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Essentiel de la recherche sur les animaux de laboratoire

Cette collection est un guide vidéo complet pour les soins et l'utilisation appropriés des animaux de laboratoire. Étant donné que la majorité de la recherche biomédicale est axée sur des études impliquant des rongeurs, il est essentiel que chaque scientifique apprend les procédures essentielles démontrées dans ces vidéos.

  • Lab Animal Research

    13:39
    Gestion des rongeur et des Techniques de retenue

    source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, IN

    il a été démontré que la manipulation même minime des souris et des rats est stressante pour les animaux. Manipulation pour changer de cage et d’autres procédures non invasives provoque une augmentation de la fréquence cardiaque, pression artérielle et autres paramètres physiologiques, tels que les taux de corticostérone de sérum.s peuvent se poursuivre pendant plusieurs heures. Les méthodes de contrainte requis pour les injections et les prélèvements de sang aussi cause des changements physiologiques qui peuvent potentiellement affecter les données scientifiques. Formation à la gestion correcte des souris et des rats est nécessaire pour réduire au minimum les effets sur les animaux. 1 souris et les rats peuvent être immobilisées manuellement avec les dispositifs de retenue, ou avec des agents chimiques. Méthodes manuelles et l’utilisation de dispositifs de retenue sont couverts dans ce manuscrit. Toutes les méthodes de retenue pour comprennent le processus de levage les animaux de leur cage maison.

  • Lab Animal Research

    14:43
    Procédures de soins de base

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Souris et les rats représentent plus de 90 % des animaux utilisés en recherche biomédicale. Le bon entretien de ces animaux de recherche est essentielle à l’issue des expériences. Il existe des procédures générales qui s’appliquent à la majorité de ces souris et les rats, mais certains animaux, tels que les personnes exigent des mesures supplémentaires à prendre pour assurer leur subsistance pour l’expérimentation. Souris immunodéprimées couramment utilisés comprennent ceux qui se sont produites naturellement chez les souris consanguines et ceux qui ont été créés par génie génétique. Les premières souris immunodéprimées utilisés en recherche étaient des souris « nude ». La souris BALB/c Nude (nu) a été découvert en 1966, au sein d’une colonie de souris BALB/c qui produisait des souris dépourvues de cheveux et un thymus. Ces souris athymiques ont une inhibition du système immunitaire qui est dépourvue de cellules T. La valeur de cet animal a été rapidement découvert pour l’utilisation dans les études des infections microbiennes, déficits immunitaires et l’auto-immunité. Bien que pas aussi couramment utilisé comme la souris nude, il y a aussi un rat nu. Le rat nu est déficiente des lymphocytes T et montre la cellule appauvri les populations dans les régions de thymus dépendantes des organes l

  • Lab Animal Research

    13:53
    Principes fondamentaux de la reproduction et sevrage

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Des millions de souris et les rats sont élevées pour une utilisation dans la recherche biomédicale chaque année. Dans le monde entier, il y a plusieurs installations de grand élevage commercial que les souris offre aux laboratoires de recherche, mais de nombreuses installations choisissent de nichent aussi des souris et des rats afin de réduire les coûts et augmentera les possibilités de recherche. Reproduction à l’animalerie, les chercheurs sont en mesure de manipuler la génétique des animaux, le temps de la grossesse pour répondre aux besoins de la recherche et travailler avec les embryons et les nouveaux-nés comme l’exige. Souris et les rats peuvent être élevés dans une variété de régimes et de méthodes. Les procédures techniques, telles que l’utilisation de la cytologie vaginale, visualisation de la zone vaginale et l’observation des bouchons copulateurs, ont été développés afin de faciliter la synchronisation d’élevage pour correspondre aux besoins de recherche. Ce manuscrit est une vue d’ensemble des bases fondamentales de souris et de rat élevage et de procédures techniques utilisées. Des descriptions plus détaillées des régimes de reproduction complexe et la description complète des méthodes pour la cytologie vaginale, sont disponibles dans la liste des références.

