Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

הדמיה חיה של תסיסנית melanogaster Hemocyte נדידות עובריים

Published: February 12, 2010 doi: 10.3791/1696

Summary

Hemocytes תסיסנית לפזר מעל מכלול של העובר המתפתח. פרוטוקול זה מדגים כיצד הר התמונה באמצעות העברות אלה עוברים עם hemocytes שכותרתו fluorescently.

Abstract

תא מחקרים רבים כתובת הגירה באמצעות

Protocol

הכנה

  1. השג המתאים קווי תסיסנית המכיל hemocyte ספציפי Gal4 הנהג (למשל SRP-Gal4 2) ו כתב ניאון מקודדים גנטית כטב"מ תחת שליטה (למשל כטב"מ-GFP). זבובים הומוזיגוטים SRP-Gal4, כטב"מ-GMA 3 או crq-Gal4, כטב"מ-GFP 4, 5 הם שימושיים במיוחד לצורך הדמיה (nb GMA היא GFP התמזגו תחום אקטין מחייב של moesin); ראו בהמשך לדיון על את טווח Gal4 נהגים כטב"מ בונה זמין (המניות Bloomington המרכז מכיל מגוון רחב).
  2. חוצה גנטית בדרך כלל מבוצעים כזה אללים מוטנטים מאוזנים באמצעות פלורסנט balancers CTG או TTG 6, עם Gal4 נהגים כטב"מ בונה נישא על כרומוזומים הומולוגיים חלופיים. זה מאפשר לבחור מוטציות הומוזיגוטים על בסיס של העדר CTG / TTG הקשורים GFP פלואורסצנטי (זה נעשה בשלב 2.11).
  3. Amplify מניות וזבובים מקום בכלוב הנחת עם צלחת אגר מיץ תפוחים 7. הזבובים צריך לפחות יומיים להתאקלם לכלוב לפני הנחת עוברים מספיק להתחיל להיות מונח. באופן כללי עשרים זבובים המין כל צריך להיות מספיק כדי לייצר עוברים מספיק הדמיה אך יש לציין כי קווים שונים יש שונות של פוריות. אנו משתמשים 55mm צלחות פטרי להשתלב בתחתית כוס פלסטיק, ניקב בבסיסו על מנת לאפשר זרימת אוויר. האמצעי המדויק של אוסף העובר לא חשוב, אבל תזמונים הם קריטיים על מנת לאסוף מבוים כהלכה עוברים.
  4. איסוף עוברים מתוך צלחת לילה מיץ תפוחים אגר שמרו על 25 מעלות צלזיוס או צלחת מתוזמן. עבור אלה האחרונים אנחנו בדרך כלל מאפשרים הזבובים להניח בצלחת מראש התחמם במשך 4 שעות, לפני הסרת צלחת והניח אותו על 18 מעלות צלזיוס במשך 15-16 שעות לפני הרכבה של עוברים, זה מספק עוברים משלב מאוחר 12 דרך שלב 15 של פיתוח. צלחת לילה מכיל מגוון גדול יותר של שלבים אבל מציע את היתרון של רמות גבוהות יותר של ביטוי עיתונאי ניאון hemocytes עקב תקופת זמן ארוכה יותר של 25 ° C כמערכת Gal4-כטב"מ הוא רגיש לטמפרטורה.

