RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/61355-v
Kiichi Sugimoto1,2, Hirotaka Momose2, Tomoaki Ito1,3, Hajime Orita3, Koichi Sato3, Kazuhiro Sakamoto2, Malcolm V. Brock1
1Department of Surgery, The Sidney Kimmel Comprehensive Cancer Center,Johns Hopkins University School of Medicine, 2Department of Coloproctological Surgery,Juntendo University Faculty of Medicine, 3Department of Surgery,Juntendo University Shizuoka Hospital
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
This article describes a procedure for genome-wide analysis of DNA methylation in gastrointestinal cancers, focusing on the relationship between methylation patterns and carcinogenesis.
В этом случае мы описываем процедуру геномного анализа метилирования ДНК при раке желудочно-кишечного тракта. Процедура имеет отношение к исследованиям, которые исследуют связь между метилированием генов и факторов, способствующих канцерогенеза при раке желудочно-кишечного тракта.
Таким образом, анализ генома метилирования ДНК с помощью платформы LA для комплексной аберрации метилирования ДНК в геноме человека может предоставить важную информацию эпигенетических биомаркеров при раке желудочно-кишечного тракта. Хотя эта платформа LA для сложной аберрации метилирования ДНК в геноме человека, она является оптимальной с точки зрения стоимости и геномного охвата. Таким образом, демонстрируя процедуру будет Хиротака Momose, аспирант из моей лаборатории.
Для начала подготовьте 10 микрометров незапачканных формальных парафиновых встроенных секций. Поместите слайды в стеклянный держатель слайда и заполните его солевым раствором, убедившись, что все ткани на слайде погружены. Оставьте горки в ксилене на 15 минут, затем вылейте ксилен, удерживая горки кончиком пипетки, чтобы они не выпадают.
Налейте больше ксилена до того же уровня, что и раньше, и повторите инкубацию. Вылейте ксилен и заполните держатель слайда 100% этанолом, убедившись, что все ткани на слайде полностью погружены. Оставьте горки в этаноле на три минуты, затем замените этанол свежим этанолом и дайте им инкубировать еще две минуты.
Слейте этанол и удалите слайды. Аккуратно поместите их лицом вверх на чистое бумажное полотенце и дайте им высохнуть в течение 10 минут. Заполните 1,5 миллилитров однополитовой полипропиленой трубки с 80 микролитров буфера лиза и положить чистый кончик пипетки в буфер.
Определите раковые ткани области опухоли, наиболее подходящей для макродиссекции в соответствии с соответствующим отделом окрашенных H и E, а затем макродисцирировать раковую ткань на основе отмеченного раздела. Возьмите чистое лезвие бритвы и аккуратно соскребать раковую ткань с слайда, пытаясь сохранить его в один кусок. Используйте наконечник пипетки для передачи выскобленой ткани в буферный флакон лиза.
Повторите этот процесс с остальными слайдами. После того, как все ткани находится в трубке, используйте наконечник, чтобы убедиться, что ткань была полностью погружена и не прилипла к стене. Добавьте 20 микролитров субтилизина, связанных с серином протеазы на флакон и осторожно Флик, чтобы смешать.
Поместите флакон в тепловой блок 55 градусов по Цельсию, по крайней мере четыре часа или на ночь, убедившись, что немного вихрь через два часа. Выполните лечение бисульфитом на 45 микролитров переваренной ткани с помощью комплекта преобразования бисульфита в соответствии с инструкциями производителя. Добавьте пять микролитров буфера разбавления в образец и инкубировать его при 37 градусах по Цельсию в течение 15 минут.
Между тем, подготовить бисульфит преобразования реагента, добавив 750 микролитров дистиллированной воды и 210 микролитров разбавления буфера в одну трубку реагента преобразования КТ. Смешайте трубки вихрем в течение 10 минут, затем добавьте 100 микролитров подготовленного реагента преобразования КТ в каждый образец и смешайте с помощью инверсии. Инкубировать образцы в темноте при 50 градусах по Цельсию в течение 12 до 16 часов.
После инкубации поместите образцы на лед на 10 минут. Добавьте 400 микролитров связывающего буфера и смешайте каждый образец, трубя вверх и вниз. Загрузите каждый образец в колонку спина и поместите столбец в двухми миллилитровую трубку сбора.
Центрифуга образцов на полной скорости в течение одной минуты и отказаться от потока через. Добавьте 200 микролитров буфера стирки к каждой колонке и вращайте на полной скорости в течение одной минуты, а затем отбросьте протеку. Добавьте 200 микролитров буфера десулфонизации к каждой колонке и позвольте столбцам стоять при комнатной температуре в течение 15 минут.
После инкубации, спина столбцы на полной скорости в течение одной минуты и отказаться от потока через. Вымойте колонку дважды с 200 микролитров мыть буфер центрифугирования в течение одной минуты на полной скорости после каждой стирки. Добавьте 46 микролитров дистиллированной воды к каждой колонке и поместите его в новую стерильную однополольную полипропиленую трубку на 1,5 миллилитра.
Спин трубки в течение двух минут, чтобы elute ДНК и отказаться от колонки. ДНК готова к анализу. Используйте бисульфит модифицированной ДНК в качестве шаблона для количественного метилирования конкретных ПЦР для оценки метилирования региона промоутер в каждом анализе генов.
Объедините реагенты, описанные в текстовой рукописи, и используйте 96-ну инструмент ПЦР в режиме реального времени для запуска протокола термодергового цикла. Здесь показаны характеристики 48 пациентов с раком желудка в учебной когорте. Средний возраст пациентов составил 74 года, а в когорту входили 38 мужчин и 10 женщин.
Во-первых, все 48 образцов были загружены для идентификации выбросов. Два образца дали пики, которые были больше, чем два стандартных отклонения смещены от других, и эти образцы были удалены. В результате тепловая карта была разделена на две группы на основе высокого и низкого метилирования.
Эта тепловая карта позволяет визуализировать 50 лучших зондов в пределах 1500 базовых пар транскрипционные стартовые площадки в дифференциальном анализе метилирования. Тип рака и наличие метастазов лимфатических узлов стали значительными независимыми прогностический фактор, когда клинические патологические факторы были использованы в качестве ковариатов в многовариантном анализе. Наконец, было установлено, что ген EPB41L3 тесно связан с кодификацией учебной когорты в группы с высоким и низким содержанием метилирования в анализе микроаррей.
Результаты микроаррейного анализа EPB41L3 в испытательной когорте были подтверждены количественным ПЦР, специфичным для метилирования. RMVs EPB41L3 в тканях PGC были значительно выше, чем у остатков рака желудка в унивариатном анализе. Аналогичным образом, RMVs в образцах с метастазами лимфатических узлов были значительно выше, чем те, без метастазов лимфатических узлов.
Таким образом, идентификация на раковой ткани наиболее подходит для макродиссеции в соответствии с соответствующими Н И Е окрашенных разделе требуется для успешного выполнения этого протокола.
Related Videos
21:24
Related Videos
24.3K Views
12:34
Related Videos
106.6K Views
04:36
Related Videos
3.2K Views
13:47
Related Videos
26.5K Views
08:40
Related Videos
9.1K Views
13:21
Related Videos
10.6K Views
12:18
Related Videos
6.2K Views
14:56
Related Videos
5.3K Views
06:07
Related Videos
3.2K Views
07:47
Related Videos
2.3K Views