-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Неонатальная модель инъекции в заглазничную вену на грызунах
Неонатальная модель инъекции в заглазничную вену на грызунах
JoVE Journal
Neuroscience
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Neuroscience
A Neonatal Rodent Model of Retroorbital Vein Injection

Неонатальная модель инъекции в заглазничную вену на грызунах

Full Text
9,848 Views
04:39 min
February 23, 2024

DOI: 10.3791/65386-v

Eridan Rocha-Ferreira1, Syam Nair1, Owen Herrock1, Erik Axel Andersson2, Carl Joakim Ek2, Carina Mallard2, Henrik Hagberg1

1Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Clinical Sciences, Department of Obstetrics and Gynecology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg, 2Centre of Perinatal Medicine and Health, Institute of Neuroscience and Physiology, Sahlgrenska Academy,University of Gothenburg

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol highlights a reproducible retro-orbital injection method for intravenous drug administration in neonatal rats and mice. The technique facilitates compound delivery into the venous circulation, which is particularly crucial for preclinical studies mimicking neonatal care unit conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Pharmacology
  • Animal models

Background

  • Intravenous administration is commonly used in neonatal intensive care units.
  • Injections via the tail vein are difficult in neonates, making alternative routes necessary.
  • The retro-orbital route is simpler and can be used effectively for compound administration.
  • This method allows for real-time monitoring of injection success through visible dye tracking.

Purpose of Study

  • To optimize intravenous drug administration techniques in neonatal rodents.
  • To provide a reliable method for compound delivery that can be used in various preclinical settings.
  • To enhance reproducibility and outcomes in rodent studies related to neonatal care.

Methods Used

  • The retro-orbital injection method is demonstrated using trypan blue dye.
  • Subjects include neonatal rats and mice under anesthesia during the procedure.
  • New sterile syringes are utilized for each animal to prevent contamination.
  • Injection occurs at the medial canthus of the eye at a 40-degree angle.
  • Recovery protocols ensure the well-being of the animals post-injection.

Main Results

  • The protocol enables successful visualization of compounds in the venous system.
  • Effective tracer administration allows for assessment of vascular responses after injury.
  • These results highlight the potential for quantifying vascular leakage and injury assessment.
  • The method does not cause adverse effects when performed properly.

Conclusions

  • This study establishes the retro-orbital injection as a reliable method for drug administration in neonatal rodents.
  • The technique presents significant clinical relevance in translational research.
  • Enhanced understanding of venous drug delivery mechanisms supports future studies in neonatal pharmacology.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using the retro-orbital injection method?
The retro-orbital injection method simplifies intravenous administration in neonatal rodents, providing a more accessible alternative to tail vein injections, which can be challenging.
How is the retro-orbital injection performed?
The injection is performed with the animal under anesthesia, using a 29 to 31 gauge needle positioned at the medial canthus of the eye, angled appropriately to access the venous plexus.
What types of data can this method help obtain?
The method allows for real-time monitoring of compounds in the blood circulation, enabling assessments of tracer distributions and vascular responses.
Can this method be adapted for other substances?
Yes, this injection technique can be used for various compounds, including antibodies, cells, and other therapeutic agents directly into the venous circulation.
Are there any limitations to this injection method?
Care must be taken to ensure proper needle placement to avoid complications, and the procedure should only be performed by trained individuals for optimal animal welfare.
How does this study contribute to neonatal pharmacology?
The study presents a reliable method for intravenous drug administration that can improve translational research on drug effects in neonatal care settings.

Этот протокол направлен на демонстрацию воспроизводимого венозного пути введения, который может быть использован на крысах и мышах в течение всего неонатального периода. Эта процедура важна для доклинических исследований грызунов, которые хотят отразить введение лекарств в отделениях неонатальной помощи, в основном с использованием внутривенного введения.

Ретроорбитальная инъекция – это специализированный метод инъекций, используемый для введения соединений в венозный кровоток. Исследования на животных являются важным шагом на пути к клинической работе. В рамках исследований на животных существует необходимость введения различных типов соединений разными путями.

Некоторые из этих путей включают подкожный, внутрибрюшинный и внутривенный. Внутривенная инъекция является наиболее часто используемым способом введения новорожденным, находящимся в отделении интенсивной терапии новорожденных. Тем не менее, в исследованиях на грызунах, особенно на взрослых грызунах, внутривенные инъекции обычно выполняются в хвостовую вену.

У новорожденных крайне сложно выполнить инъекцию в хвостовую вену успешно и воспроизводимо. Таким образом, ретроорбитальный маршрут может быть использован в качестве более простой альтернативы. Во-первых, мы продемонстрируем использование красителя трипанового синего, чтобы зритель мог ясно видеть, как краситель попадает в венозное кровообращение.

Новорожденную крысу помещают под полный наркоз, ее голова лежит на боку, покоится над источником света, поэтому глаз и боковая сосудистая сеть открыты и видны. Игла вводится в переднюю часть глазницы, что эквивалентно медиальному кантусу. Вводите раствор мягкими, плавными и плавными движениями.

Чтобы лучше воспроизвести эту процедуру, важно понимать анатомию орбитальной вены. У крысы есть сеть из нескольких вен чуть ниже глаза, которые обеспечивают легкий и прямой доступ к венозному сплетению. У новорожденных крыс-альбиносов также видны как поверхностные висковые, так и лицевые вены.

Эту процедуру можно выполнить точно так же. У неонатальных мышей. Используйте иглу от 29 до 31 калибра около 0,30 миллиметра.

Для получения точных объемов наберите раствор для инъекции из пипетированного объема. Поместите животных на ровную поверхность в положении лежа на боку. Индуцируйте анестезию всего тела изофлураном.

5% индукционный, 3% поддерживающий. Проверьте глубину анестезии с помощью метода тянущего рефлекса отводы. Повернув голову вправо, ввести инъекцию в правый ретроорбитальный синус.

Вставьте иглу скошенной вниз передней части глазницы, эквивалентную среднему кантусу, под углом примерно 40 градусов. Этот угол позволяет направить иглу в заднюю часть глазной орбиты. Вводите мягкими, плавными и плавными движениями.

Подождите некоторое время, прежде чем медленно вынимать иглу, чтобы избежать обратного потока. Используйте новый стерильный шприц для каждого животного, чтобы избежать заражения. Поместите щенка в контейнер для восстановления, положив его на защищенное нагревательное устройство, при температуре от 35 до 37 градусов по Цельсию.

Дождитесь выздоровления и проверьте, нет ли признаков бедствия, прежде чем возвращать щенка к плотине. Эта методика была использована для введения индикатора биотин-декстрана в сосудистую сеть головного мозга животных, перенесших кровоизлияние в зародышевой матрикс. У животных, получивших инъекцию физиологического раствора в качестве контрольной группы, не было обнаружено видимого окрашивания сосудистой сети в головном мозге.

Успешная ретроорбитальная инъекция индикатора биотин-декстрана позволила оценить его присутствие в сосудистой сети головного мозга в течение 10 минут после ретроорбитального введения. Затем этот метод был использован для обнаружения сосудистой утечки индикатора на уровне отдельных кровеносных сосудов у животных, пострадавших от ГМГ. Этот результат позволяет, например, количественно оценить травму, количественно оценив количество кровеносных сосудов, которые протекают после травмы головного мозга.

Кроме того, эта процедура также может быть выполнена без источника света, что делает ее простой, понятной и воспроизводимой техникой, которая позволяет вводить соединение непосредственно в венозный кровоток новорожденных крыс и мышей. При правильном выполнении эта процедура не должна привести к каким-либо побочным эффектам. Этот корень введения позволяет вводить антитела, клетки и другие соединения непосредственно в венальный кровоток новорожденных животных.

Этот путь имеет большее клиническое значение по сравнению с другими путями, такими как внутрибрюшинные или подкожные инъекции.

Explore More Videos

Неврология Выпуск 204 крыса мышь новорожденный инъекция в заглазничную вену введение препарата внутривенное введение

Related Videos

Ретро-орбитальный инъекций у взрослых данио рерио

04:50

Ретро-орбитальный инъекций у взрослых данио рерио

Related Videos

26.1K Views

Ретроорбитальный забор крови: метод выделения мононуклеарных клеток из ретроорбитального синуса мыши

03:18

Ретроорбитальный забор крови: метод выделения мононуклеарных клеток из ретроорбитального синуса мыши

Related Videos

11.4K Views

Отслойки Модель в Грызуны по субретинальной инжекции гиалуронат натрия

05:58

Отслойки Модель в Грызуны по субретинальной инжекции гиалуронат натрия

Related Videos

21.5K Views

Интрацеребровентрикулярное Вирусный Инъекция по неонатологии мозга мыши для устойчив и распространен нейронов трансдукции

10:15

Интрацеребровентрикулярное Вирусный Инъекция по неонатологии мозга мыши для устойчив и распространен нейронов трансдукции

Related Videos

63.9K Views

Внутривенных инъекций в новорожденных мышей

05:17

Внутривенных инъекций в новорожденных мышей

Related Videos

61.9K Views

Минимально инвазивная техника для инъекций в Крыса зрительного нерва

07:34

Минимально инвазивная техника для инъекций в Крыса зрительного нерва

Related Videos

10.3K Views

Грызун Модель Nonarteritic ишемическая оптическая нейропатия передняя (rNAION)

06:49

Грызун Модель Nonarteritic ишемическая оптическая нейропатия передняя (rNAION)

Related Videos

9.5K Views

Внутрикамерная инъекция крысам с низким риском побочных эффектов

06:19

Внутрикамерная инъекция крысам с низким риском побочных эффектов

Related Videos

1.8K Views

Системное лечение постнатальных, ювенильных и взрослых мышей методом инъекции ретробульбарного синуса

02:39

Системное лечение постнатальных, ювенильных и взрослых мышей методом инъекции ретробульбарного синуса

Related Videos

2.9K Views

Трансконъюнктивальный доступ для инъекции в зрительный нерв крысы

02:33

Трансконъюнктивальный доступ для инъекции в зрительный нерв крысы

Related Videos

972 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code