נוהל

  1. לעקור מן העוברים את צלחת אגר מיץ תפוחים באמצעות כמות קטנה של מים במכחול רך שקצהו. עוברים וחילצה ניתן לראות בקלות בעין בלתי מזוינת.
  2. העברת העוברים על מסננת תא (פישר) או תוצרת בית 7 סל על ידי שפיכת מים מן צלחת אגר מיץ תפוחים לתוך הסל שנערך על מבחנה כדי לאסוף מים לבזבז.
  3. חזור על שלב 2.2 עד שאתה מרוצה יש לך מספיק עוברי העבירה מן צלחת אגר מיץ תפוחים.
  4. לשטוף עוברים מסננת תא / סל באמצעות מים.
  5. מניחים מסננת תא / סל במכסה צלחת פטרי של צלחת אגר מיץ תפוחים ולהוסיף מספיק אקונומיקה מסודר להשעות עוברים מסננת התא / סל.
  6. עקבו dechorionation של העוברים על מיקרוסקופ לנתיחה תחת brightfield: dechorionation תושלם כאשר הנספחים הגב יש מומס, שאמור להתרחש תוך שתי דקות.
  7. הסר מסננת / סל תא עוברי המכיל מ אקונומיקה לשטוף באקונומיקה שיורית באמצעות מים. עקבות של אקונומיקה כל יש להסיר לפני שתמשיך לשלב 2.8. טריק להעריך האם כל אקונומיקה הוסר הוא למחוק את המים שיורית על הכחול בצבע רקמות במעבדה - אם יש שאריות אקונומיקה הצבע הכחול יהיה מולבן לבן / ורוד.
  8. כתם את המים הנותרים באמצעות רקמות במעבדה / mediwipes להחיל התחתון של התא מסננת / סל.
  9. המקום טיפה של מים מכסה צלחת פטרי. בעזרת מכחול דק, לאסוף את כל העוברים dechorionated מסל את העובר ואת resuspend אותם אגל. לאחר מכן לייבש את העוברים על ידי aspirating מים באמצעות micropipette או סופג אותו בזהירות עם רקמות במעבדה / mediwipes.
  10. לאחר עוברים כבר יבשים, להוסיף טיפה של שמן voltalef לכסות את כל העוברים. שים טיפה קטנה השנייה של שמן הסמוך אגל המכילה את העוברים. נ.ב. לא הצלחנו למצוא ספק בריטניה מבוססי נפט voltalef; שמן halocarbon 700 (Sigma) עשוי לשמש במקום.
  11. תחת מיקרוסקופ פלואורסצנטי לנתיחה לבחור כראוי מבוים בעוברים של הגנוטיפ הרצוי בעזרת זוג מלקחיים שענים (מספר 5) מן אגל הנפט. מלקחיים אלו צריכות להיות כפופות פנימה (איור 1) על מנת לאסוף את העוברים ללא ניקוב קרום vitelline שלהם. העברת עוברים שנבחרו אגל הנפט השנייה. חשוב כי אתה יכול לראות hemocytes ניאון על המיקרוסקופ לנתח על מנת להיות מסוגל לאסוף תמונות טובות על המיקרוסקופ confocal (איור 2). אנחנו בדרך כלל הר עוברים שלב 13/14 הגירה תמונה לרוחב קו האמצע של hemocytes על הבמה הגחון או 15 עובריםהתמונה תנועתיות של hemocytes הבאים פיזור על העובר.
  12. סטיק two coverslips (18x18mm, עובי 1) לחלק התחתון של צלחת Petriperm / Lumox (Sarstedt), באמצעות 2 טיפות קטנות של שמן voltalef, ומשאיר כ 1cm ביניהם (איור 3); אלה ישמשו כדי לתמוך coverslip הניח על העוברים, כדי לא לרסק אותם. מנות Petriperm (בקוטר 50mm) מכילים הידרופובי, גז קרום חדיר. אנו מוצאים כי הכלים הופכים קלים יותר לשימוש פעם הם היו בשימוש מספר פעמים (צלחות יכולים להימחק עם אתנול 70% ולעשות בהם שימוש חוזר).
  13. תחת brightfield על המיקרוסקופ לנתיחה, להרים עוברים שנבחרו אחד אחד עם מלקחיים כפוף קו אותם בצד הגחון מעלה במקביל לקצה coverslips (איור 3). אפשר ליישר עד 15 העוברים בדרך זו, תלוי במיומנות שלך ואת הסבלנות. חשוב לתפעל את העוברים בעדינות כמו גם עוברים צלחת קרום Petriperm שבירים וניתן מקרע בקלות.
  14. לאחר העוברים מיושרים להוסיף טיפה קטנה של שמן ולתת לו להתפשט כדי ליצור שכבה אחידה בין שתי coverslips. אחרי הנפט התפשט (זה עשוי לקחת כמה דקות) לבדוק כי העוברים עדיין בצד הגחון למעלה. אם עוברים יש התגלגל קצת, למקם אותם שוב עם מלקחיים.
  15. לבסוף, בעזרת פינצטה (מספר 3) במקום coverslip (18x18mm, עובי 1) על העוברים, הנשענת על שני coverslips דבק בעבר. דבק זה coverslip כדי coverslip תומך באמצעות לק (איור 3).
  16. קח את המנה Petriperm עם עוברי רכוב על המיקרוסקופ confocal או רחב שדה הר צלחת Petriperm על הבמה באמצעות מתאם מתאים. או מיקרוסקופ זקוף או הפוך יכול לשמש, עם עדשה אובייקטיבי באמצעות התמקדות coverslip (בניגוד דרך הממברנה).

