Summary
Пластиковые разделы сохранить истинный морфологии ткани в тонких срезов тканей, которые могут быть immunostained с люминесцентными вторичными антителами, что делает этот метод более полезным, чем парафин или замороженных срезов для многих типов тканей. Метод окрашивания, пластик вложение и секционирования показано в этом видео.
Protocol
Фиксация
- Передача целых зародышей или расчлененный эксплантов в MEMFA или 3,7% FA + PBS в небольшой пузырек сцинтилляционных стекла (Fisher кошка # 03-339-25B). Инкубируйте флакон на nutator при комнатной температуре, только в течение 2 часов, и не более того. Не оставляйте эмбриона в Англии более чем на 2 часа. Более инкубации в ФА сделает эмбриональной ткани труднее и в результате плохого проникновения антител в процессе обнаружения.
- Аспирируйте большинство из Англии и добавить фиксатором Дента до верхней части флакона (~ 4,5 мл). Аккуратно переверните флакон на несколько раз мыть эмбрионов в Дента, обмен с другим 4,5 мл свежего Дента, и инкубировать их в -20 º C в течение по крайней мере 48 часов. Ночь недостаточно. Этот шаг делает эмбрионов более проницаемой для антител. Эмбрионы могут храниться в таком состоянии в течение нескольких недель.
Иммунофлюоресценция
- Увлажняет образца. Выдержите его в серии градуированных метанола, а именно:
75% MeOH / H 2 O 10мин 50% метанола / PBS 10мин 25% метанола / PBS 10мин PBS 10мин PBS 10мин - Сделать 1,5% агарозном / PBS 60 мм пластин с пластиковой посуды. Налейте PBS на вершине агарозном после того, как становятся твердыми.
- Hemi-секционирования эмбрионов: Положите эмбрионов в 1,5% агарозном / PBS пластины. Захватите эмбриона с парой щипцов и разрезать его пополам через центр эмбриона использованием тонким лезвием бритвы. Выберите те, которые вы успешно разрезать пополам с прямой плоскостью резания.
- Передача пополам эмбрионов в стеклянный пузырек сцинтилляционных PBT. Обмен с 4,5 мл 20% козьего сыворотки + ПБТ. Инкубируйте при комнатной температуре в течение 2 часов на nutator (блокировка).
- Подготовка соответствующего разведения первичных антител в PBT. 0,5 мл этого в образцах не требуется. Например, я использовал 1 / 200 разведения кроликов анти-C-кадгерина паб для изучения субклеточных локализации С-кадгерина в 5 мм, пластиковые секции.
- Аспирируйте блокирующий раствор и добавляют 0,5 мл разбавленного первичного антитела. Положите флаконов в стоячий положение на держателе трубки пенополистирола. Инкубируйте течение ночи при 4 ° С на nutator.
- Удалить разбавленный первичного антитела (это разбавленный первичного антитела могут быть сохранены и повторно использованы в ближайшие 1-2 недели). Промыть 4,5 мл из PBT в 4 раза (40-60 минут) при комнатной температуре.
- Обмен с 0,5 мл 1 / 100 разбавление биотин-сопряженных вторичными антителами в PBT. Инкубируйте течение ночи при 4 ° С на nutator. Обложка флаконах с алюминиевой фольгой для защиты от света биотин.
- С этой точки зрения следует соблюдать осторожность для защиты образца от света, т. е. держать флаконах при некоторых крышкой или алюминиевой фольгой.
- Удалить биотин-вторичные антитела (это может быть также использован в ближайшие 1-2 недели). Промыть или 4,5 мл из PBT в 4 раза (40-60 минут) при комнатной температуре.
- Обмен с 0,5 мл 1 / 200 разбавление флуоресцентно меченных (FITC, штат Техас, красный и т.д.) стрептавидином в PBT. Инкубируйте течение ночи при 4 ° С на nutator.
