-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Первичные культуры взрослых Миоциты сердца крысы
Первичные культуры взрослых Миоциты сердца крысы
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Primary Culture of Adult Rat Heart Myocytes

Первичные культуры взрослых Миоциты сердца крысы

Full Text
20,619 Views
11:44 min
June 16, 2009

DOI: 10.3791/1308-v

Xianghua Xu1, Henry M. Colecraft1,2

1Department of Physiology and Cellular Biophysics,Columbia University, 2Department of Pharmacology,Columbia University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

В этой статье мы описали типичный способ, чтобы изолировать и культуры взрослых миоцитах сердца крысы. Коллагеназы и протеаз, которые используются, чтобы переварить и выделить одного миоцитов. Миоциты культурный следовать этому протоколу отвечает большинству требований эксперимента.

Transcript

Процедура начинается с иссечения сердца у взрослой крысы и подвешивания его на перфузионной системе. Ферментным растворам дают перфузировать около 30 минут, после чего удаляют сердце. Измельченное и ферментативное пищеварение позволяет продолжить в небольшом стакане.

В конце разложения клетки диссоциируются в одноклеточную суспензию путем механического перемешивания и фильтруются в стерильную пробирку. Первичные клетки сердца трижды промывают в буферах с возрастающей концентрацией кальция, ресуспендируют в культуре в среде и наносят на посуды для культуры тканей, покрытые ламинатом. Привет, я Шахи из лаборатории Генри Коуа на кафедре физиологии и клеточной физики Колумбийского университета.

Сегодня мы покажем вам процедуру выделения и культивирования других клеток сердца крысы. Мы используем эту процедуру в нашей лаборатории для изучения кальциевых каналов в сердце. Итак, приступим.

За день до операции на крысах убедитесь, что все растворы готовы, но пока не добавляйте никаких ферментов. Буферы А В и промывочный буфер должны быть отфильтрованы на стерильность перед хранением при четырех градусах Цельсия. В-шестых, планшеты для культивирования тканей также должны быть покрыты раствором ламината накануне и храниться при температуре 37 градусов Цельсия в CO2-инкубаторе.

В день операции. Подготовьте хирургические инструменты, продезинфицировав зажимные ножницы и щипцы с 70% этанолом, и дайте им высохнуть на бумажном полотенце. Делается готовым шприц объемом в один миллилитр, наполненный половиной миллилитра раствора гепарина.

В настоящее время хорошей практикой является промывка перфузионного аппарата, проходящего через 70% этанол, перистальтическим насосом в обратном направлении. После завершения, промывка этанолом, ополаскивание аппарата двойной дистиллированной водой и, наконец, промывка буфером А. Проточный поток собирается в стакан и помещается на водяную баню при температуре 37 градусов Цельсия. Чтобы подготовить очищенный аппарат, заполните правую трубку шприца 40 миллилитрами буфера А, а левую шприц-трубку - 40 миллилитров буфера В. Подготовьте перфузионную трубку к кончику катетера, позволив буферу А протекать через аппарат.

Наполните буфер шприцем до уровня 40 миллилитров. Убедитесь, что после этого шага в трубке нет пузырьков воздуха, теперь перекройте буфер шприцем с клапаном запорного крана и повторите процесс таким образом, чтобы трубка для обильности теперь была заполнена буфером B. Аппарат для обильности окончательно готов и остается с буфером. B Запорный кран клапана открывается, но подача прекращается.

С помощью регулятора на внутривенной линии отбросьте буферный поток в сборном стакане. Последнее, что нужно сделать перед операцией, это добавить необходимые ферменты в исходный раствор, а затем отфильтровать ферментный раствор так же, как другие растворы были отфильтрованы накануне. После фильтрации этот раствор можно оставить при комнатной температуре в соответствии со стандартным протоколом.

Усыпьте крысу изофтором в газовой камере. Продезинфицируйте область разреза на грудной клетке с помощью 70% этанола. Откройте грудную клетку с помощью ножниц и обнажите сердце.

Введите в левый желудочек 0,5 миллилитра раствора гепарина. Удалите сердце с неповрежденной большой частью аорты. Немедленно введите катетер в аорту.

Типичное сердце крысы должно давать высокую долю здоровых палочковидных миоцитов и небольшое количество мертвых округлых клеток. Если следующая процедура соблюдена правильно, для начала прижмите аорту к катетеру. Кончик катетера не должен проталкиваться слишком глубоко внутрь сердца, чтобы обеспечить хорошую перфузию сердца через коронарную артерию.

После пережатия перевязать аорту к катетеру с помощью шва. Затем откройте регулятор внутривенной линии, чтобы обеспечить быструю скорость капания и позволить буферной пчеле промыть сердце во время промывки буферной пчелой. С помощью маленьких ножниц и щипцов удалите предсердия и любую жировую или легочную ткань, прилипающую к сердцу.

После того как буфер B будет завершен, переключите поток на некоторое время в положение буфера. Буферу А дают течь в течение пяти минут. Подогрейте ферментный раствор на водяной бане при температуре 37 градусов Цельсия.

Когда буфер А исчерпан из шприца, но все еще присутствует в трубке, в шприц А аппарата для обильного питания поступает 50 миллилитров раствора фермента. Теперь необходимо отбросить весь поток из стакана на водяной бане до тех пор, пока ферментный раствор не проникнет в сердце. Как только ферментный раствор проникнет в сердце, активируйте перистальтический насос, который настроен на перенос ферментного раствора из сборного стакана в пополняемый шприц.

Дайте ферментному раствору протекать через сердце в течение 10 минут. По мере того, как сердце переваривается, оно начинает выглядеть вздутым при приеме 37,5 микролитров 0,1 молярного хлорида кальция на раствор фермента в шприце А, чтобы дать эффективную концентрацию 0,1 миллимолярного кальция. Это первое из нескольких добавлений хлорида кальция, используемых для увеличения концентрации через 10 минут, увеличения концентрации кальция до 0,2 миллимоляра путем добавления дополнительных 50 микролитров 0,1 молярного хлорида кальция в шприц А и продолжения производства в течение следующих 10 минут.

По прошествии 10 минут отрежьте желудочки и переложите сердце в небольшой стерильный стакан, содержащий в стакане 20 миллилитров раствора фермента. Увеличьте концентрацию кальция до 0,4 миллимоляра, добавив еще 40 микролитров 0,1 моляра хлорида кальция, аккуратно измельчите сердце на 10 или более кусочков с помощью пары небольших стерильных ножниц. Теперь инкубируйте стакан при температуре 37 градусов Цельсия с легким покачиванием.

После пяти минут инкубации добавьте 40 микролитров 0,1 молярного хлорида кальция, чтобы получить эффективную концентрацию 0,6 миллимоляра кальция, и аккуратно перемешайте кусочки сердца с помощью пластиковой переводной пипетки от трех до пяти раз после инкубации в течение дополнительных пяти минут при 37 градусах Цельсия, добавьте 40 микролитров 0,1 молярного хлорида кальция и аккуратно повторите, как раньше. Используйте стерильный фильтр 500 микрометров, чтобы отделить переваренные отдельные миоциты от непереваренной соединительной ткани. Дайте клеткам отстояться в 50-миллилитровой пробирке в течение 10 минут при комнатной температуре. Выбросьте надосадочную жидкость с помощью переноса VI Осторожно восстановите клетки в промывном буфере номер один и дайте клеткам отстояться от 10 до 20 минут при комнатной температуре, пока клетки оседают.

Возьмите небольшую аликвоту и используйте это время как возможность оценить качество и жизнеспособность клеток в суспензии под перевернутым микроскопом. Хороший препарат должен иметь высокую долю стержневидных клеток с четкими бороздками. Как только клетки осядут, выбросьте снаут и аккуратно восстановите клетки в буфере для промывки.

Номер два, дайте клеткам отстояться при комнатной температуре, на что опять же должно уйти от 10 до 20 минут и выбросьте надосадочную жидкость. Осторожно ресуспендируйте клетки в 5% сывороточной среде перед переносом клеток в планшеты для культуры тканей. Вымойте пластины одним XSFM.

Перенесите клетки с желаемой плотностью и инкубируйте в инкубаторе для культур тканей CO2. В течение трех-пяти часов переключите среду на одну XSFM-клетку, которую можно культивировать в течение четырех дней и использовать по мере необходимости для экспериментов. При правильном выполнении протокола под инвертированным микроскопом должно быть более 70% живых миоцитов сердца.

Это изолированные миоциты, трансфицированные YFP REM после культивирования в течение 48 часов. Клетки этого качества обычно культивируются с помощью этой процедуры. Мы просто покажем вам, как изолировать и культивировать эти горячие клетки.

При выполнении этой процедуры важно помнить, что нужно быть как можно быстрее и аккуратнее. Вот и все. Спасибо за просмотр и удачи в ваших экспериментах.

Explore More Videos

Клеточной биологии выпуск 28 Крыса сердце изоляции первичной культуре кардиологии

Related Videos

Выделение и Культура неонатологическую мыши кардиомиоцитов

07:50

Выделение и Культура неонатологическую мыши кардиомиоцитов

Related Videos

63.7K Views

Изоляция, культура и функциональная характеристика взрослой мыши Cardiomyoctyes

12:49

Изоляция, культура и функциональная характеристика взрослой мыши Cardiomyoctyes

Related Videos

24.9K Views

Выделение и Культура взрослой мыши кардиомиоцитов для клеточной сигнализации и В пробирке Гипертрофия сердца

06:51

Выделение и Культура взрослой мыши кардиомиоцитов для клеточной сигнализации и В пробирке Гипертрофия сердца

Related Videos

48.2K Views

Выделение и криоконсервация новорожденной крысы кардиомиоцитов

07:05

Выделение и криоконсервация новорожденной крысы кардиомиоцитов

Related Videos

12.9K Views

Изоляция, культуры и трансдукция взрослых мышей кардиомиоцитов

08:42

Изоляция, культуры и трансдукция взрослых мышей кардиомиоцитов

Related Videos

27.6K Views

Одновременная изоляция высококачественных кардиомиоцитов, эндотелиальных клеток и фибробластов от сердца взрослых крыс

09:38

Одновременная изоляция высококачественных кардиомиоцитов, эндотелиальных клеток и фибробластов от сердца взрослых крыс

Related Videos

13.8K Views

Изоляция и выращивания взрослых крыс кардиомиоцитов

11:06

Изоляция и выращивания взрослых крыс кардиомиоцитов

Related Videos

16.2K Views

Изоляция предсердий кардиомиоцитов из крыса модели метаболических связанных с синдром сердечной недостаточности с фракция изгнания сохранившихся

08:31

Изоляция предсердий кардиомиоцитов из крыса модели метаболических связанных с синдром сердечной недостаточности с фракция изгнания сохранившихся

Related Videos

10.5K Views

Изоляция, трансфекция и долгосрочная культура взрослых мышей и крысиных кардиомиоцитов

09:17

Изоляция, трансфекция и долгосрочная культура взрослых мышей и крысиных кардиомиоцитов

Related Videos

9.8K Views

Одновременно изоляция и культура миоцитов предсердий, желудочковых миоцитов и немиоцитов из сердца взрослой мыши

11:53

Одновременно изоляция и культура миоцитов предсердий, желудочковых миоцитов и немиоцитов из сердца взрослой мыши

Related Videos

7.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code