נציג התוצאה:

פרוטוקול זה מתאר כיצד הר עוברים תסיסנית הדמיה חיה של hemocytes בצד הגחוני של העובר. אם נעשה בצורה נכונה יהיה קל לייצר או תמונות סטילס או סרטים של hemocytes. הקובע העיקרי הוא מיקרוסקופ המשמש התמונה hemocytes (בעדשה מסוימת אובייקטיבית), אך טבעו של התמונות רכשה גם תלוי בשלב של פיתוח, הטמפרטורה העוברים גדלו ב וקווי Gal4 ו כטב"מ בשימוש.

רמות גבוהות יותר של ביטוי חלבון פלואורסצנטי יאפשר hemocytes להיות צילמו ביתר קלות, ולכן חשוב להיות מסוגל לראות hemocytes כאשר העוברים נמצאים בשלב של 2.11 פרוטוקול (איור 2 מכיל דוגמאות hemocytes ברור בתוך עוברי, נלקח עם מצלמה מצויד מיקרוסקופ דיסקציה). מספר גדל של Gal4 לכן ובונה כטב"מ לאפשר יותר אות לרעש יחס. יתר על כן זה מפחית את הצורך בעוצמות לייזר גבוהה או שעות חשיפה מוגברת כאשר הדמיה, אשר בתורו מאפשר התנהגות hemocyte להיות במעקב במשך תקופות זמן ארוכות יותר.

רמות גבוהות מאוד של ביטוי ה-GFP יופיעו הפרטים הקטנים של מורפולוגיה hemocyte, במיוחד lamellae סדין דק דמוי המקיפים את גוף תא עגול (איור 4A-B). אזורים חוזר למעט ה-GFP מייצגים phagosomes (איור 4A-C). Finger כמו filopodia ניתן גם לראות העולה מתוך lamellae (איור 4 ב). שני הנהגים Gal4 להישאר מספיק כדי לראות את התהליכים האלה (איור 4C), במיוחד אם אחד או יותר הוא SRP-Gal4 (ראה דיון), אולם מהירויות סריקה איטית יותר או כוח רב יותר על לייזר מיקרוסקופ confocal ייתכן שתידרש. כמו ירידה ברמות הביטוי הוא הופך להיות קשה יותר לדימוי של בליטות hemocytes, בכל זאת עדיין אפשר לעקוב אחר נדידת hemocytes בתנאים אלה כמו גוף התא נשאר ברור גם כאשר בליטות ברורים פחות (איור 4D).

ב בשלבים המוקדמים של הפיתוח (עד שלב 13) hemocytes להעביר במגע קרוב אחד לשני וזה לעתים קרובות קשה להבחין בין תאים בודדים. בסוף שלב 13 hemocytes יצרו שורה אחת למטה קו האמצע הגחון (איור 5A), ואז, נהיה יותר ניעתי, נודדים רוחבית את הקצוות של חוט העצב הגחון (איור 5 ב). Cytoskeleton אקטין בתוך בליטות הדינמי של hemocytes ניתן לצפות ישירות דרך הביטוי של GMA (איור 5c) או דובדבן moesin.

