-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Medicine
Острая модель травмы почек, вызванная Цисплатином у взрослых зебрафиш
Острая модель травмы почек, вызванная Цисплатином у взрослых зебрафиш
JoVE Journal
Medicine
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Medicine
Acute Kidney Injury Model Induced by Cisplatin in Adult Zebrafish

Острая модель травмы почек, вызванная Цисплатином у взрослых зебрафиш

Full Text
6,683 Views
13:25 min
May 15, 2021

DOI: 10.3791/61575-v

Camila Morales Fénero*1, Barbara Nunes Padovani*1, Mariana Abrantes do Amaral*1,2, Guilherme José Bottura de Barros1, Izabella Karina Xavier de Oliveira1, Meire Ioshie Hiyane1, Niels Olsen Saraiva Camâra1,2

1Department of Immunology,University of São Paulo, 2Department of Medicine, Nephrology Division,Federal University of São Paulo

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Этот протокол описывает процедуры, чтобы вызвать острую травму почек (AKI) у взрослых зебры с использованием цисплатина в качестве нефротоксического агента. Мы подробно шаги для оценки воспроизводимости техники и два метода для анализа воспаления и гибели клеток в почечной ткани, цитометрии потока и TUNEL, соответственно.

Общая цель этой процедуры, объясняется использование цисплатина в качестве нефротоксического агента у взрослых рыб зебры, анализируя воспаление, и гибель клеток в почечной ткани. Для достижения этой цели и взрослые рыбы зебры анестезируется и взвешивается, чтобы ввести в специфическую дозу цисплатина в брюшной полости. После мониторинга смертности, почки рассекают и клетки изолированы для цитометрии потока или фиксированной и вскрытой для анализа флуоресцентных АНАЛИЗ.

Следующие процедуры могут помочь ответить на ключевые вопросы в области почек с использованием нефротоксических эффектов цисплатина в качестве инструмента для разработки модели острой травмы почек и взрослых рыб-зебр. Эта модель может быть использована для исследования новых терапевтических целей в почечной защите, а также прояснить механизм регенерации в почках рыб зебры. Цисплатин является химиотерапевтическим агентом, используемым для лечения различных видов рака.

Однако, может легко накапливаться в почках, генерации клеточной смерти, воспаления, и уменьшить функцию почек. Эффект цисплатина зависит от дозы, так что вы можете снизить наше увеличение дозирования зависит от ваших целей. Методы, используемые здесь для анализа воспаления и клеточной смерти, не предназначены исключительно для распространения модели болезни.

Цитометрия потока у рыб-зебр может помочь прояснить воспалительные состояния животного в количественном выражении, в то время как в TUNEL мы говорим, может прояснить наличие poptosed клеток в физиологическом и патологическом контексте. Перед началом эксперимента подготовьте рабочий раствор цисплатина, разбавляя раствор бульона до 820 микрограммов на мил в 0,9% хлорида натрия. Затем обезболить другую рыбу зебры и высушить избыток воды на некоторых бумажных полотенец.

Взвешивайте рыбу, помещая их на весы, принимая к сведению вес. Сделайте расчеты, чтобы знать точный объем для инъекций. Для достижения дозы 120 микрограммов на грамм веса, используйте следующую формулу.

Разделите окончательную дозу на дозу рабочего раствора и преобразуй это число в микролитеры, умножая на 1000, чтобы получить объем 120 мкг цисплатина. Затем умножьте это число на вес рыбы, чтобы получить окончательный объем, который будет введен. Поместите рыбу на влажную губку, с маленькой чашкой, чтобы держать его.

С брюшной стороны вверх и заполнить инсулин шприц с расчетным объемом цисплатина. Вставьте иглу на брюшной средней линии под мелким углом, осторожно потянув брюшной стенки, чтобы избежать прокола внутренних органов. А потом впрыснуть раствор.

После инъекции поместите рыбу в бак, чтобы оправиться от анестезии, и ждать признаков восстановления, таких как плавание и соответствующие движения. Монитор для этого рыбы два раза в день в течение следующих дней. При такой дозе цисплатин вызывает около 30% смертности в первые 24 часа.

Усыпание рыбы и высушить избыток воды в бумажном полотенце. После удаления головы и внутренних органов, использовать вскрытия иглы, чтобы закрепить стенки тела. Найдите почку в спинной стенке рыбы и используйте типсы, чтобы отсоединить почку.

Поместите почку в шесть хорошо пластины с холодным раствором одного 1X PBS, 2%FBS и держать на льду. Затем возьмите ткань с некоторой жидкостью и передать его через 40 микрон-клеточный ситечко, и осторожно macerate ткани со шприцем поршень. Вымойте дважды с одним 1X PBS, 2%FBS.

И соберите клетки в соколиной трубке в 50 миль. Затем центрифуга в течение пяти минут при 400 Г.Осторожно пикап супернатант с пипеткой и отбросить его. Добавьте 500 микролитров холодного 1X PBS, чтобы повторно приостановить клетки и поместить их в пятимилю течь цитометрии трубки.

Держите их на льду. Возьмите 10 микролитров образца и смешайте его с 90 микролитров трипан-голубого цвета в трубке Эппендорфа. Добавьте 10 микролитров смеси в камеру Neobauer и подсчитайте клетки в микроскопе.

Возьмите клетки для чтения цитометром, а затем проанализировать результаты выбора населения ваших интересов. Для этой процедуры усытворяйте рыбу и удаляйте внутренние органы, оставляя почку прикрепленной к телу. Затем прикрепите стенки кузова к поверхности пробки и поместите ее на поэтапное решение фиксации.

Держите его на четыре градуса на ночь. На следующий день, вскрыть почку с тонкой типп. Старайтесь не нарушать его.

Поместите его в небольшую чашку Петри или Эппендорф трубку с 1X PBS для полоскания. Изменение PBS и подготовить 2%agarose для создания матрицы поддержки для почек, прежде чем они прочно процесса. Отбросьте все оставшиеся PBS и залить агарозу медленно.

Затем, положение почки с тонкой типсов для предотвращения его сложить. Пусть агароз затвердеет при комнатной температуре. После затвердевания агарозы используйте скальпель, чтобы разрезать агарозу вокруг почек, образуя мелкие кубики.

Поместите кубики агарозы в гистологическую кассету и отправьте их на гистологическую обработку для встраивания ткани в парафин. Парафин блоков, мы затем сократить в пять микрон толщиной разделов. Де-воск слайды и держать их в дистиллированной воде.

Подготовьте темную камеру инкубатора, положив мокрые бумажные полотенца на дно. Поместите слайды в темную камеру и добавьте протеиназу K для протеабилизации ткани. Инкубация в течение 30 минут при 37 градусах Цельсия.

В то время как образцы инкубированы, подготовить смесь реакции TUNEL, добавив 50 микролитров ферментного раствора на 450 микролитров этикетки раствора. И держать защищены от света. Возьмите темную камеру и мыть ломтик дважды с одним 1X PBS.

Затем высушите слайды и на смеси реакции TUNEL. И инкубировать при 37 градусах Цельсия в течение двух часов. После инкубации, мыть эти слайды снова с одним 1X PBS.

И добавить DAPI для ядра счетчик окрашивания. Инкубация при комнатной температуре в течение пяти минут, защищенная от света. Промыть три раза с одним 1X PBS.

А потом, плесень слайды с анти-fade гидрофильной среде. Поместите крышку скольжения. И печать с лаком для ногтей.

Визуализуууу в образцах флуоресцентного микроскопа. На этом графике можно увидеть, что цисплатин имеет эффект реакции дозы на выживание рыб, по сравнению с контролем, введенным только с 0,9% хлорида натрия. Красная линия на этом графике представляет собой дозу 120 микрограмм на грамм, используемую в этом видео.

Эти дозы могут быть применены к мужчинам и женщинам, так как статистической разницы между ними обнаружено не было. Цитометрия потока позволяет количественно оценить различные клетки, присутствующие в ткани. Популяции гематопоэтических клеток идентифицируются в почках нескольких рыб по размеру или форварду рассеяния и детализации или рассеяния размеров.

Таким образом, можно разделить популяции в эритроцитах, лимфоцитах, гранулоцитах и гематопоэтических прекурсорах. Здесь текущая стратегия ворот, выбираюющая гранулоциты, синглеты и положительные клетки МПО, позволяет найти популяцию нейтрофилов в почках, отмеченных флуоресценцией экспрессии миелопероксидазы. В этом случае инъекция цисплатина индуцировала увеличение доли нейтрофилов, присутствующих в почках.

Анализ TUNEL позволяет обнаружить апоптотические клетки в ткани, наблюдая слайд ткани почки с помощью флуоресцентного микроскопа, можно увидеть апоптотический сигнал внутри ядер некоторых клеток, здесь, в красном цвете. Контрастные ядерного пятна в таком DAPI здесь в синем. Инъекции цисплатина увеличили присутствие апоптотических клеток в почках, которые можно количественно количественно вручную или с помощью программного обеспечения изображения.

В конце этого видео вы должны быть в состоянии знать, как вводить и корректировать дозу цисплатина, чтобы вызвать острую травму почек у взрослых рыб зебры. И как вскрыть почку для разных целей. Цитометрия потока является отличным инструментом, который поможет вам понять профиль различных типов клеток в зависимости от наличия линий трагенклава в вашей лаборатории.

Не забудьте рассмотреть цвет линий транспортеров, если вы хотите использовать антитела для обозначения всех своих типов клеток. Анализ TUNEL является простым инструментом, который позволяет нам обнаружить апоптотические клетки и ткани, и может быть проанализирован не только с помощью микроскопии, но и поток цитометрии. Помните, всегда используйте средства индивидуальной защиты в течение всей процедуры.

Explore More Videos

Медицина Выпуск 171 Почки Острая травма почек (AKI) Цисплатин Зебрафиш Воспаление Цитометрия потока TUNEL Клеточная смерть

Related Videos

Внутривенно микроинъекции данио рерио Личинки по изучению Острое повреждение почек

15:55

Внутривенно микроинъекции данио рерио Личинки по изучению Острое повреждение почек

Related Videos

23.3K Views

Лазерной абляции предпочки данио рерио по изучению почечных эпителиальных Регенерация

07:27

Лазерной абляции предпочки данио рерио по изучению почечных эпителиальных Регенерация

Related Videos

15.7K Views

Анализ нефрона Состав и функции в почках взрослых данио рерио

08:53

Анализ нефрона Состав и функции в почках взрослых данио рерио

Related Videos

45.5K Views

Почки Регенерация у взрослых данио рерио по гентамицина поражении

06:25

Почки Регенерация у взрослых данио рерио по гентамицина поражении

Related Videos

11.3K Views

Nephrotoxin Микроинъекция в данио рерио к модели острое повреждение почек

07:58

Nephrotoxin Микроинъекция в данио рерио к модели острое повреждение почек

Related Videos

9.3K Views

Точный подход к клеточной абляции для моделирования острой почечной недостаточности при развитии рыбок данио

09:53

Точный подход к клеточной абляции для моделирования острой почечной недостаточности при развитии рыбок данио

Related Videos

7.1K Views

Давление контролируемой вентиляции, чтобы вызвать острого повреждения легких у мышей

07:55

Давление контролируемой вентиляции, чтобы вызвать острого повреждения легких у мышей

Related Videos

19K Views

Пощадили повреждение нерва (SNI) Модель Индуцированные Механические аллодиния у мышей

07:44

Пощадили повреждение нерва (SNI) Модель Индуцированные Механические аллодиния у мышей

Related Videos

65.2K Views

Ишемии-реперфузии Модель острого почечного повреждения и фиброза после травмы у мышей

09:09

Ишемии-реперфузии Модель острого почечного повреждения и фиброза после травмы у мышей

Related Videos

41K Views

Возможно данио рерио Модель поликистоза почек: Нокдаун Wnt5a Причины кисты у рыбок данио почек

10:51

Возможно данио рерио Модель поликистоза почек: Нокдаун Wnt5a Причины кисты у рыбок данио почек

Related Videos

11.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code