- Удалить стрептавидином (это может быть повторно использованы, тоже). Промыть 4,5 мл из PBT 3 раза (15 - 30 минут) при комнатной температуре.
- Fix эмбрионов в 4,5 мл 3,7% FA + PBS в течение 30 минут при комнатной температуре.
- Промыть 4,5 мл ФСБ в два раза.
- Дегидрировать образца. Выдержите его в серии градуированных этанола, а именно:
30% этанола / H 2 O 10 мин 50% этанола / H 2 O 10 мин 75% этанола / H 2 O 10 мин 100% этанола 10 мин - Образца могут быть сохранены в 100% этанола при 4 ° С с крышкой для защиты от света.
Инфильтрация
- Сделать Technovit 7100 инфильтрации смеси. Я обычно берут 15 мл жидкости в базу 50 мл коническую пробирку, добавляют 150 мг отвердителя я и смешайте его покачиваясь на nutator течение 15 минут. Это проникновение смесь можно хранить при температуре 4 ° С на срок до одного месяца.
- Проникнуть образца с инфильтрацией смеси путем обмена с градуированной серии Technovit проникновения смеси / EtOH комбо, а именно:
- 50% Technovit / EtOH - 1 час
- 100% Technovit - 1 час
- 100% Technovit - ночь
- 50% Technovit / EtOH - 1 час
- Specimeя может быть сохранен в 100% проникновения смеси на срок до одного месяца при 4 ° C. Положите крышку на образцы, чтобы защитить их от света.
Вложения
- Сделать Technovit 7100 вложение смесь: возьмите 0.75ml от проникновения смеси в 1,5 мл трубки и добавить 50 мл отвердителя II. Смешайте это путем обращения трубки в несколько раз.
- Использование пластиковой пипетки передачу, взять один экземпляр проникли ночью в 0,5 мл тонкие стенки трубы ПЦР. Удалите большинство супернатант.
- Добавить 0,25 мл вложения смесь, сделанную в шаге # 1 настоящего параграфа, "Погружение", к образцу. Восток пополам эмбриона, чтобы сделать вскрытие плоскости, стоящих перед нижней части трубки, осторожно подталкивать с тупым наконечником вскрытия иглой (деревянной ручкой рассечение иглы).
- Закрыть крышкой и инкубировать трубка в темном месте в течение примерно четырех часов, чтобы позволить пластиковых полимеризации.
- Сделать Technovit 3040 перемешать. Принимать по 1 грамм порошка для взвешивания блюдо, и добавьте 0,5 мл жидкости. Сразу же, смешать порошок и жидкость использованием bluetip. Залить сверху закаленной spacimen. Этот желтый Technovit 3040 позволит предотвратить весь пластиковый блок из выходящих из трубы.
Секционирование
- Протрите Histoknife H с ксилолом (EtOH часто не достаточно хорошо) и установить его на свой микротоме. Угол лезвия примерно в 45 °. Протрите этапе площадь перед лезвие с ксилол, тоже, потому что чистота этой области имеет решающее значение для качества секционного ломтиками.
- Вырезать стороне трубки и кожуры кончик использованием картона ножом.
- Установить образец в держатель патрон микротоме.
- Прикрепить "пресс-к-печать" кремний изолятор на предметное стекло, чтобы сделать монтаж камеры по разделу ломтиками. Плотно прижмите изолятор, чтобы скользить по чистой настольные и посмотреть с другой стороны, чтобы убедиться, что изолятор полностью прилагается без каких-либо воздушных пузырьков. Залить чистой и теплой дН 2 O (~ 40 ° C) с бассейном на слайд с помощью пипетки Пастера до уровня, на котором видно, что поверхность воды становится плоским, а не вогнутые или выпуклые формы.
- Начните делать разделе ломтиками. Для иммунофлюоресценции исследования, я делаю 5 ломтиков мм разделе. Ибо в месте образцы гибридизации, толщина ломтиков можно регулировать в диапазоне от ~ 3 - 8 мм, в зависимости от целей и интенсивности сигналов.