הרכבה את העוברים בדרך זו מאפשרת חילוף הגזים ומונע התייבשות עוברים להישאר הדמיה הבאים קיימא. אם העובר ניזוק במהלך הרכבה הוא בדרך כלל כמובן מאליו את התוכן העובר ידלפו דרך הממברנה שלה vitelline. אם העובר מתחיל להתייבש ואז זה יכול לעיתים קרובות נצפו על ידי דפורמציות בקרום vitelline. מדי פעם עובר תגלגל במהלך סרט timelapse, אולם זה רק נוטה להיות בעייתית עבור סרטים זמנים ארוכים יותר. Lastly, הרכבה עוברים בבת אחת בניסויים נותן את הסיכוי הטוב ביותר להשגת עובר בכיוון המושלם עבור הניסוי שלהם.

איור 1
באיור 1. מלקחיים מניפולציה של עוברים dechorionated.
טיפים של שענים מלקחיים (מספר גודל 5) צריך להיות כפוף פנימה על מנת אופנה כלי לגרוף את העוברים כפי שמוצג כאן. המשטח החיצוני של האזור כפוף שימושית גם כדי לתפעל עוברים כאשר מיצוב על הממברנה Petriperm כמו ברשותם שום קצוות חדים שיכול לנקב את העובר.

איור 2
איור 2. נציג תמונות של עוברים שיניבו תוצאות טובות הדמיה לחיות.
תמונות של עוברים dechorionated בשמן voltalef (בשלב 2.11 לפרוטוקול) לקחה על מיקרוסקופ פלואורסצנטי לנתח. צפיות הרוחב של שלב 13 (א) ו שלב 15 (ב) SRP-Gal4, כטב"מ-GFP, crq-Gal4, כטב"מ-GFP עוברים. תצוגה רוחבית של שלב 15-SRP Gal4, כטב"מ-GFP / +; crq-Gal4, העובר uas-GFP/uas-N17Rac (C) שבו hemocytes לא הצליחו להעביר את הראש, מה הוכחת העוברים נראים כאשר hemocytes לא ברור לאורך נתיבי הנדידה שלהם. תצוגה רוחבית של שלב 17-SRP Gal4, כטב"מ-GFP, העובר כטב"מ-GFP crq-Gal4, מראה את מבנה מפותל של המעי בשלב זה של התפתחות (ד); את התחלתה של התכווצות שרירים מונע הדמיה של עוברים לחיות מעבר לכך השלב של הפיתוח. צפיות הגחון של שלב 13 (E) שלב 14 (F) SRP-Gal4, כטב"מ אדום עוברים העוקץ מראה פיזור hemocytes עם גרעינים שכותרתו fluorescently. תצפית של hemocytes ידי הקרינה בשלב 2.11 של הפרוטוקול היא תנאי הכרחי כדי להשיג תמונות מעולה; הקדמי נמצאת מימין עבור כל התמונות.

איור 3
איור 3. הרכבה של עוברים על צלחת Petriperm / Lumox.
שני coverslips 18x18mm (עובי 1) תקועים מול התחתון של המנה Petriperm באמצעות טיפה קטנה של שמן, המופרדים על 1cm כמוצג. עוברים מסודרים ואז למעלה בצד הגחון עם מקבילים ארוך (קדמית, אחורית) שלהם ציר את הקצוות של coverslips מכוסה טיפה קטנה של שמן. ברגע הנפט התפשט כדי למלא את הפער בין שתי coverslips coverslip השלישי (עובי 18x18mm 1) ממוקם בעדינות על גבי שמן מכוסה עוברים באמצעות שני coverslips דבק בעבר כגשר למנוע עוברים מלהיות מעוכה. Coverslip זה מודבק אז אל שני גשרים coverslip באמצעות שתי טיפות קטנות של לק. לאחר ההגדרה, העוברים ניתן הדמיה על מיקרוסקופ זקוף או הפוך עם עדשה המטרה התמקדות למטה דרך coverslip (בניגוד דרך הממברנה Petriperm).

