Determinación fotométrica de proteínas

Determinar la concentración de una proteína en las muestras es un paso fundamental en muchos ensayos bioquímicos. Determinación fotométrica puede hacerse con muestras pequeñas. Más una muestra contiene sustancias absorben la luz, menos la luz se transmite a través de él. Esto proporciona una medida cuantitativa de las sustancias absorbentes. Estos conceptos son tan fundamentales a la ciencia que son los artículos que introducen dos de las técnicas en los tres trabajos más citados de todos los tiempos. Este video le mostrará los conceptos detrás de algunas de la proteína fotométrica más comun técnicas de determinación, cómo se realizan y cómo se analizan los datos obtenidos.

Determinación fotométrica de la proteína se basa en la relación entre concentración y absorción de luz. Esto se conoce como la ley de Beer-Lambert, que establece que la concentración de una especie de absorción de luz es proporcional a la absorbancia.

Este principio es la base de todos los métodos de determinación fotométrica de la proteína.

Para el análisis de absorción directa, se miden los valores de absorbancia de las muestras inalteradas de la proteína. Debido a sus cadenas laterales aromáticas, residuos de triptófano y tirosina dan las lecturas de absorbancia máximas a una longitud de onda de 280 nm.

Sin embargo, estos aminoácidos, que son dos de los menos con frecuencia encontrados en las proteínas-son presentes en diferentes cantidades en cada proteína, así que cada determinación es único. Para superar esta limitación, ensayos más complejos-que no son dependientes de estos aminoácidos-fueron desarrollados.

Un ejemplo es el ensayo de Bradford, donde el tinte de color se agrega a la muestra. El tinte, conocido como azul de Coomassie, responde proporcionalmente la proteína más presente, los eventos de enlace más con el tinte.

Entonces, la concentración de proteína se determina midiendo la absorbancia del colorante azul de Coomassie encuadernado, que absorbe la luz en 594 nm. Sin embargo, el ensayo de Bradford es lineal en un rango corto de concentraciones, por lo que a menudo se requieren diluciones antes del análisis.

El método de Lowry combina el reactivo de Biuret, una solución alcalina de cobre iones que reaccionan con los enlaces peptídicos y el reactivo de Folin-Ciocâlteu, que oxida los residuos de proteína aromáticos. El cambio de color resultante de la muestra es proporcional a la concentración de proteína.

Puede determinar la absorbancia del reactivo de Folin reducido a 750 nm. Como absorción directa, cada proteína tiene una respuesta única y debe ser calibrado para la proteína de interés. Ahora que hemos analizado los principios básicos detrás de algunos de los ensayos más comunes, vamos a ver en directo cómo realizan la absorción y el ensayo de Bradford.

Para comenzar un análisis de absorción directa, el espectrofotómetro se calibra con un espacio en blanco para determinar cero absorbancia. Soluciones estándar son preparadas para usar en la creación de la curva de calibración. Entonces, una parte alícuota de la primera norma se añade a una cubeta y colocan en el espectrofotómetro.

El valor de absorbancia a 280 nm se registra a continuación. Este proceso se repite para cada estándar, usando una cubeta limpia para cada serie. Una vez finalizado, se crea una curva de calibración por representación de la absorbancia frente a concentración. La pendiente de esta recta es el coeficiente de atenuación molar, que relaciona la absorbancia concentración.

A continuación, la muestra desconocida se añade a una cubeta y se registra el valor de absorbancia. Como el análisis de datos para los métodos diferentes de determinación fotométrica es similar, cubriremos después nos fijamos en el ensayo de Bradford.

Aquí, el análisis de la proteína de Bradford se realiza con un estándar de BSA sobre una placa de 96 pocillos. Para empezar, se preparan soluciones acciones de BSA.

Las soluciones desconocidas se diluyen con agua desionizada para asegurar que las concentraciones dentro del intervalo del ensayo. Dependiendo del kit, el tinte Coomassie también puede requerir dilución. Entonces, la curva de calibración se configura mediante la adición de las normas de BSA a la placa de 96 pocillos.

Se añade agua desionizada para alcanzar la concentración necesaria para generar una curva estándar. La muestra desconocida se debe agregar al plato en triplicado para asegurar una medición exacta. Coomassie tinte siguiente se añade a cada pocillo, mezclar con la pipeta.

Agua desionizada se agrega a un pozo vacío como un espacio en blanco, para medir la absorbancia. Después de esperar 5 min para el tinte a enlazar, se mide la absorbancia en un lector de placa a 590 nm.

Ahora que hemos realizado unos pocos ensayos, echemos un vistazo a cómo analizar los datos. Cada método de determinación de proteína fotométrico se basa en la ley de Beer-Lambert.

La absorbancia medida de los estándares se utiliza para crear una curva de calibración, que se utiliza para determinar la concentración de muestras desconocidas. Esta curva puede ser trazada manualmente, aunque más nuevas herramientas espectrofotométricos creará la curva de calibración una vez que se han medido todas las normas. Estos sistemas también calculará la concentración de proteína como se analizan muestras desconocidas.

Ahora que hemos analizado cómo analizar datos de determinación de la proteína fotométrico, echemos un vistazo a algunas de las formas que se utilizan estos procedimientos.

Los principios de la determinación fotométrica de la proteína también pueden utilizarse para medir directamente la concentración de ácidos nucleicos. El espectrofotómetro nanodrop acepta muestras de volumen muy pequeño en un pedestal ópticamente activo. La absorbancia se mide, y el sistema determina automáticamente la concentración de ácidos nucleicos. Porque las proteínas y otras fuentes pueden interferir con las mediciones, pureza de la muestra se determina mediante el análisis de 260 a 280 nm y proporciones de absorbancia de 260 a 230 nm. Puros ácidos nucleicos típicamente producen proporciones de aproximadamente 1.8 y 2.0 aproximadamente para ADN y ARN, respectivamente.

Determinación fotométrica de la proteína puede también utilizarse en la producción de materiales biomiméticos, que se inspiran de la naturaleza para provocar respuestas celulares específicas. Adhesinas recombinantes están obligados a perlas de poliestireno para simular la fijación bacteriana a las células del huésped. El ensayo de Bradford se utiliza para determinar la eficiencia de acoplamiento de la recombinante adherencia a los granos en la producción de los materiales biomiméticos.

Ensayos alternativos proteína fotométrico pueden utilizarse en la detección y caracterización de agentes antimicrobianos de la proteína. Remazol brillante azul tinte de R está covalentemente a bacterias muertas por calor. La proteína antimicrobiana se incuba en la solución de teñido. A continuación, se centrifuga la muestra y la absorbancia del sobrenadante a 595 nm se mide mediante un espectrofotómetro para microplacas. Mayor absorbencia, por el tinte soluble en el sobrenadante de las bacterias marcadas, es una medida cuantitativa de la actividad enzimática.

Sólo ha visto video de Zeus sobre determinación fotométrica de la proteína. Este video describe los principios de determinación fotométrica fue sobre procedimiento general para algunos ensayos comunes y había cubierto algunos nuevos avances en las técnicas. ¡Gracias por ver!