- Carry разделе ломтиками со сцены перед лезвием к монтажной камере с водой, используя маленькую кисть. Держите кисть с кусочком поверх воды в бассейне и падение срез вниз к воде, сбивая его с тупым кончиком иглы рассечение. Часть будет расширяться в круглую форму, как только она попадает на поверхность воды.
- Когда большинство площадь водной поверхности монтажа камера заполняется раздел ломтиков, поглощать почти половина из воды с помощью пипетки Пастера. Инкубировать слайд на слайде теплее ночь, чтобы сделать выборку полностью высохнет.
- Counter-пятно с 1 мл DAPI (0.1mg/ml в ТЕ) в течение пяти минут. Аспирируйте DAPI и сухой образец.
- Удалите изолятор силиконовой резины от слайд. Теперь фотографии можно взять пробы. Магазин образца при 4 ° С, защищенном от света месте.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Materials
Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
PBS | Buffer | 1 L recipe: 8.0 g NaCl 0.2 g KCl 2.68 g Na2HPO4·7H2O 0.2 g KH2PO4The pH is supposed to be 7.4. Adjust the volume to 1 L. Autoclave. | ||
PBT | Buffer | Add 0.5 mLl of Triton X-100 and 1.0 g of BSA (Molecular Biology grade, fraction V is good [>99%], but don’t use crude 97% Albumin) to 500ml of autoclaved PBS. Filtrate through 0.2 mm filter cup. Store it in 4ºC. | ||
·Dent’s fixative | Reagent | Mix 40 mL of methanol and 10 mL of DMSO. Keep it in –20°C. | ||
3.7% FA+PBS | Reagent | Mix 37% formaldehyde and PBS at 1:9 ratios. Make it fresh at each time and discard the left over. | ||
Biotinylated Anti-Mouse IgG (H+L), made in goat | Ab | Vector Laboratories | BA-9200 | |
Biotinylated Anti-Rabbit IgG (H+L), made in goat | Ab | Vector Laboratories | BA-1000 | |
IG’S HUADS BIOTIN GTXRBT | Ab | Invitrogen | ALI3409 | BioSource™ |
IgG (g), Goat Anti-Mouse | Ab | Invitrogen | M30115 | CALTAG™ |
Fluorescent streptavidin kit | Reagent | Vector Laboratories | SA-1200 | Contains streptavidin labeled with three different fluorophores (FITC, Texas Red and AMCA) suitable for this procedure. |
20% goat serum/PBT | Buffer | This will be used as a blocking solution. | ||
Small paintbrush | Tool | |||
Dull-tip dissection needle | Tool | |||
Kulzer Technovit 7100 GMA , 3040 | Reagent | 7100 GMA , 3040 | glycol methacrylate | |
Kulzer Tungsten Histoknife H | Tool | Energy Beam Sciences | H1310 | |
75% MeOH/H2O | Buffer | |||
50% MeOH/PBS | Buffer | |||
25% MeOH/PBS | Buffer | |||
30% EtOH/H22O | Buffer | |||
50% EtOH/H2O | Buffer | |||
75% EtOH/H2O | Buffer | |||
100% EtOH | Buffer | |||
Small glass scintillation vials | Tool | Fisher Scientific | 03-339-25B | |
0.5 mL Thin-wall PCR tubes | Tool | Molecular BioProducts | 3430 | |
Press-to-Seal Silicone Rubber Insulators | Tool | Grace Bio-Lab Inc. | JTR1L-2.5 | 32 mm L x 19 mm W, 2.5 mm D |
Thin razor blade | Tool | |||
1.5% Agarose in PBS | ||||
Primary antibody against your antigen or epitope tags: Make an appropriate dilution in PBT.Biotin-conjugated secondary antibody: various vendors sell biotin-conjugated antibodies. |