Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

İnsan Pankreas Adacık İzolasyonu: Bölüm II: İnsan Islets saflaştırılması ve Kültür

Published: May 26, 2009 doi: 10.3791/1343

Summary

, Yüksek kalite ve insan adacıklar uygun miktarda sağlamak başarılı bir adacık nakli için önemli önkoşullar biridir. Bu video, adım adım tarif insan pankreas adacık izolasyonu (Bölüm II: insan adacıklar arıtma ve kültür) için prosedürleri değiştirilmiş bir otomatik yöntemi kullanarak.

Abstract

Tip 1 diyabet Yönetimi, yıl içinde 100 milyar dolar maliyet, hem birey ve toplum, külfetli. Glikoz izleme ve yeni insülin formülasyonları yaygın kullanımına rağmen birçok kişi hala yıkıcı ikincil komplikasyonlar gelişir. Pankreas adacık nakli, diyabetik hastalarda normal glukoz kontrolü yakın geri yükleyebilirsiniz

Protocol

1. Adacık saflaştırılması

  1. Adacık arıtma işlemi başlatmak için, COBE çanta yüklemek yeşil tüp hariç tüm tüpler kelepçe ve 0 1.500 için hızını ayarlamak ve süper.
  2. Kaputun pompa ve degrade bardak kurma ve toplama boru yeşil tüpüne bağlamak.
  3. : "Spin" sonra ön behere 110 ml Ficoll 1.100 itin ve COBE çanta yüklemek için pompa start Şimdi Ficoll 1.100 yükleme başlayabilirsiniz. Ficoll yüklü olduğundan, süper dışarı basın durdurmak pompa, pompa kafası çözülme ve 100 süper çıkış hızını ayarlamak.
  4. Ficoll beher ulaşır ve boru, pompa başında yeniden-klemp tüm hava dışarı atılır. 3.000 spin hız ve süper çıkış hızı 0 olarak ayarlayın.
  5. Şimdi ön behere ağır degrade dökerek gradyanlar yüklemek için hazırlar. Hafif herhangi bir havayı çıkarmak için iki bardak arasındaki kelepçe bırakın. Sonra ışık degrade arka behere dökün.
  6. Manyetik karıştırıcı açın, COBE makine "spin" tuşuna basın, iki bardak bağlayan tüp kelepçe kaldırmak ve görsel olarak, ağır ve hafif gradyanlar karıştırma olduğundan emin olun.
  7. Gradyanlar karıştırma başladıktan sonra, santrifüj açmak. Bir dakika bekleyin ve sonra karıştırma gradyanlar yüklemek için pompa açın.
  8. Doku degrade ön beher düşük çalıştırmak yük, ancak hava yükleme tüp girmek için yetecek kadar düşük, daha sonra bardak bağlayan tüp reclamp ve doku yüklemek için.
  9. Dokusunun geri kalanını eklemeye devam edin. Daha sonra 50 ml yıkama solüsyonu ile doku düzenlenen tüp yıkama ve ön beher yıkamak için kullanın.
  10. Doku son çanta girerken, aynı anda, pompa durdurmak pompa başındaki çözülme ve yastığının üzerine boru kelepçe. 5 dakika santrifüj devam edin.
  11. Santrifüj devam ederken, kaput için 12 toplama tüpleri getirmek ve onların kapakları gevşetin. Sarı tüp toplama boru takın ve steril toplama ucu konik tüp 1 içine yerleştirin. Sonra sarı tüp çözülme ve yeşil tüp kelepçe.
  12. Spin sona erdiğinde, yavaş yavaş 100 Superout yükseltmek. 1 tüp 150 ml toplayın. Sonra (200-230 ml) 30 ml tüpler 2-12 toplamak.
  13. Koleksiyonu tamamlamak, COBE "DUR" itin. Şimdi bu arıtma sona erdi, adacıklar değerlendirilmeli ve kültür olabilir.

2. Örnekleme ve kültür

  1. Saflaştırılmış adacıklar kesirler topladıktan sonra, her biri 12 toplama tüpleri bir örnek çıkarın ve Dithizone ile leke. Boyama katmanları düşük saflık adacıklar yüksek saflıkta adacıklar vs katmanları içeren gösterecektir.
  2. Yüksek ve düşük saflıkta doku ve havuz her bir araya toplayın.
  3. Spin ve iki kez yıkayın. Final Yıkama medya ile ikinci yıkamadan sonra, her birinin hacmi 250 ml getirmek.
  4. Değerlendirmek için toplanmış fraksiyonları düşük havuzlanmış kesirler ve bir 1 ml örnek yüksek iki 1 ml örnek alarak başlar. Her 1 ml örnek 9 ml yıkama solüsyonu içeren konik bir tüp içine aktarın.
  5. Daha sonra, her 15 ml tüp sayma çanak 1 ml transfer. Hücrelerin mikroskop altında incelemek ve saymak.
  6. (Ondalık adacıklar toplam EIN / saflık) / (şişesi ortalama 30.000 EIN): hücreler, kültür, aşağıdaki formül kullanılarak adacıklar için gerekli şişe sayısını hesaplamak sayımından sonra. Örneğin, 100.000 adacıklar% 90 saflıkta 4 şişeler kültür.
  7. 37 T175 matara ve kültür adacıkları transfer ˚ C ve% 5 CO 2 inkübatör.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Insan adacık izolasyon teknikleri konusunda önemli gelişmeler olmasına rağmen, adacık verimi son derece değişken ve öngörülemez kalır. Arıtma sindirilir pankreas dokusu nakli başarılı enzimatik sindirim sonra yeterli bir isle kütlesi kurtarmak için çok önemlidir. Bu yöntemi kullanarak, son derece saf bir insan adacıklar üstün bir kurtarma gösterildi, çünkü UIC arıtma yöntemi tavsiye edilir. Ayrıca, 50 ml kadar sindirilmiş doku böylece insan adacıklar iskemi ile ilişkili yaralanma izolasyon kullanılan toplam süre kısaltarak en aza indirmek, arıtma için işletilen bir tek COBE yüklenebilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Adacık Hücre Kaynak Merkezi NIH hibe (RFA-RR 05-003), Christopher Vakfı Efroymson Vakfı ve Tellabs Vakfı olarak, Chicago Illinois Üniversitesi kurucu olarak tarafından desteklenen.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Centrifuge equipment Beckman Coulter Inc. 424803
Cobe 2991 Cell Processor equipment Gambro. BCT 2556 islet purification
MZ6 Inverted Microscopy TLBD4.1 equipment Leica Microsystems 4103
Cell Culture Dish with 2 mm Grid equipment Nalge Nunc international 174926 islet counting
Digital Sight DS L1 equipment Nikon Instruments 217267
COBE bag disposable equipment O.R. Solution 66707003
T175 culture flask disposable equipment Sarstedt Ltd 83.1812.500
University of Wisconcin (UW) solution reagent DURAMED 1000-46-06
Hank’s Buffered Salt Solution (HBSS) reagent Mediatech, Inc. 99-597-CM
Ficoll 1.100 reagent Bichrom AG L6155
M199 media (wash solution) reagent Mediatech, Inc. 99-784-CM
Final wash/Culture Medium reagent Mediatech, Inc. 99-785-CV
Dithizone reagent Sigma-Aldrich D5130

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Shapiro, A. M. Islet transplantation in seven patients with type 1 diabetes mellitus using a glucocorticoid-free immunosuppressive regimen. N Engl J Med. 343, 230-238 (2000).
  2. Nano, R. Islet isolation for allotransplantation: variables associated with successful islet yield and graft function. Diabetologia. 48, 906-912 (2005).
  3. Barbaro, B. Improved human pancreatic islet purification with the refined UIC-UB density gradient. Transplantation. 84, 1200-1203 (2007).
  4. Lakey, J. R., Rajotte, R. V., Warnock, G. L., Kneteman, N. M. Human pancreas preservation prior to islet isolation. Cold ischemic tolerance. Transplantation. 59, 689-694 (1995).
  5. Fridell, J. A. Comparison of histidine-tryptophan-ketoglutarate solution and University of Wisconsin solution for organ preservation in clinical pancreas transplantation. Transplantation. 77, 1304-1306 (2004).
  6. Potdar, S. Initial experience using histidine-tryptophan-ketoglutarate solution in clinical pancreas transplantation. Clin Transplant. 18, 661-665 (2004).
  7. Salehi, P. Human islet isolation outcomes from pancreata preserved with Histidine-Tryptophan Ketoglutarate versus University of Wisconsin solution. Transplantation. 82, 983-985 (2006).
  8. Ricordi, C., Lacy, P. E., Scharp, D. W. Automated islet isolation from human pancreas. Diabetes. 38 Suppl 1, 140-142 (1989).
  9. Ricordi, C. Islet isolation assessment in man and large animals. Acta Diabetol Lat. 27, 185-195 (1990).

Tags

Tıp Sayı 27 İnsan adacıklar Tip 1 diyabet insan adacık arıtma insan adacık nakli
İnsan Pankreas Adacık İzolasyonu: Bölüm II: İnsan Islets saflaştırılması ve Kültür
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Qi, M., Barbaro, B., Wang, S., Wang, More

Qi, M., Barbaro, B., Wang, S., Wang, Y., Hansen, M., Oberholzer, J. Human Pancreatic Islet Isolation: Part II: Purification and Culture of Human Islets. J. Vis. Exp. (27), e1343, doi:10.3791/1343 (2009).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter