Introduction à la spectrométrie de masse

Analytical Chemistry

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Overview

Source : Laboratoire du docteur badria Al-Jamal - College London Kings

Spectrométrie de masse est une technique de chimie analytique qui permet l’identification des composés inconnus dans un échantillon, la quantification des matériaux connus, la détermination de la structure et les propriétés chimiques des molécules différentes.

Un spectromètre de masse est composé d’une source d’ionisation, un analyseur et un détecteur. Le processus implique l’ionisation des composés chimiques pour générer des ions. En utilisant inductivement couplé plasma (ICP), échantillons contenant des éléments d’intérêt sont introduits plasma d’argon sous forme de gouttelettes d’aérosol. Le plasma sèche l’aérosol, dissocie les molécules et un électron puis supprime les composants pour être détectée par le spectromètre de masse. Autres méthodes d’ionisation telles que l’ionisation par électrospray (ESI) et matrice assistée par désorption-ionisation laser (MALDI) sont utilisés pour analyser des échantillons biologiques. Suivant la procédure de l’ionisation, les ions sont séparées dans le spectromètre de masse selon leur rapport masse-à-charge (m/z), et l’abondance relative de chaque type d’ion est mesurée. Enfin, le détecteur consiste généralement en un multiplicateur d’électrons où la collision d’ions avec une anode en charge conduit à une cascade d’augmenter le nombre d’électrons, ce qui peut être détecté par un circuit électrique relié à un ordinateur.

Dans cette vidéo, la procédure d’analyse des ICP-MS sera décrite par la détection de 56Fe à titre d’exemple.

Cite this Video

JoVE Science Education Database. Notions essentielles de chimie analytique. Introduction à la spectrométrie de masse. JoVE, Cambridge, MA, (2017).

Principles

ICP-MS combine une source ICP (plasma à couplage inductif) haute température avec un spectromètre de masse.

Les échantillons doivent être sous forme ionique avant d’entrer dans l’analyseur de masse afin d’être détecté. Le processus de digestion des échantillons solides consiste à l’incubation des échantillons solides en acide fort et oxydation à haute température et pour une longue période de temps selon l’analyte métallique. L’échantillon est introduit comme un aérosol dans le plasma ICP (température de 6 000 – 10 000 K) pour être convertis en atomes gazeux qui sont ionisés.

L’analyseur de masse plus couramment utilisé est le filtre de masse quadripolaire. Il fonctionne comme un filtre électrostatique qui autorise uniquement les ions d’un ratio de masse à charge unique (m/z) pour atteindre le détecteur à un moment donné. Il peut séparer jusqu'à 15 000 daltons (Da) par seconde et par conséquent est considéré comme ayant des propriétés de l’analyse simultanée de plusieurs éléments. ICP-MS est une méthode très sensible qui permet la détection d’éléments avec des concentrations inférieures à particules par milliard (ppb) et en dessous de particules par trillion (ppt) pour certains éléments.

Enfin, le système de détecteur convertit le nombre d’ions frappe le détecteur en signal électrique. À l’aide d’étalons (échantillons de concentration connue pour un certain élément), il est possible d’évaluer la concentration d’un échantillon pour un ou plusieurs éléments d’intérêt.

Procedure

1. nettoyage des Tubes en Polycarbonate

  1. Utilisez les tubes en polycarbonate résistants aux solutions acides pour la digestion de l’échantillon. Afin d’éliminer toute trace de contamination de fer, remplissez tous les tubes avec 5 mL d’HCl 0,1 de M.
  2. Placer les tubes dans un bain-marie pendant 1 h à 50 ° C.
  3. Laver les tubes avec 5 mL d’eau Milli-Q et assécher les tubes dans une hotte de four ou de produit chimique.

2. préparation des échantillons et Digestion

  1. Place 200 µL de l’échantillon en 1,8 mL d’acide nitrique concentré (65 %).
  2. Placer les tubes dans un bain d’eau pendant une nuit à 50 ° C. Ajustez le protocole en augmentant la température si une réduction de la durée de la digestion totale est nécessaire.
  3. Laissez que les tubes refroidissent à température ambiante.
  4. Diluer les échantillons en ajoutant 8 mL d’eau Milli-Q pour obtenir un beuglement de concentration finale en acide nitrique 20 % (v/v).
  5. Centrifuger les tubes à 3 000 x g pendant 10 min granuler tout résidu macroscopique restants.

3. préparation de l’Instrument

  1. Nettoyer le flambeau de l’ICP à l’aide de sonication à 5 % d’acide nitrique pour 15 min. essuyer cônes 5 % d’acide nitrique. Changer le tuyau péristaltique. Vérifier le niveau d’huile de la pompe.
  2. Allumez l’argon et le refroidisseur, commencer à plasma. Commencer le débit des liquides dans le plasma et attendez pour instrument à se stabiliser, environ 20 min.
  3. Optimiser les tensions de la lentille. Desservent quotidiennement la vérification de la performance en mesurant des solutions de test contenant Mg, dans et votre pour confirmer la sensibilité de l’instrument de l’ICP-MS. Mesurer Ce et Ba où la forme oxydée et doubles ions chargés devraient rester inférieur à 3 %. Vérifier la masse à 8 et 220 Da pour mesurer le signal de fond.
  4. L’instrument est maintenant prêt à l’emploi.

4. sélection de la méthode et la liste d’exemples de l’utilisateur

  1. Sélectionnez l’élément et les isotopes de l’intérêt.
  2. Sélectionnez mode de balayage comme pic de saut.
  3. Choisir un temps de pause de 100 ms (minimum 50) avec 40 balayages (15 minimum) par la lecture. Sélectionnez une lecture par réplicat et 5 réplique (minimum 3). Le temps d’intégration totale est de 4 000 m si la quantité d’échantillon est limitée, réduire les temps de pause, nombre de balayages et de répétitions en gardant les valeurs supérieures aux valeurs minimales définies ci-dessus.
  4. Utiliser un débit de l’ammoniac (NH3) à 0,7 mL/min pour éviter l’interférence de 40Ar16O sur la détermination des 56Fe.
  5. Préparer la courbe d’étalonnage pour les éléments de choix.
  6. Exécuter les exemples.

Spectrométrie de masse est une technique analytique qui permet l’identification et la quantification des composés inconnus dans un échantillon et la détermination de leur structure.

En spectrométrie de masse, les ions de phase gaz proviennent les atomes ou les molécules dans un échantillon. Les ions sont alors séparées en fonction de leur rapport masse-à-charge, symbolisée par m/z.

Cette séparation permet la détermination des informations quantitatives et qualitatives sur un échantillon, comme leur masse et leur structure.

Cette vidéo va introduire les concepts de base et l’instrumentation de spectrométrie de masse et son utilisation dans la quantification de l’élément.

Un spectromètre de masse est composé d’une source d’ionisation, un analyseur de masse et un détecteur. À la source d’ionisation, les composés sont ionisés, habituellement à une charge positive simple.

Les ions peuvent être générées en utilisant diverses techniques, telles que l’impact avec un faisceau d’électrons, le plasma ou les lasers, chaque provoquant une plage de fragmentation qui aident à la détermination de la structure moléculaire. Ces méthodes sont plus ou moins regroupés en ionisation « dure » et « douce ».

Techniques d’ionisation dur provoquent fragmentation étendue, ayant pour résultat plus de fragments de plus faible masse.

Techniques d’ionisation douce entraîner une fragmentation moins, ou presque pas, avec une plage de masse moléculaire élevée.

Si la fragmentation est trop grande, structure précieuse information peut être perdue. Si c’est trop peu, petites molécules ne seront pas efficacement ionisées. La sélection d’une méthode d’ionisation dépend donc de l’analyte d’intérêt et le degré de fragmentation désiré.

Les ions sont ensuite accélérées dans un champ électrique lorsqu’ils entrent dans l’analyseur de masse, où ils seront séparés.

L’analyseur de masse plus élémentaire est un secteur magnétique, qui se compose d’un aimant courbe qui produit un champ magnétique homogène. La force d’attraction de l’aimant, ainsi que la force centrifuge de l’accélération des ions provoque leur voyage dans une trajectoire circulaire dans la courbe.

Le rayon de la trajectoire circulaire des ions dépend de la tension d’accélération, du champ magnétique appliqué et le rapport masse sur charge.

La tension et le champ magnétique sont ensuite sélectionnables pour ne permettre que certaines espèces de rapport masse-à-charge à travers la trajectoire. D’autres ions écrasement sur les côtés de la voie magnétique et sont perdues. En analysant l’intensité du champ magnétique, ions souhaitées atteint le détecteur à des moments différents, ainsi identifier chaque espèce précisément.

Un autre type d’analyseur de masse est le filtre de masse quadripolaire. Le quadripôle est constitué de deux paires de tiges métalliques parallèles, avec chaque paire de tiges adverses raccordés électriquement.

Une tension continue est appliquée pour les paires de la tige, et leur potentiel en permanence alterne donc les paires sont toujours en opposition de phase avec l’autre.

Le faisceau d’ions est alors réalisé par le Centre des quatre tiges. Les ions de voyage dans un chemin hélicoïdal, en raison de la constante attraction et la répulsion de tiges. Selon le rapport de masse à charge des ions, la volonté de l’ion Parcourez le chemin d’accès complet de la quadrupolaire et atteindre le détecteur ou va se planter dans les tiges.

Maintenant que les bases de la spectrométrie de masse ont été décrites, permet de jeter un oeil à son utilisation en laboratoire.

Le spectromètre de masse utilisé dans cette expérience est un plasma à couplage inductif, ou ICP, ioniseur, avec un filtre quadripolaire. L’instrument servira à détecter et quantifier un composant métallique dans un échantillon.

Pour commencer l’expérience, remplissez tous les tubes en polypropylène avec 5 mL d’acide chlorhydrique 0,1 M afin d’enlever toute trace de contamination de fer. Placer les tubes dans un bain-marie pendant 1 h à 50 ° C.

Après incubation, laver les tubes avec 5 mL d’eau déminéralisée et sécher les tubes dans une hotte de four ou de produit chimique.

Dans les tubes propres, ajouter 1,8 mL d’acide nitrique concentré et 200 μl de l’échantillon contenant l’isotope d’intérêt.

Suivre les consignes de sécurité lors de l’utilisation de l’acide concentré.

Placer les tubes dans un bain d’eau pendant la nuit. La température peut être augmentée pour raccourcir le temps de digestion, si nécessaire.

Après que l’échantillon a été digérée, laissez le refroidir tubes à température ambiante.

Ensuite, ajoutez 8 mL d’eau désionisée pour diluer les échantillons et pour obtenir une concentration de l’acide nitrique inférieur à 20 %. La dilution finale de l’échantillon est de 1/50. La concentration idéale pour pic est de l’ordre de parties par milliard. Centrifuger les tubes pour tout résidu macroscopique restants de granule.

ICP est une méthode d’ionisation dure qui utilise couplé plasma d’argon à environ 10 000 ° C qui est électriquement conductrices d’ioniser les molécules de l’échantillon.

Commencer l’instrument mis en place en inspectant le flambeau de l’ICP pour s’assurer qu’il est propre.

Puis, vérifiez que les cônes échantillonneur et skimmer pour s’assurer qu’ils sont également propres. Ces cônes permettent l’échantillonnage des uniquement la partie intérieure du faisceau d’ions généré par le flambeau de l’ICP et Loi constituant un obstacle pour le vide poussé du spectromètre de masse.

Vérifiez la pression de l’argon et commencer le refroidisseur. Démarrez le plasma et l’écoulement du liquide dans le système. Attendre 20 min pour le système pour se réchauffer complètement.

Ensuite, aspirez une solution de test standard, qui contient diverses normes élémentaires connues. La solution d’essai doit être sélectionnée pour couvrir la gamme massive attendue de la solution d’analyte.

Lorsque l’écoulement de la solution est établie, initialiser et tester l’instrument conformément aux directives du fabricant.

Pour faire fonctionner l’instrument, sélectionnez d’abord les éléments et isotopes d’intérêt. Puis définissez le mode de balayage au pic de saut.

Sélectionnez les cinq répétitions par mesure. Défini chaque réplicat pour contenir 40 mesure balaie, chaque balayage avec un temps de pause de 50 m le temps d’intégration totale est de 2 000 ms par réplicat.

Préparer une courbe d’étalonnage pour les éléments de choix en mesurant les solutions étalons préparées à l’avance.

Enfin, exécutez l’exemple, dans ce cas, les nanoparticules d’oxyde de fer. Déterminer la concentration de fer à l’aide de la courbe d’étalonnage de fer.

Spectrométrie de masse est utilisée dans un large éventail d’applications à l’aide de divers d’ionisation et les techniques d’analyse de masse.

Dans cet exemple, un type de spectrométrie de masse à ionisation douce, appelé matrix assisté laser desorption ionisation temps de vol ou de MALDI-TOF, a été utilisé pour analyser les protéines de poids moléculaire élevé. Avec la MALDI, les molécules sont stabilisées avec une matrice, pour diminuer le fractionnement lorsque les grosses molécules sont ionisées.