איור 4
איור 4. תוצאות נציגת הדמיה חיה של ה-GFP hemocytes שכותרתו.
Z-תחזיות hemocytes בצד הגחוני של שלב 14-SRP Gal4, כטב"מ-GFP, crq-Gal4, כטב"מ-GFP העובר (AB). (A) היא התמונה בהגדלה נמוכה כגון להשתמש כדי לפקח על העברות התפתחותי hemocyte בסרטים timelapse. (ב) הוא עדיין גבוה הגדלה של קו האמצע hemocytes על הגחון, מראה הפרטים הקטנים של המורפולוגיה שלהם. (ג) היא פרוסה אחת של 1 מ 'hemocytes על קו האמצע הגחון בשלב 14-SRP Gal4, כטב"מ-GFP / +; crq-Gal4, כטב"מ-GFP / + העובר, חושף כי עותק מספרי נמוך יותר של נהגים Gal4 כטב"מ בונה הם גם מספיק כדי להפיק תמונות טובות. (ד) מציג הקרנה-z של hemocytes ב עובר שלב 14 crq-Gal4 כטב"מ-GFP,. כאן בליטות hemocyte ברורים פחות בשל הביטוי התחתון של ה-GFP, אבל זה עדיין אפשרי לעשות סרטים מסלול הגירה hemocyte עם השילוב הזה של הנהג Gal4 ו כטב"מ לבנות. תמונות צולמו על מיקרוסקופ הלייקה LSM510 confocal; הקדמי הוא מעלה את כל התמונות, את טבעות בשולי תמונות נגרמות על ידי autofluorescence קרום vitelline.

איור 5
איור 5. תוצאות נציגת הדמיה חיה של hemocytes GMA להביע.
Z-תחזיות hemocytes על קו האמצע הגחון של שלב 13 (א) ו שלב 14 (ב) SRP-Gal4, כטב"מ-GMA עוברים, שנלקחו סרטים timelapse להראות הגירות ההתפתחותי של hemocytes. מידע מפורט על אקטין הדינמיקה ניתן להשיג על ידי הדמיה בהגדלה גבוהה יותר של hemocytes GMA להביע (C). GMA מורכב GFP התמזגו תחום אקטין מחייב של סיבי אקטין moesin ותוויות. Anterior היא מעלה את כל התמונות, התמונות צולמו על מיקרוסקופ confocal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

האלמנטים החשובים ביותר של הליך זה הם מבחר של עוברים בריאים עם hemocytes שכותרתו ברורה לעלות אותם בזהירות מבלי לפגוע בהם. פעם הם עוברים בשמן halocarbon הם עמידים בפני התייבשות רכוב פעם ניתן הדמיה במשך כמה שעות. בידיים שלנו אנחנו hemocytes תמונה במשך שלוש שעות, עם התייבשות זניח של העובר או ברור צילום נזק, לקיחת Z-ערימה של תמונות כל שלוש דקות על מיקרוסקופ Zeiss LSM510 confocal שלנו עם מטרה 40X יכול. מאז hemocytes הם דינמיים מאוד יש תחלופה בין רזולוציה במרחב ובזמן, עשויים: אם תמונה ברזולוציה גבוהה מאוד הוא נזקק hemocyte ומבנים בתוך זה עשוי לעבור במהלך הסריקה. הפרטים המדויקים של כמה תמונות נאספים לאחר מכן ייקבע על ידי שאלות ניסיוניות להתייחס.

