11,734 Views
•
08:04 min
•
February 27, 2019
DOI:
Этот протокол обеспечивает долгосрочный, in vitro, функциональный метод для оценки рецептора химерного антигена, или CAR Т-клеток, через повторяющиеся проблемы опухолевых клеток. Этот метод является менее трудоемким, и менее трудоемким, чем in vivo CAR Т-клеток оценки функции при достижении точного представления истинной противоопухолевой эффективности. Этот метод in vitro обеспечивает высокую пропускную способность скрининга и дифференциации CAR Т-клеток противоопухоло опухолевой потенции.
Который имеет потенциальное применение для оценки клинической эффективности продуктов CAR T клеток. Начните с отсоциации опухолевых опухолей глиобластомы от культуры опухолевой глиобластомы. С одним миллилитров холодной accutase, и от 30 до 60 секунд пипетки.
Когда опухолевыесферы были нарушены, остановить реакцию с пятью миллилитров теплой со-культуры среды. И гранулы опухолевых клеток суспензии центрифугации. Повторное приостановление клеток глиобластомы в 1,6 раза от 10 до пятой опухолевых клеток на миллилитр свежей средней концентрации кокультуры, и разбавить Т-клеток, собранных из культуры Т-клеток ЦАР в соответствующий процент CAR положительные Т-клетки на миллилитр со-культуры средней концентрации.
Далее добавьте 100 микролитров разбавленных опухолевых клеток к каждому колодец из 96 хорошо плоской нижней пластины культуры ткани. И 100 микролитров Т-клеток CAR в каждый колодец опухолевых клеток с нежным смешиванием. Затем поместите пластину в 37 градусов по Цельсию, 5% углекислого газа инкубатора.
В дни два, четыре и шесть культуры, тщательно удалить 50 микролитров среды из каждого колодец опухолевой клетки, Т-клеток совместной культуры пластины намечено на rechallenge в соответствии с таблицей. Затем добавьте 50 микролитров свежей глиобластомной клеточной суспензии, подготовленной, как только что продемонстрировано, но с вдвое большим количеством клеток исходной ко-культуры к каждому хорошо с нежным смешиванием. И верните тарелку в инкубатор клеточной культуры.
Дни один, три, пять и семь со-культуры, передать supernatant из каждого хорошо, которые будут собраны в новый 96 хорошо круглой нижней пластины в соответствии с таблицей и добавить 50 микролитров предварительно разогретых 0,5%Трипсин EDTA в каждой среде истощены хорошо. После пяти минут при 37 градусах по Цельсию, подтвердите, что клетки отделились от нижней части каждой хорошо световой микроскопии, и осторожно пипетки фермента раствора вокруг нижней части каждой хорошо, чтобы повторно использовать клетки. Перед передачей отдельной клеточной подвески в соответствующие скважины новой пластины 96 скважин.
Пеллет клетки центрифугации, и мыть клетки с 200 микролитров флуоресцентных активированных клеток сортировки стоя решение, или FFS на колодец со второй центрифугации. Повторно приостанавливайте гранулы в 100 микролитров антитела коктейль интерес в 100 микролитров SSS на колодец в течение 30 минут инкубации при четырех градусах по Цельсию. Конец инкубации удаляет любые несыряемые антитела последовательными 100 и 200 микролитров FSS моет и повторно приостанавливает клетки в 100-200 микролитров ядерного пятна DAPI и FSS.
Затем проанализируйте клетки в соответствии со стандартными протоколами цитометрического анализа потока. Для функционального и фенотипического анализа Т-клеток CAR после совместной культуры опухолевых клеток, извлечения файлов данных из цитометра потока и ворот всех живых отрицательных клеток DAPI. Для количественной оценки опухолевых клеток, ворота CD45 отрицательной популяции.
Для количественной оценки ЦАР Т-клеток ворот CD45 положительный CAR положительной популяции. Затем участок опухоли и CAR Т-клеток номера в течение времени эксперимента, выявление активации Т-клеток по совместное выражение 41BB, и CD69. T-cell исчерпание по выражению PD1, LAG3 и TIM3, а также статус памяти Т-клеток LAG3, и TIM3, и статус памяти Т-клеток CD45RO, и CD62 лиганд выражение.
CD45RO и выражением лиганда CD62. Оба CD4 положительные, и CD8 положительные Т-клетки CAR становятся одинаково активированы против клеток глиобластомы, которые выражают целевой антиген, как указано в их CD107a и внутриклеточной цитокинов выражения. Однако, по оценке повторяющихся проблем с опухолью SA, CD4 положительный, но не CD8 положительный, CAR Т-клеток способны несколько круглых убийств.
CD4 положительные Т-клетки CAR также достичь более надежного расширения. Когда CD4 положительные, и CD8 положительные Т-клетки CAR смешиваются в соотношении один к одному, эта комбинация клеток из выполняет CD8 положительные, но не CD4 положительные клетки CAR T с точки зрения долгосрочной цитотоксичности. Кроме того, расширение CD8 положительные Т-клетки ЦАР индуцируется добавлением CD4 положительных Т-клеток.
В то время как CD4 положительное расширение Т-клеток CAR тормозится в присутствии положительных клеток CDa. Через 24 часа после первоначальной совместной культуры, как CD4 положительные, так и CD8 положительные Т-клетки CAR аналогичным образом активируются. Во время повторяющихся проблем опухоли, как CD4 положительные и CD8 положительные Т-клетки ЦАР демонстрируют переход от CD45RO положительный, CD62 лиган положительный фенотип центральной памяти, к CD45RO положительный CD62 лиган отрицательный фенотип памяти эффектора.
CD8 положительные Т-клетки CAR также более склонны к истощению по сравнению с CD4 положительные Т-клетки CAR, как оценивается их PD1, LAG3 и TIM3 выражение после трех дней совместной культуры. Кроме того, никаких различий, наблюдаемых в CDa положительное истощение Т-клеток CAR T в присутствии или отсутствии CD4 положительных Т-клеток, что свидетельствует о том, что CD4 индуцированных CD8 положительное расширение КЛЕТ Т-клеток НЕ связано с лучшей функцией эффектора. Это эссе также может быть соединено с сортировкой Т-клеток форме совместной культуры для выполнения дальнейшего анализа на транскриптомы, протеомика, и конкретные гены, представляющие интерес.
Эта повторяющаяся проблема опухоли также может быть использована в качестве платформы для расследования биологических событий после распознавания опухоли Т-клеток CAR.
Здесь мы описываем метод в пробирке совместно культуры рекурсивный вызов опухоли целевой T-клеткам, который позволяет для анализа Фенотипические и функциональной деятельности противоопухолевых Т-клеток.
08:19
A Spheroid Killing Assay by CAR T Cells
Видео по теме
16378 Views
06:08
Assessment of Chimeric Antigen Receptor T Cell-Associated Toxicities Using an Acute Lymphoblastic Leukemia Patient-Derived Xenograft Mouse Model
Видео по теме
1377 Views
09:20
Rapid In Vitro Cytotoxicity Evaluation of Jurkat Expressing Chimeric Antigen Receptor using Fluorescent Imaging
Видео по теме
2309 Views
09:56
A Nonviral Approach to Generate Transient Chimeric Antigen Receptor T Cells Using mRNA for Cancer Immunotherapy
Видео по теме
539 Views
09:01
Analysis of Human T Cell Activity in an Allogeneic Co-Culture Setting of Pre-Treated Tumor Cells
Видео по теме
380 Views
08:46
A Real-time Potency Assay for Chimeric Antigen Receptor T Cells Targeting Solid and Hematological Cancer Cells
Видео по теме
53332 Views
08:09
Droplet-based Cytotoxicity Assay to Assess Chimeric Antigen Receptor T cells at the Single-cell Level
Видео по теме
872 Views
01:23
An In Vitro Assay to Evaluate the Anti-Tumor Activity of Tumor-Specific CAR T Cells
Видео по теме
128 Views
08:04
In Vitro Tumor Cell Rechallenge For Predictive Evaluation of Chimeric Antigen Receptor T Cell Antitumor Function
Видео по теме
11.7K Views
01:58
Repetitive Tumor Challenge Assay: An In Vitro Culture Assay to Evaluate Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cells for Repetitive Tumor Killing Potential
Видео по теме
1.6K Views
Read Article
Цитировать это СТАТЬЯ
Wang, D., Starr, R., Alizadeh, D., Yang, X., Forman, S. J., Brown, C. E. In Vitro Tumor Cell Rechallenge For Predictive Evaluation of Chimeric Antigen Receptor T Cell Antitumor Function. J. Vis. Exp. (144), e59275, doi:10.3791/59275 (2019).
Copy