQAX1000
Камеры для подсчета клеток [50 слайдов] и трипан синий [0,4%]ThermoFisher ScientificC10228Для использования с автоматизированным счетчиком клеток Countess II.
CoolCell Cell LX Контейнер для заморозки с регулируемой скоростьюBiocisionBCS-405
Ламинарный колпак
Увлажненный 5% CO2 37 ° C инкубатор
ЦентрифугаПодходит для пробирок объемом 1,5, 15 и 50 мл.
Орбитальный шейкер
Sonator - Bransonic Model B200 очистительSigma AldrichZ305359Частота = 50-60 Гц, амплитуда = 30 Вт
FACS Сортировщик клеток Aria IIIBD Pharmingen
Фазово-контрастный микроскопOlympusCKX31
Инвертированный флуоресцентный микроскопLeicaDMI6000 B

References

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131, 861-872 (2007).
  3. Avior, Y., Sagi, I., Benvenisty, N. Pluripotent stem cells in disease modelling and drug discovery. Nat Rev Mol Cell Biol. 17, 170-182 (2016).
  4. Mertens, J., et al. Directly Reprogrammed Human Neurons Retain Aging-Associated Transcriptomic Signatures and Reveal Age-Related Nucleocytoplasmic Defects. Cell Stem Cell. 17, 705-718 (2015).
  5. Hashizume, O., et al. Epigenetic regulation of the nuclear-coded GCAT and SHMT2 genes confers human age-associated mitochondrial respiration defects. Sci Rep. 5, 10434 (2015).
  6. Lapasset, L., et al. Rejuvenating senescent and centenarian human cells by reprogramming through the pluripotent state. Genes Dev. 25, 2248-2253 (2011).
  7. Huh, C. J., et al. Maintenance of age in human neurons generated by microRNA-based neuronal conversion of fibroblasts. Elife. 5, (2016).
  8. Drouin-Ouellet, J., et al. REST suppression mediates neural conversion of adult human fibroblasts via microRNA-dependent and -independent pathways. EMBO Mol Med. , (2017).
  9. Tiscornia, G., Singer, O., Verma, I. M. Production and purification of lentiviral vectors. Nat Protoc. 1, 241-245 (2006).
  10. Richner, M., Victor, M. B., Liu, Y., Abernathy, D., Yoo, A. S. MicroRNA-based conversion of human fibroblasts into striatal medium spiny neurons. Nat Protoc. 10, 1543-1555 (2015).
  11. Lau, S., Rylander Ottosson, D., Jakobsson, J., Parmar, M. Direct neural conversion from human fibroblasts using self-regulating and nonintegrating viral vectors. Cell Rep. 9, 1673-1680 (2014).
  12. Pfisterer, U., Wood, J., Nihlberg, K., Hallgren, O., Bjermer, L., Westergren -Thorsson, G., Lindvall, O., Parmar, M. Efficient induction of functional neurons from adult human fibroblasts. Cell Cycle. 10, 3311-3316 (2011).
  13. Caiazzo, M., Dell'Anno, M. T., Dvoretskova, E., Lazarevic, D., Taverna, S., Leo, D., Sotnikova, T. D., Menegon, A., Roncaglia, P., Colciago, G., Russo, G., Carninci, P., Pezzoli, G., Gainetdinov, R. R., Gustincich, S., Dityatev, A., Broccoli, V. Direct generation of functional dopaminergic neurons from mouse and human fibroblasts. Nature. 476, 224-227 (2011).
  14. Masserdotti, G., Gascón, S., Götz, M. Direct neuronal reprogramming: learning from and for development. Development. 143, 2494-2510 (2016).
  15. Pereira, M., Pfisterer, U., Rylander, D., Torper, O., Lau, S., Lundblad, M., Grealish, S., Parmar, M. Highly efficient generation of induced neurons from human fibroblasts that transplantation into the adult rat brain. Sci Rep. 4, 6330 (2014).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission

Play Video

Простая генерация высокой урожайности культуры искусственных нейронов из фибробластов кожи взрослого человека
JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code