La solution protéique et la matrice ont été repérés sur la plaque MALDI propre tant séchés. La plaque MALDI a été insérée dans l’appareil, et l’échantillon analysé.

L’analyse des volatils et l’oxydation des composés sensibles a été mesurée en utilisant des électrons spectrométrie de masse, une technique d’ionisation dur.

Tout d’abord, un système de tube verrouillable a été conçu afin de permettre l’évacuation complète du tube, suivie du chargement de l’échantillon sous refroidissement par de l’azote liquide.

Le tube d’échantillon était relié à l’orifice d’entrée, et l’échantillon chargée dans l’instrument. Le spectre de masse de l’échantillon en l’occurrence tris(trifluoromethyl) phosphate, est ensuite analysé.

Un spectromètre de masse de faisceau moléculaire couplé avec le rayonnement synchrotron a été utilisé pour explorer la structure électronique des molécules de gaz phase et clusters.

Le faisceau moléculaire, intégré avec le rayonnement synchrotron, a fourni une méthode d’ionisation sélective pour sonder les molécules en phase gazeuse.

L’échantillon a été chargé dans la buse, la buse rechargé dans l’instrument, et le faisceau de photons autorisés à entrer dans la chambre.

Le spectre de masse a été ensuite recueilli et comparé aux données de l’efficacité de photoionisation afin de déterminer la structure électronique des molécules.

Vous avez juste regardé introduction de Jupiter à la spectrométrie de masse. Vous devez maintenant comprendre les instruments de base de la spectrométrie de masse et comment faire pour exécuter une analyse basée sur la spectrométrie de masse de base.

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Results

ICP-MS analyse d’échantillons contenant des nanoparticules d’oxyde de fer est indiqué ci-dessous. Une courbe d’étalonnage a été effectuée à l’aide de concentration connue de 56Fe (Figure 1). Le coefficient de corrélation proche de 1 (R2 = 0.999989) a montré la bonne relation linéaire entre la concentration de l’échantillon et l’intensité mesurée par le détecteur. Échantillons d’intérêts présentaient des valeurs au sein de la gamme d’étalonnage (Figure 2). Les concentrations calculées par le logiciel ont ensuite étaient ajustée en fonction de la dilution effectuée au cours du protocole. Le présent protocole décrit une dilution de 1/50 suite à la dilution dans de l’acide (1/10) et en Mili-Q de l’eau (1/5). Par exemple, une concentration de 51.427 µg/L a été mesurée pour le numéro de l’échantillon 51 (Figure 2). La concentration de l’échantillon initial était de 50 x plus élevé correspondant à 2,57 mg/L.

Figure 1
Figure 1. Courbe d’étalonnage pour 56mesures Fe. Quatre points standards (0,01, 0,1, 1 et 10 µg/mL) montrent un coefficient de corrélation (R2) de 0.999989. Cela confirme la bonne relation linéaire entre l’intensité du signal détecté et les concentrations de référence.

Figure 2
Figure 2. Résultats représentatifs suite Icpms mesures sur des échantillons de nanoparticules d’oxyde de fer. La concentration de chaque échantillon dilué est calculée automatiquement selon la courbe d’étalonnage définie.

Applications and Summary

Les domaines environnementaux et géologiques représentent la première utilisation pour ICP-MS, par exemple mesurer les contaminants présents dans l’eau, dans le sol ou dans l’atmosphère. La présence de contaminants à forte concentration dans l’eau du robinet comme Fe, Cu ou Al peut être surveillée à l’aide d’ICP-MS.

Les domaines de la science médicale et médecine légale aussi utilisent la détection de l’ICP-MS. En cas de suspicion d’un empoisonnement par les métaux comme l’arsenic, échantillons tels que le sang et l’urine peuvent être analysés à l’aide d’ICP-MS. Cette technique peut également fournir des informations précieuses en cas de pathologie impliquant des problèmes métaboliques ou questions hépatologiques, ce qui entraîne l’excrétion médiocre de certains éléments.

ICP-MS permet la quantification des rejets de métaux en toutes matières. Dans la Figure 3, la concentration de Fe a été mesurée en nanoparticules et associée à leurs propriétés d’imagerie de résonance magnétique (IRM). ICP-MS permet une quantification fiable des Fe des nanoparticules différents de discriminer les nanoparticules sont les plus efficaces pour les applications d’imagerie.

Une autre application est d’étudier la biodistribution des nanoparticules associées aux métaux. La figure 4 présente la biodistribution orgue de nanoparticules d’oxyde de fer chez les souris après injection intraveineuse de contenant. Après 24 h, chaque organe a été recueilli et digéré dans l’acide nitrique concentré jusqu'à ce que la digestion complète orgue a été atteint. Les 56concentration Fe a été quantifié par ICP-Mme résultats Voir la plus forte concentration de 56Fe dans le foie et la rate des souris injectées avec des nanoparticules que dans les organes des animaux naïfs. Il est donc conclu que les nanoparticules s’accumulent principalement dans les organes foie et la rate.

Figure 3
Figure 3. Résonance magnétique imagerie mesure (MRI) de nanoparticules fonction de leur concentration en Fe. Cinq concentrations de fer ont été utilisés (0,25, 0,5, 0,75, 1 et 1,25 mM) qui ont été imagées pour leurs propriétés de MRI (taux de relaxation, R2*).

Figure 4
Figure 4. Biodistribution des nanoparticules d’oxyde de fer après une injection intraveineuse chez la souris. Naïfs exemples montrent le niveau de l’organe basal du fer chez les souris non traitées. Après l’injection de nanoparticules contenant de l’oxyde de fer, la quantité de fer dans certaines augmentations de l’orgue qui est lié à l’accumulation des nanoparticules.

1. nettoyage des Tubes en Polycarbonate

  1. Utilisez les tubes en polycarbonate résistants aux solutions acides pour la digestion de l’échantillon. Afin d’éliminer toute trace de contamination de fer, remplissez tous les tubes avec 5 mL d’HCl 0,1 de M.
  2. Placer les tubes dans un bain-marie pendant 1 h à 50 ° C.
  3. Laver les tubes avec 5 mL d’eau Milli-Q et assécher les tubes dans une hotte de four ou de produit chimique.

2. préparation des échantillons et Digestion

  1. Place 200 µL de l’échantillon en 1,8 mL d’acide nitrique concentré (65 %).
  2. Placer les tubes dans un bain d’eau pendant une nuit à 50 ° C. Ajustez le protocole en augmentant la température si une réduction de la durée de la digestion totale est nécessaire.
  3. Laissez que les tubes refroidissent à température ambiante.
  4. Diluer les échantillons en ajoutant 8 mL d’eau Milli-Q pour obtenir un beuglement de concentration finale en acide nitrique 20 % (v/v).
  5. Centrifuger les tubes à 3 000 x g pendant 10 min granuler tout résidu macroscopique restants.

3. préparation de l’Instrument

  1. Nettoyer le flambeau de l’ICP à l’aide de sonication à 5 % d’acide nitrique pour 15 min. essuyer cônes 5 % d’acide nitrique. Changer le tuyau péristaltique. Vérifier le niveau d’huile de la pompe.
  2. Allumez l’argon et le refroidisseur, commencer à plasma. Commencer le débit des liquides dans le plasma et attendez pour instrument à se stabiliser, environ 20 min.
  3. Optimiser les tensions de la lentille. Desservent quotidiennement la vérification de la performance en mesurant des solutions de test contenant Mg, dans et votre pour confirmer la sensibilité de l’instrument de l’ICP-MS. Mesurer Ce et Ba où la forme oxydée et doubles ions chargés devraient rester inférieur à 3 %. Vérifier la masse à 8 et 220 Da pour mesurer le signal de fond.
  4. L’instrument est maintenant prêt à l’emploi.

4. sélection de la méthode et la liste d’exemples de l’utilisateur

  1. Sélectionnez l’élément et les isotopes de l’intérêt.
  2. Sélectionnez mode de balayage comme pic de saut.
  3. Choisir un temps de pause de 100 ms (minimum 50) avec 40 balayages (15 minimum) par la lecture. Sélectionnez une lecture par réplicat et 5 réplique (minimum 3). Le temps d’intégration totale est de 4 000 m si la quantité d’échantillon est limitée, réduire les temps de pause, nombre de balayages et de répétitions en gardant les valeurs supérieures aux valeurs minimales définies ci-dessus.
  4. Utiliser un débit de l’ammoniac (NH3) à 0,7 mL/min pour éviter l’interférence de 40Ar16O sur la détermination des 56Fe.
  5. Préparer la courbe d’étalonnage pour les éléments de choix.
  6. Exécuter les exemples.

Spectrométrie de masse est une technique analytique qui permet l’identification et la quantification des composés inconnus dans un échantillon et la détermination de leur structure.

En spectrométrie de masse, les ions de phase gaz proviennent les atomes ou les molécules dans un échantillon. Les ions sont alors séparées en fonction de leur rapport masse-à-charge, symbolisée par m/z.

Cette séparation permet la détermination des informations quantitatives et qualitatives sur un échantillon, comme leur masse et leur structure.

Cette vidéo va introduire les concepts de base et l’instrumentation de spectrométrie de masse et son utilisation dans la quantification de l’élément.

Un spectromètre de masse est composé d’une source d’ionisation, un analyseur de masse et un détecteur. À la source d’ionisation, les composés sont ionisés, habituellement à une charge positive simple.

Les ions peuvent être générées en utilisant diverses techniques, telles que l’impact avec un faisceau d’électrons, le plasma ou les lasers, chaque provoquant une plage de fragmentation qui aident à la détermination de la structure moléculaire. Ces méthodes sont plus ou moins regroupés en ionisation « dure » et « douce ».

Techniques d’ionisation dur provoquent fragmentation étendue, ayant pour résultat plus de fragments de plus faible masse.

Techniques d’ionisation douce entraîner une fragmentation moins, ou presque pas, avec une plage de masse moléculaire élevée.

Si la fragmentation est trop grande, structure précieuse information peut être perdue. Si c’est trop peu, petites molécules ne seront pas efficacement ionisées. La sélection d’une méthode d’ionisation dépend donc de l’analyte d’intérêt et le degré de fragmentation désiré.

Les ions sont ensuite accélérées dans un champ électrique lorsqu’ils entrent dans l’analyseur de masse, où ils seront séparés.

L’analyseur de masse plus élémentaire est un secteur magnétique, qui se compose d’un aimant courbe qui produit un champ magnétique homogène. La force d’attraction de l’aimant, ainsi que la force centrifuge de l’accélération des ions provoque leur voyage dans une trajectoire circulaire dans la courbe.

Le rayon de la trajectoire circulaire des ions dépend de la tension d’accélération, du champ magnétique appliqué et le rapport masse sur charge.

La tension et le champ magnétique sont ensuite sélectionnables pour ne permettre que certaines espèces de rapport masse-à-charge à travers la trajectoire. D’autres ions écrasement sur les côtés de la voie magnétique et sont perdues. En analysant l’intensité du champ magnétique, ions souhaitées atteint le détecteur à des moments différents, ainsi identifier chaque espèce précisément.

Un autre type d’analyseur de masse est le filtre de masse quadripolaire. Le quadripôle est constitué de deux paires de tiges métalliques parallèles, avec chaque paire de tiges adverses raccordés électriquement.

Une tension continue est appliquée pour les paires de la tige, et leur potentiel en permanence alterne donc les paires sont toujours en opposition de phase avec l’autre.

Le faisceau d’ions est alors réalisé par le Centre des quatre tiges. Les ions de voyage dans un chemin hélicoïdal, en raison de la constante attraction et la répulsion de tiges. Selon le rapport de masse à charge des ions, la volonté de l’ion Parcourez le chemin d’accès complet de la quadrupolaire et atteindre le détecteur ou va se planter dans les tiges.

Maintenant que les bases de la spectrométrie de masse ont été décrites, permet de jeter un oeil à son utilisation en laboratoire.

Le spectromètre de masse utilisé dans cette expérience est un plasma à couplage inductif, ou ICP, ioniseur, avec un filtre quadripolaire. L’instrument servira à détecter et quantifier un composant métallique dans un échantillon.

Pour commencer l’expérience, remplissez tous les tubes en polypropylène avec 5 mL d’acide chlorhydrique 0,1 M afin d’enlever toute trace de contamination de fer. Placer les tubes dans un bain-marie pendant 1 h à 50 ° C.

Après incubation, laver les tubes avec 5 mL d’eau déminéralisée et sécher les tubes dans une hotte de four ou de produit chimique.

Dans les tubes propres, ajouter 1,8 mL d’acide nitrique concentré et 200 μl de l’échantillon contenant l’isotope d’intérêt.

Suivre les consignes de sécurité lors de l’utilisation de l’acide concentré.

Placer les tubes dans un bain d’eau pendant la nuit. La température peut être augmentée pour raccourcir le temps de digestion, si nécessaire.

Après que l’échantillon a été digérée, laissez le refroidir tubes à température ambiante.

Ensuite, ajoutez 8 mL d’eau désionisée pour diluer les échantillons et pour obtenir une concentration de l’acide nitrique inférieur à 20 %. La dilution finale de l’échantillon est de 1/50. La concentration idéale pour pic est de l’ordre de parties par milliard. Centrifuger les tubes pour tout résidu macroscopique restants de granule.

ICP est une méthode d’ionisation dure qui utilise couplé plasma d’argon à environ 10 000 ° C qui est électriquement conductrices d’ioniser les molécules de l’échantillon.

Commencer l’instrument mis en place en inspectant le flambeau de l’ICP pour s’assurer qu’il est propre.

Puis, vérifiez que les cônes échantillonneur et skimmer pour s’assurer qu’ils sont également propres. Ces cônes permettent l’échantillonnage des uniquement la partie intérieure du faisceau d’ions généré par le flambeau de l’ICP et Loi constituant un obstacle pour le vide poussé du spectromètre de masse.

Vérifiez la pression de l’argon et commencer le refroidisseur. Démarrez le plasma et l’écoulement du liquide dans le système. Attendre 20 min pour le système pour se réchauffer complètement.

Ensuite, aspirez une solution de test standard, qui contient diverses normes élémentaires connues. La solution d’essai doit être sélectionnée pour couvrir la gamme massive attendue de la solution d’analyte.

Lorsque l’écoulement de la solution est établie, initialiser et tester l’instrument conformément aux directives du fabricant.

Pour faire fonctionner l’instrument, sélectionnez d’abord les éléments et isotopes d’intérêt. Puis définissez le mode de balayage au pic de saut.

Sélectionnez les cinq répétitions par mesure. Défini chaque réplicat pour contenir 40 mesure balaie, chaque balayage avec un temps de pause de 50 m le temps d’intégration totale est de 2 000 ms par réplicat.

Préparer une courbe d’étalonnage pour les éléments de choix en mesurant les solutions étalons préparées à l’avance.

Enfin, exécutez l’exemple, dans ce cas, les nanoparticules d’oxyde de fer. Déterminer la concentration de fer à l’aide de la courbe d’étalonnage de fer.

Spectrométrie de masse est utilisée dans un large éventail d’applications à l’aide de divers d’ionisation et les techniques d’analyse de masse.

Dans cet exemple, un type de spectrométrie de masse à ionisation douce, appelé matrix assisté laser desorption ionisation temps de vol ou de MALDI-TOF, a été utilisé pour analyser les protéines de poids moléculaire élevé. Avec la MALDI, les molécules sont stabilisées avec une matrice, pour diminuer le fractionnement lorsque les grosses molécules sont ionisées.

La solution protéique et la matrice ont été repérés sur la plaque MALDI propre tant séchés. La plaque MALDI a été insérée dans l’appareil, et l’échantillon analysé.

L’analyse des volatils et l’oxydation des composés sensibles a été mesurée en utilisant des électrons spectrométrie de masse, une technique d’ionisation dur.

Tout d’abord, un système de tube verrouillable a été conçu afin de permettre l’évacuation complète du tube, suivie du chargement de l’échantillon sous refroidissement par de l’azote liquide.

Le tube d’échantillon était relié à l’orifice d’entrée, et l’échantillon chargée dans l’instrument. Le spectre de masse de l’échantillon en l’occurrence tris(trifluoromethyl) phosphate, est ensuite analysé.

Un spectromètre de masse de faisceau moléculaire couplé avec le rayonnement synchrotron a été utilisé pour explorer la structure électronique des molécules de gaz phase et clusters.

Le faisceau moléculaire, intégré avec le rayonnement synchrotron, a fourni une méthode d’ionisation sélective pour sonder les molécules en phase gazeuse.

L’échantillon a été chargé dans la buse, la buse rechargé dans l’instrument, et le faisceau de photons autorisés à entrer dans la chambre.

Le spectre de masse a été ensuite recueilli et comparé aux données de l’efficacité de photoionisation afin de déterminer la structure électronique des molécules.

Vous avez juste regardé introduction de Jupiter à la spectrométrie de masse. Vous devez maintenant comprendre les instruments de base de la spectrométrie de masse et comment faire pour exécuter une analyse basée sur la spectrométrie de masse de base.

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