-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
В пробирке Organoid культуры первичных опухолей толстой мыши
В пробирке Organoid культуры первичных опухолей толстой мыши
JoVE Journal
Medicine
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Medicine
In vitro Organoid Culture of Primary Mouse Colon Tumors

В пробирке Organoid культуры первичных опухолей толстой мыши

Full Text
35,640 Views
07:33 min
May 17, 2013

DOI: 10.3791/50210-v

Xiang Xue1, Yatrik M. Shah1,2

1Department of Molecular & Integrative Physiology,University of Michigan , 2Department of Internal Medicine, Division of Gastroenterology,University of Michigan

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Простой способ создать первичные мышиные опухоли толстой кишки органоид описано. Этот метод использует функцию, что клетки опухоли толстой кишки выжить и развиваться в органоидов в средах, содержащих ограниченные факторы роста, в то время как нормальные эпителиальные толстой кишки нет.

Общая цель этой процедуры заключается в установлении органоидов опухолей первичной нервной кишки. Это достигается путем предварительного сбора опухолевой ткани толстой кишки мыши. Вторым шагом является диссоциация прилегающего нормального эпителия толстой кишки.

Далее опухолевые клетки толстой кишки расщепляются в отдельные клетки. Заключительным этапом является встраивание опухолевых клеток толстой кишки в матригел и селективное культивирование их с ограниченными питательными условиями. В конечном счете, световая микроскопия используется для того, чтобы показать временной ход формирования органоида опухоли толстой кишки.

Основное преимущество этого метода перед существующими методами, такими как трансформированные клеточные линии рака толстой кишки, заключается в том, что органоидные культуры точно имитируют состояние in vivo и генерируют более физиологически значимые данные. После усыпления мыши углекислым газом и сбора толстой кишки, промойте толстую кишку PBS. С помощью ножниц откройте толстую кишку в продольном направлении, затем поместите ее под стереомикроскоп и с помощью ножниц удалите участки, содержащие опухоли.

Соберите и промойте опухолевую ткань с помощью PBS. После промывки перенесите фрагменты кишечника на хелатирование ЭДТА, буферизуйте и инкубируйте на льду в течение 60 минут после хелатирования, большая часть нормальных эпителиальных клеток кишечника будет отделена, в то время как опухолевые клетки останутся прикрепленными к мехе. Аспирируйте хелатный буфер, содержащий нормальные эпителиальные клетки, и промойте оставшиеся фрагменты опухоли.

Ещё один раз. С пятью миллилитрами холодного хелатного буфера. После аспирации хелатного буфера промойте фрагменты опухоли пятью миллилитрами холодного одного XPBS.

После аспирации одного XPBS добавляют буфер для разложения к фрагментам ткани и инкубируют в течение двух часов. При температуре 37 градусов Цельсия дайте фрагментам опухоли осесть под действием нормальной силы тяжести в течение одной минуты, а затем соберите надосадочную жидкость S в 15-миллилитровую центрифужную пробирку. Гранулируйте одноклеточную опухолевую суспензию супинатом центрифугированием при 200-кратной G в течение трех минут.

Затем умойте один раз пятью миллилитрами PBS и центрифугой. Снова получите ресуспендию опухолевой гранулы с 500 микролитрами PBS. Затем подсчитывают изолированные одиночные опухолевые клетки с помощью гемоцитометра.

Затем переведите опухолевые клетки путем центрифугирования при температуре, умноженной на 200 G в течение трех минут, и повторно отправьте пять миллиграммов на миллилитр матрицы на лед. Затем планшет 15 000 клеток в объеме 50 микролитров на лунку в 24-луночный планшет. Дав смеси клеток матригеля полимеризоваться в течение 15 минут при температуре 37 градусов Цельсия, добавьте 500 микролитров базальной питательной среды, содержащей 50 нанограмм на миллилитр мочи EGF, в каждую скважину меняйте базальную культуральную среду, содержащую EGF, каждые два дня и массируйте органоиды от одного до пяти раз в неделю для массажа.

После замены питательной среды на свежую базальную среду используйте пипетку P 1000 с отрезанным наконечником для механического разрушения органоидов и матрицы. Переложите органоидную суспензию в соколиную трубку объемом 15 миллилитров. Используйте отполированную на огне пипетку для макарон, чтобы еще больше разрушить органоиды.

Диссоциированные органоиды промыть пятью миллилитрами базальной культуры, средью и центрифугировать 200 раз G в течение двух минут. Затем выбросьте супинат, повторно суспендируйте гранулу с помощью геля matri и планшета, как описано ранее, заморозьте органоиды, диссоциацию, промойте и центрифугируйте. Как и раньше, откажитесь от супината и резуса.