אנו משתמשים בדרך כלל כטב"מ-GFP או כטב"מ-GMA 3 עד hemocytes תווית; כטב"מ-GMA שימושי במיוחד מאז, בנוסף hemocytes לציון, הוא מספק לקריאה מתוך נימה אקטין דינמיקה. אחרים בונה כטב"מ ניתן להשתמש כדי לחקור התנהגות hemocyte: למשל כטב"מ, דובדבן בונה 9 ניתן לנצל כמו fluorophores חלופיים או כטב"מ-tau-GFP 10 יכול לשמש כדי להמחיש את microtubules בתוך hemocyte. בונה כטב"מ עם תווית הגרעין עשוי להיות בעל ערך במיוחד עבור מעקב אוטומטי של תנועות hemocyte (איור 2E-F). שני צבעים הדמיה ניתן גם (למשל אפשר תווית הן אקטין cytoskeletons microtubule באמצעות כטב"מ, דובדבן moesin כטב"מ ו-tau-GFP, בהתאמה, תחת שליטה של נהג Gal4 hemocyte ספציפי). כאמור, הקובע מפתח הדמיה חיה של hemocytes הוא הנהג Gal4 מועסקים: כמו לגבי hemocyte ספציפי היזמים הנוכחית SRP-Gal4 2> crq-Gal4 11> pxn Gal4-4, רק עם SRP-Gal4 מספיק hemocytes התווית כאשר הטרוזיגוטיים, בעוד לפחות שני עותקים של crq-Gal4 או pxn-Gal4 יש צורך להתבונן hemocytes לחיות. הדמיה אופטימלית עם זאת SRP-Gal4 דורש homozygosity (או נוכחות של הנהג Gal4 החלופה).

עד hemocytes הבאים לחיות בדרך זו ניתן ללמוד פיזור ההתפתחות שלהם מהראש 8 ולבחון כיצד הם מתקשרים עם רמזים כי זה תהליך הדפוס, להפקיד מטריקס גופות לבלוע אפופטוטיים. Hemocytes מייצגים גם מערכת מעניינת שבה לחקור את המנגנון של נדידת תאים, על ידי בחינת ההגירה של hemocytes בעוברים כי חוסר מרכיבי cytoskeletons אקטין או microtubule אפשר להבין שלהם לתפקד vivo בצורה ברורה יותר (למשל Rho GTPases 4, 12). ניצול כטב"מ בונה לתייג cytoskeletons אלה עדיין מספק מידע מפורט יותר על ויסות שלהם.

יש לנו שונה בטכניקה זו כדי לחקור התנהגות hemocyte במגוון רחב של הקשרים כמו תגובותיהם wounds4 לייזר המושרה ואת הזריקה של חיידקים שכותרתו fluorescently 13. יתר על כן שיטה זו יכולה בקלות להיות מותאמים סוגי התמונות אחרים על ידי בחירת התא שונה Gal4 הנהגים. לדוגמה יש לנו צילמו בעבר סגר הגב באמצעות אפיתל Gal4 נהגי 14, 15. היישום של טכניקה זו על סוגי תאים אחרים היא מוגבלת על ידי כוחו של הנהג Gal4, את המיקום של התאים להיות צילמו בתוך העובר ואת סוג של מיקרוסקופ המשמש הדמיה; מיקרוסקופים multiphoton confocal לאפשר את המשתמש התנהגות התא תמונה עמוקה בתוך העובר (למשל, תא חיידק הנדידה transepithelial 16), בעוד מיקרוסקופים confocal קונבנציונלית אינם יכולים להגיע אלה המעמקים (זו הסיבה שאנחנו תמונה לאורך קו האמצע הגחון שם hemocytes הם שטחיים מאוד, לכודים בין כבל לפתח את העצב ואת האפידרמיס הגחון).

כוחו של פרוטוקול זה היא בכך שהוא מספק סביבה לשמור עוברים במצב בריא הדמיה לחיות. אמנם מידה של מיומנות ידנית נדרשת עמדת עוברים, היא טכניקה קלה אב במהירות נותן תוצאות לשחזור והוא יכול בקלות להיות שונה באמצעות שונות Gal4 נהגים בונה כטב"מ לחקור היבטים שונים של הביולוגיה hemocyte. בנוסף, הפרוטוקול אינו מוגבל hemocytes מאז השימוש Gal4 נהגים חלופיים מאפשרת את ההתנהגות של סוגי רקמות אחרות כדי להיות מנותח.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

