RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Начните с ганглия дорсального корешка или тканей DRG в среде, не содержащей сыворотки. Ткань DRG содержит сенсорные нейроны и сателлитные глиальные клетки, встроенные во внеклеточный матрикс, ECM.
Высадите их на чашку для культуры, покрытую смесью студенистого белка для улучшения адгезии к тканям.
Со временем глиальные клетки высвобождают нейротрофические факторы роста, которые позволяют расширять нейроны, создавая культуру эксплантов DRG.
Чтобы получить диссоциированную клеточную культуру, возьмите эти экспланты DRG в пробирке. Лечите их коллагеназой для разрушения ВКМ, а затем трипсином, который нарушает клеточные связи, высвобождая нейроны и глиальные клетки.
Добавьте среду, обогащенную сывороткой, чтобы остановить ферментативную реакцию.
Пипетируйте содержимое несколько раз, чтобы создать одноклеточную суспензию, и отфильтруйте ее, чтобы удалить мусор.
Центрифугируйте эту клеточную суспензию и удалите надосадочную жидкость, содержащую фермент
.Ресуспендируйте клетки в нейробазальной среде и перенесите их на пластину, покрытую ламинином.
Сателлитные глиальные клетки и сенсорные нейроны прилипают к пластине, покрытой ламинином, образуя диссоциированную клеточную культуру.
Переложите каждую DRG в сухую стеклянную чашку Петри. Под хирургическим микроскопом очистите и обрежьте лишние волокна и соединительную ткань, все еще прикрепленные к DRG, с помощью лезвия. DRG легко идентифицировать как выпуклую, прозрачную структуру вдоль белого спинномозгового нерва, и часто встречаются кровеносные сосуды, окружающие DRG.
После этого поместите очищенное до DRG вещество в новую чашку Петри, содержащую ледяную среду без сыворотки. Разведите смесь желатиновых белков в ледяной среде, не содержащей сыворотки, в соотношении 1 к 1. Затем поместите DRG ex vivo в 12-луночные планшеты, предварительно покрытые 10 или 20 микролитрами смеси желатиновых белков, и держите их при температуре 37 градусов Цельсия в течение 30-60 минут.
Теперь аккуратно добавьте от 1,5 до 2 миллилитров бессывороточной среды в систему культивирования, чтобы покрыть весь эксплант и поддерживать экспланты в условиях культивирования. Меняйте питательную среду DRG каждые 72 часа. и пусть ДРГ растет столько, сколько нужно.
Это критически важный этап, поскольку DRG крепится к стеклянной пластине с помощью смеси желатиновых белков. Поэтому время полимеризации и навыки пипетирования имеют решающее значение для предотвращения всплытия.
При этой процедуре поместите все собранные DRG в 1,5-миллилитровую стерильную пробирку с F12 средой, содержащей коллагеназу IV, и инкубируйте ее при температуре 37 градусов Цельсия в течение 45 минут. После этого замените свежую среду, содержащую коллагеназу внутривенно, и инкубируйте образец еще 45 минут. Затем обработайте экспланты 2 миллилитрами среды F12, содержащей 0,025% трипсина, при температуре 37 градусов Цельсия в течение 30 минут.
Сразу после внутривенного введения коллагеназы инкубируйте их с 2 миллилитрами среды F12, содержащей фетальную бычью сыворотку при температуре 37 градусов Цельсия, в течение 15 минут. После этого трижды промойте экспланты 2 миллилитрами среды F12 и приступайте к их механической диссоциации стеклянной пипеткой, пока среда не помутнеет.
После этого отфильтруйте диссоциированную клеточную культуру через фильтр 0,22 микрометра, чтобы удалить любые загрязнения и излишки соединительной ткани. Затем центрифугируйте отфильтрованный лизат клеток в течение двух минут. Удалите надосадочную жидкость и ресуспендируйте клеточную гранулу в 500 микролитрах нейробазальной среды. Поместите диссоциированные клетки на покрытые ламинином покровные стекла с желаемой плотностью клеток.
Related Videos
07:51
Related Videos
10.2K Views
11:36
Related Videos
9.8K Views
08:57
Related Videos
2.5K Views
09:42
Related Videos
27.1K Views
04:25
Related Videos
705 Views
05:34
Related Videos
956 Views
02:11
Related Videos
507 Views
05:18
Related Videos
573 Views
09:17
Related Videos
21.8K Views
09:48
Related Videos
8.8K Views