Суспендируйте гранулу в DMEM, содержащем 20% фетальной бычьей сыворотки и 10% оксида диметилсульфа. Далее переложите клеточную суспензию в криопробирки объемом 1,5 миллилитров. Переложите пробирки в контейнер для заморозки Nalgene Mr.Frosty и храните в морозильной камере при температуре минус 80 градусов Цельсия, чтобы достичь скорости охлаждения минус один градус Цельсия в минуту.

После ночной инкубации переведите клетки в жидкий азот. Таким образом элементы могут храниться более двух лет. Для экстракции РНК клетки собирают.

Что касается пассирования, то РНК выделяют с помощью набора для выделения пикочистой РНК. Согласно инструкции производителя по экстракции белка, клеточную гранулу собирают обычным способом и затем укладывают в 100 микролитров буфера радиоиммунопреципитационного анализа для иммуногистохимии. После аспирации среды для культивирования клеток используйте разрезанную пипетку P 1000 для переноса опухолевых органоидов в криоформу.

Поместите форму на сухой лед и добавьте ткань замораживающей среды в форму Разрежьте замороженные срезы на семи микронах и окрасьте Согласно ранее опубликованным протоколам, на этом изображении показано репрезентативное органоидное образование, полученное из опухоли толстой кишки, взятой у трехмесячной мыши PC Min, через некоторое время после нанесения покрытия. На этом изображении показан тот же органоид через день после нанесения покрытия. Здесь органоид находится в культуре в течение трех дней.

В то время как на этом изображении показан органоид через шесть дней после покрытия. Здесь показаны два органоида, которые находились в культуре в течение 14 дней. Обратите внимание, что на этом этапе каждый органоид состоит из кластера клеток.

Эта гистограмма показывает успешную скорость образования органоидов при двух различных условиях расщепления коллагеназы. На этих изображениях показаны органоиды, полученные из опухоли толстой кишки, взятой у трехмесячной мыши PC min с иммунофлуоресцентным окрашиванием на бета-катенин. DPI использовался для окрашивания ядер.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как установить первичную опухоль толстой кишки с помощью ферментного переваривания.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биологии рака выпуск 75 медицины молекулярной биологии клеточной биологии биомедицинской инженерии анатомии физиологии генетики онкологии хирургии органоиды опухолевые клетки Искусственный Кишечная новообразования первичного Культура клеток опухоль толстой кишки комплексообразования коллагеназы матригель органоид EGF рак толстой кишки рак опухоль клетки изоляция иммуногистохимии мышь животной модели

Related Videos

Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

08:43

Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

Related Videos

46.7K Views

Культура органоидов CRC: метод получения 3D-органоидов из клеток колоректального рака

03:41

Культура органоидов CRC: метод получения 3D-органоидов из клеток колоректального рака

Related Videos

3.4K Views

Мечение органоидных клеток CRC: метод получения органоидных клеток колоректального рака, трансдуцированных лентивирусом GFP

04:55

Мечение органоидных клеток CRC: метод получения органоидных клеток колоректального рака, трансдуцированных лентивирусом GFP

Related Videos

2.2K Views

Мышиные модели спонтанных метастазов: платформа для изучения метастатического потенциала ортотопически вводимых клеток колоректального рака

02:57

Мышиные модели спонтанных метастазов: платформа для изучения метастатического потенциала ортотопически вводимых клеток колоректального рака

Related Videos

1.5K Views

Получение органоидов из опухолей: 3D-модель опухоли in vitro

03:17

Получение органоидов из опухолей: 3D-модель опухоли in vitro

Related Videos

2.9K Views

Ex Vivo Культура и Pattern Recognition Рецептор Стимуляция мыши Кишечные органоидами

09:09

Ex Vivo Культура и Pattern Recognition Рецептор Стимуляция мыши Кишечные органоидами

Related Videos

14K Views

Выделение циркулирующих опухолевых клеток в модели ортотопической мыши колоректального рака

06:19

Выделение циркулирующих опухолевых клеток в модели ортотопической мыши колоректального рака

Related Videos

10.5K Views

Высокая чувствительность обнаружения микрометастазы, порожденных GFP человека преобразованы Organoids культивированный от опухоли пациента производные Колон

09:16

Высокая чувствительность обнаружения микрометастазы, порожденных GFP человека преобразованы Organoids культивированный от опухоли пациента производные Колон

Related Videos

10.5K Views

Поколение опухолевых органоидов из генетически модифицированных моделей мыши рака простаты

08:54

Поколение опухолевых органоидов из генетически модифицированных моделей мыши рака простаты

Related Videos

11.2K Views

Культура, манипуляция и ортотопическая трансплантация органов опухолевых опухолей мышелового пузыря

08:43

Культура, манипуляция и ортотопическая трансплантация органов опухолевых опухолей мышелового пузыря

Related Videos

10.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code