פרוטוקול זה פותח דרך העבודה שלנו בתוך בשיתוף עם מעבדות של פול מרטין ואנטוניו חסינטו. אנו מודים מרכז במלאי Bloomington עבור שירות מעולה שלה ושל הקהילה תסיסנית להמשך לשתף קווי לעוף. BS ממומנת כרגע על ידי מענק לפרויקט BBSRC. WW ממומנת על ידי מלגה האמון Wellcome פיתוח קריירה.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Cell strainer BD Biosciences 352350 70μm pores
Halcarbon oil 700 Sigma-Aldrich H8898
Lumox/Petriperm dish Sarstedt Ltd 96077305

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118, 401-415 (1993).
  2. Bruckner, K. The PDGF/VEGF receptor controls blood cell survival in Drosophila. Dev Cell. 7, 73-84 (2004).
  3. Dutta, D., Bloor, J. W., Ruiz-Gomez, M., VijayRaghavan, K., Kiehart, D. P. Real-time imaging of morphogenetic movements in Drosophila using Gal4-UAS-driven expression of GFP fused to the actin-binding domain of moesin. Genesis. 34, 146-151 (2002).
  4. Stramer, B. Live imaging of wound inflammation in Drosophila embryos reveals key roles for small GTPases during in vivo cell migration. J Cell Biol. 168, 567-573 (2005).
  5. Wood, W., Jacinto, A. Drosophila melanogaster embryonic haemocytes: masters of multitasking. Nat Rev Mol Cell Biol. 8, 542-551 (2007).
  6. Halfon, M. S. New fluorescent protein reporters for use with the Drosophila Gal4 expression system and for vital detection of balancer chromosomes. Genesis. 34, 135-138 (2002).
  7. Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. Drosophila protocols. , Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor. NY. (2000).
  8. Tepass, U., Fessler, L. I., Aziz, A., Hartenstein, V. Embryonic origin of hemocytes and their relationship to cell death in Drosophila. Development. 120, 1829-1837 (1994).
  9. Millard, T. H., Martin, P. Dynamic analysis of filopodial interactions during the zippering phase of Drosophila dorsal closure. Development. 135, 621-626 (2008).
  10. Doerflinger, H., Benton, R., Shulman, J. M., St Johnston, D. The role of PAR-1 in regulating the polarised microtubule cytoskeleton in the Drosophila follicular epithelium. Development. 130, 3965-3975 (2003).
  11. Olofsson, B., Page, D. T. Condensation of the central nervous system in embryonic Drosophila is inhibited by blocking hemocyte migration or neural activity. Dev Biol. 279, 233-243 (2005).
  12. Paladi, M., Tepass, U. Function of Rho GTPases in embryonic blood cell migration in Drosophila. J Cell Sci. 117, 6313-6326 (2004).
  13. Vlisidou, I. Drosophila embryos as model systems for monitoring bacterial infection in real time. PLoS Pathog. 5, e1000518-e1000518 (2009).
  14. Jacinto, A. Dynamic actin-based epithelial adhesion and cell matching during Drosophila dorsal closure. Curr Biol. 10, 1420-1426 (2000).
  15. Wood, W., Jacinto, A. Imaging cell movement during dorsal closure in Drosophila embryos. Methods Mol Biol. 294, 203-210 (2005).
  16. Kunwar, P. S. Tre1 GPCR initiates germ cell transepithelial migration by regulating Drosophila melanogaster E-cadherin. J Cell Biol. 183, 157-168 (2008).

Tags

לביולוגיה התפתחותית גיליון 36 תסיסנית העובר hemocyte הגירה מיקרוסקופיה confocal אקטין microtubules מקרופאגים melanogaster זמן לשגות
הדמיה חיה של<em> תסיסנית melanogaster</em> Hemocyte נדידות עובריים
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Evans, I. R., Zanet, J., Wood, W.,More

Evans, I. R., Zanet, J., Wood, W., Stramer, B. M. Live Imaging Of Drosophila melanogaster Embryonic Hemocyte Migrations. J. Vis. Exp. (36), e1696, doi:10.3791/1696 (2010).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter