-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Genetics
Использование Дрозофилы S2 клетки для живой визуализации клеточного отдела
Использование Дрозофилы S2 клетки для живой визуализации клеточного отдела
JoVE Journal
Genetics
This content is Free Access.
JoVE Journal Genetics
Use of Drosophila S2 Cells for Live Imaging of Cell Division

Использование Дрозофилы S2 клетки для живой визуализации клеточного отдела

Full Text
9,057 Views
06:17 min
August 23, 2019

DOI: 10.3791/60049-v

Evan B. Dewey1, Amalia S. Parra1, Christopher A. Johnston1

1Department of Biology,University of New Mexico

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol enables real-time visualization of cell divisions using fluorescently tagged proteins and time-lapse microscopy. It allows for the analysis of mitotic spindle assembly, chromosome congression, and segregation dynamics.

Key Study Components

Area of Science

  • Cell Biology
  • Neuroscience
  • Microscopy Techniques

Background

  • Cell division is a critical process in biology.
  • Understanding mitotic dynamics can reveal insights into cellular regulation.
  • Fluorescent proteins facilitate the visualization of cellular structures.
  • RNA interference can be used to study gene function in cell division.

Purpose of Study

  • To visualize and analyze cell division events in real time.
  • To assess the impact of mytotic regulators on cell division.
  • To quantify defects in mitosis following gene knockdown.

Methods Used

  • Induction of fluorescent protein expression using copper sulfate.
  • Time-lapse imaging of cells during mitosis.
  • Dual color imaging for simultaneous analysis of multiple markers.
  • Quantification of timing events during cell division.

Main Results

  • Successful visualization of microtubules and chromosomes during mitosis.
  • Identification of timing for nuclear envelope breakdown and anaphase onset.
  • Observation of significant mitotic delays with specific RNA treatments.
  • Demonstration of the effects of mytotic regulators on cell cycle dynamics.

Conclusions

  • The protocol provides a robust method for studying cell division.
  • Real-time imaging can reveal critical insights into mitotic processes.
  • RNA interference can effectively manipulate cell cycle dynamics for research.

Frequently Asked Questions

What is the main focus of this study?
The study focuses on visualizing and analyzing cell division dynamics in real time.
How does RNA interference affect cell division?
RNA interference can induce defects in mitotic processes, leading to delays in cell division.
What imaging techniques are used in this protocol?
The protocol utilizes time-lapse microscopy and dual color imaging techniques.
What are the key events analyzed during mitosis?
Key events include mitotic spindle assembly, chromosome congression, and segregation.
How can this protocol contribute to neuroscience research?
It can help identify new mytotic regulators that may impact neuronal cell division and function.

Клеточные деления могут быть визуализированы в режиме реального времени с помощью флуоресцентно помеченных белков и замедленной микроскопии. Используя представленный здесь протокол, пользователи могут анализировать динамику синхронизации деления клеток, митотические сборки шпинделей, а также хромосомные конгрессионы и сегрегацию. Дефекты в этих событиях после РНК-интерференции (РНК) опосредованного гена нокдаун может быть оценена и количественно.

Наш протокол может быть использован для определения пространственых и временных динамических событий во время митоза, а также может быть использован для визуализации воздействия митотических регуляторов в режиме реального времени. Использование двойной цветовой визуализации позволяет одновременно проводить анализ двух молекулярных маркеров. Например, мы можем визуализировать микротрубочки митотического шпинделя и кинетическую структуру ядра реплицированных хромосом.

Чтобы вызвать экспрессию флуоресцентного белка, через четыре дня после лечения РНК-интерференции, подвергайте слизистые металло-тианиновые промоторные трансфицированные клетки окончательной концентрации 500 микромоляных медных сульфатов в течение 24-36 часов. Чтобы подготовить флуоресцентный белок, выражаюющий клетки для визуализации, перенесите клетки в стерильную 15-миллилитровую трубку, а после подсчета осадков от осадки клеток центрифугировать. Resuspend гранулы в свежем, 25 градусов по Цельсию нагревается SIM, дополняется 10%FBS, в два раза от 10 до 6 клеток на миллилитр концентрации, и лечить клетки с дополнительными 500 микромолярный сульфат меди.

Затем добавьте от 200 до 500 микролитров клеток к одному колодец мульти-хорошо живой камеры клетки, и поместите камеру на перевернутой стадии флуоресцентного микроскопа. В то время как клетки оседают в камере, откройте программное обеспечение для визуализации живых клеток и нажмите на новое и поэкспериментируйте. Чтобы вставить цикл промежуток времени, над которым будут сделаны изображения, нажмите значок цикла промежуток времени.

Установите интервал на секунды и разделите желаемую общую продолжительность эксперимента на секунды с интервалом, чтобы установить количество циклов. Разрешить цикл повторить в течение желаемого общего периода времени. Чтобы вставить инфракрасную проверку фокусировки, чтобы сохранить фокус цели, нажмите значок перемещения XY и выберите компенсацию дрейфа, чтобы добавить шаг компенсации дрейфа в слое цикла промежуток времени.

Чтобы получить многоканабельное изображение, нажмите значок многоканазонной группы, чтобы добавить многоканабельный групповой слой, и нажмите на значок цикла стека, чтобы добавить слой цикла стека. Затем установите желаемый размер шага и количество срезов и установите экспозицию каждого канала как можно более низко, чтобы свести к минимуму отбеливание фотографий. Чтобы изображение деления клеток, выберите 40 или 60 раз цель погружения в нефть, и канал mCherry florescence, и выровнять цель вдоль верхней или нижней части хорошо.

Затем отойдете от вертикального делителя хорошо, чтобы избежать вмешательства в шаг компенсации дрейфа. Найдите ячейку или ячейки в поздней фазе G2 или на ранней фазе M и нажмите кнопку живого просмотра, чтобы начать просмотр ячеек на экране программного обеспечения. Поиск соответствующих ячеек при переходе G2 к M является ключом к визуализации деления клеток.

Найдите ячейку с нетронутым ядром и ровно двумя центросомами для получения наилучших результатов. Используя тонкую ручку фокусировки микроскопа, сосредоточьтесь на ячейках, представляющих интерес, и нажмите кнопку найти смещения, чтобы установить инфракрасную проверку фокусировки. Нажмите, чтобы инициировать программу визуализации промежуток времени, и выбрать нужный канал и настроить средние интенсивности пикселей, чтобы настроить гистограммы по мере необходимости, чтобы четко визуализировать ячейки, представляющие интерес.

Проверьте клетки через 15-20 минут, чтобы подтвердить, что разрушение ядерного конверта произошло, как это определено исчезновением круглого, темного преломленного пятна вблизи центра клетки. Еще через 15-20 минут проверьте, произошло ли начало анафазы. Затем остановите программу и сохраните файл.

Чтобы определить разбивку ядерной оболочки для анафазного времени начала, нажмите кнопку кадра вверх, чтобы определить время распада ядерного конверта и время первоначального разделения хромосомы в минутах, и вычесть время поломки с самого начала времени, чтобы получить ядерный разрыв конверта до времени начала анафазы для данной клетки. Затем продолжайте сканирование для предварительно делящихся ячеек, чтобы получить несколько концов для данного состояния на срок до 12 часов от первоначального урегулирования. Клетки, которые вот-вот разделят, могут быть направлены на наличие двух центросом и нетронутого ядра, о чем свидетельствует преломленный свет и более темное пятно внутри клетки при просмотре в альфа-тубулинском канале.

Распад ядерного конверта можно визуализировать через исчезновение этого темного пятна, что приводит к равномерной окраске цитоплазмы. После распада ядерного конверта, время, которое каждая клетка занимает, чтобы сформировать шпиндель и конгресс и сегрегации хромосомы могут быть измерены, увезрения времени точки этих событий по отношению к ядерной оболочки распада. Лечение двойной мель РНК направлены против shortstop, актин микротрубочек перекрестного белка, как подозреваемых повлиять на динамику клеточного цикла приводит к значительной задержке митотических.

Это лечение приводит к значительной задержке, со многими клетками арест на метафазе и никогда не переход к анафазе в течение всего двух-трехчасового эксперимента изображений. Совместное лечение с двухцепочеченной РНК против выстрела и грубой сделки, важным компонентом этого контрольно-пропускного пункта, приводит к подавлению фенотипа ареста, в результате чего ядерная оболочка распада анафазы раз похож на контролируемые, необработанные клетки. Обязательно выберите подходящие клетки и не тратьте время на визуализацию клеток, которые не начинают деление.

Если ячейка не начинает делиться в течение 20 минут, найдите другую ячейку. Исследователи могут следовать этой процедуре, чтобы помочь определить новые митотические регуляторы, или, возможно, новые сухие соединения, которые влияют на конкретные события в деление клеток.

Explore More Videos

Генетика Выпуск 150 Дрозофила S2 клетки Митоз Клеточный цикл Live-клеточная визуализация Митотический шпиндель Хромосома динамика mCherry: -тубулин GFP:CENP-A CID

Related Videos

Живая съемка Дрозофилы Эмбриональные миграции гемоцитов

08:35

Живая съемка Дрозофилы Эмбриональные миграции гемоцитов

Related Videos

16.3K Views

Подготовка Drosophila S2 клеток для световой микроскопии

09:39

Подготовка Drosophila S2 клеток для световой микроскопии

Related Videos

23.2K Views

Жить Визуализация GFP-меченых белков в Drosophila Ооцитов

07:25

Жить Визуализация GFP-меченых белков в Drosophila Ооцитов

Related Videos

11.9K Views

Жить анализ клеточного цикла Drosophila Тканей с использованием акустической Attune Фокусировка Цитометр и Vybrant DyeCycle Фиолетовое пятно ДНК

11:00

Жить анализ клеточного цикла Drosophila Тканей с использованием акустической Attune Фокусировка Цитометр и Vybrant DyeCycle Фиолетовое пятно ДНК

Related Videos

14.2K Views

Органелл Транспорт в культуре Дрозофилы Клетки: S2 клеточной линии и первичных нейронов.

10:08

Органелл Транспорт в культуре Дрозофилы Клетки: S2 клеточной линии и первичных нейронов.

Related Videos

14.3K Views

Изображений Через куколки случае Дрозофилы

06:50

Изображений Через куколки случае Дрозофилы

Related Videos

13.8K Views

Живая съемка Дрозофилы Личиночные нейробласты

09:50

Живая съемка Дрозофилы Личиночные нейробласты

Related Videos

15.8K Views

Изображение и анализ ориентации тканей и динамики роста в развивающихся дрозофилы Эпителия во время Pupal Этапы

08:25

Изображение и анализ ориентации тканей и динамики роста в развивающихся дрозофилы Эпителия во время Pupal Этапы

Related Videos

10K Views

Подготовка Drosophila Ларваль и Pupal Тесты для анализа клеточного отдела в прямом эфире, Intact Ткани

08:05

Подготовка Drosophila Ларваль и Pupal Тесты для анализа клеточного отдела в прямом эфире, Intact Ткани

Related Videos

9.1K Views

Визуализация живых клеток личинки Drosophila melanogaster третьего возраста

07:06

Визуализация живых клеток личинки Drosophila melanogaster третьего возраста

Related Videos

4.4K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code