  • Lab Animal Research

    13:03
    Identification rongeur je

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Une exigence fondamentale de la recherche biomédicale est l’identification des animaux de recherche. Il est essentiel que l’animal de droite est utilisé pour la collecte de données et des procédures. Rats et des souris de laboratoire peuvent être identifiés avec les méthodes permanentes suivantes : marques auriculaires, codes de reille, implantation de la micropuce, tatouages de queue de souris adultes et orteil tatouages chez les nouveau-nés. Méthodes de colorants et de stylos de marquage temporaire peuvent également servir pour les études de toxicité aiguë. Cette vidéo couvre les aspects techniques de l’oreille de marquage et de poinçonnage pour souris et rats, ainsi que les avantages de chacun en ce qui concerne le type de recherches menées sur les animaux. Pour ces méthodes d’identification pour se faire correctement, il faut connaître les techniques de base retenue manuelle pour chaque animal (couverts dans une vidéo séparée).

  • Lab Animal Research

    13:45
    Identification rongeur II

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Dossiers animaux doivent être maintenues avec précision pour s’assurer que la collecte de données est correcte. Gamme de dossiers de maintenir des informations sur les cartes de la cage pour avoir une base de données détaillée avec tous les renseignements pertinents sur chaque animal. Le rincipal de la tenue des dossiers est l’identification individuelle des animaux. Il y a une variété de méthodes appropriées pour identifier les souris et les rats. Cette vidéo décrit les techniques procédurales pour le tatouage, placement de puce et méthodes d’identification temporaire et se penche également sur les avantages de chacun.

  • Lab Animal Research

    15:05
    Composé d’Administration j’ai

    source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, IN

    que de nombreux protocoles de recherche exigent qu’une substance être injectées à un animal, l’itinéraire de livraison et la quantité de la substance doit être déterminée avec précision. Il existe plusieurs voies d’administration chez la souris et le rat. Quel itinéraire à utiliser est déterminée par plusieurs facteurs de lae pH de la solution, le volume nécessaire pour le dosage désiré et la viscosité de la solution. Lésions tissulaires graves peuvent se produire si une substance est administrée correctement. Cette vidéo se penche sur les diverses méthodes de retenue et de détails techniques pour les plus couramment utilisés itinéraires injection.

  • Lab Animal Research

    12:30
    Administration composée II

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Souvent, l’administration composée est une partie intégrante d’une étude sur des animaux. Plusieurs facteurs doivent être évalués afin de s’assurer que le composé est livré correctement. La voie d’administration influe sur les mécanismes d’absorption. Les caractéristiques de la substance est présente (le pH, viscosité et cter quelle voie d’administration est selected.1,2,3

  • Lab Animal Research

    12:33
    Administration composée III

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Il y a beaucoup d’itinéraires couramment utilisés pour l’administration composée chez des rats et des souris de laboratoire. Toutefois, certains protocoles peuvent nécessiter l’utilisation des itinéraires moins couramment utilisées, y compris les injections intradermiques, par voieacrâniennes. Une formation spécialisée est indispensable pour ces procédures à accomplir avec succès. Justification pour ces routes doive être fournis pour obtenir l’approbation institutionnelle animalier et utilisation Comité (IACUC).

  • Lab Animal Research

    12:20
    Composé d’Administration IV

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Il y a beaucoup d’itinéraires couramment utilisés pour l’administration composée chez des rats et des souris de laboratoire. Protocoles peuvent, toutefois, exiger l’utilisation des routes moins couramment utilisées : intracardiaque, coussinet plantaire et les injections dere. Une formation spécialisée est indispensable pour ces procédures à accomplir avec succès. Justification pour ces routes doive être fournis pour obtenir l’approbation institutionnelle animalier et utilisation Comité (IACUC).

  • Lab Animal Research

    16:34
    Retrait de sang J’ai

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    Collecte de sang est une exigence commune pour les études de recherche qui impliquent des souris et des rats. La méthode de prélèvement de sang chez des rats et des souris dépend de la quantité de sang nécessaire, la fréquence de l’échantillonnage, l’état de santé de l’animal à être saigné et le niveau de compétence du> tous les saignements de méthodes discutées-rétro-orbitaire sinus, saignements de snip queue initiale et intracardiaque saigne-nécessite l’utilisation d’une anesthésie générale.

  • Lab Animal Research

    12:26
    Prélèvement de sang II

    Source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, Indiana

    La collecte du sang de souris et les rats pour l’analyse peut se faire par le biais de diverses méthodes. Chaque méthode de collection a des variations dans le type de contrainte nécessaire, le caractère invasif de la procédure et la nécessité d’une anesthésie générale. 1 Historiquement, l’utilisation de la cavité dure a été utilisée, mais pas sans débat. La controverse concernant les dommages potentiels des tissus, ou même la cécité, causée par rétro-orbitaire saigne a conduit au développement de la veine faciale et sous-mandibulaire saignement méthodes chez les souris. Collecte de sang de la veine saphène dans les souris et les rats est une autre technique qui a été développée. Ces procédures ne nécessitent pas d’anesthésie et sont donc indiquées lors de l’utilisation d’anesthésiques peut-être entraîner des résultats de sang ou d’autres données.

  • Lab Animal Research

    12:34
    Maintenance et l’Induction de l’anesthésie

    source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, IN

    le Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (" The Guide ") stipule que l’évaluation et l’atténuation de la douleur font partie intégrante de la vétérinaire aux soins des animaux de laboratoire. 1 la définition de l’anesthésie est la perte de sensation ou de sentiment. C’est un impliquant des changements en profondeur anesthésique en ce qui concerne un animal ' métabolisme s, stimulation chirurgicale ou variations dans l’environnement extérieur.

  • Lab Animal Research

    10:11
    Considérations pour la chirurgie de rongeur

    source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, IN

    le Guide pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire 1 dicte que chirurgie de survie rongeurs être effectuée aseptiquement. Asepsie utilise des pratiques spécifiques qui minimisent la contamination du site chirurgical, y compris la préparation du patient, préparation de chirurgien, stérilisation des et autres fournitures et l’utilisation d’un environnement propre et contrôlé. Planification préopératoire, monitorage peropératoire et soins postopératoires sont essentiels pour la réussite de la récupération des animaux de chirurgies de survie.

  • Lab Animal Research

    18:51
    Diagnostique autopsie et récolte de tissus

    source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, IN

    nombreuses expérimentations animales dépendent de données finales collection moments qui sont recueillies à partir de la récolte et les essais d’organes et de tissus. L’utilisation de méthodes appropriées pour la collecte d’organes et de tissus peut influer sur la qualité des échantillons et l’analyse des données qui sont acquisetissus. La méthode d’euthanasie de l’animal peut également concerner la qualité des échantillons. Ce manuscrit donnera un aperçu de techniques d’autopsie appropriée pour les rats.

  • Lab Animal Research

    12:23
    Récolte de tissus stériles

    source : Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR ; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Université de Notre Dame, IN

    en 1959 le 3 R ' s ont été introduits par W.M.S. Russell et R.L. Burch dans leur livre les principes de Humane Experimental Technique. Les 3 R ' s sont remplacement, réduction et raffinement de l’utilisation des animaux en recherche. 1 l’utilisation de lignées cellulaires et les cultures de tissusd’animaux de recherche est une technique de remplacement, car il permet à de nombreuses expériences à mener in vitro. Récolte de tissus et organes destinés à la cellule et les cultures de tissus nécessite une technique aseptique pour éviter la contamination des tissus. Récolte stérile est également nécessaire pour les protéines et l’analyse de RNA et détermination des caractéristiques métaboliques des tissus. Ce manuscrit parlera du processus de récolte organe stérile chez les rats et les souris.

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