Overview
Cette vidéo décrit un test d’alimentation pour les mouches des fruits dans lequel les aliments colorés sont utilisés pour surveiller l’alimentation et l’effet que les composés ajoutés peuvent avoir sur l’activité alimentaire. Le protocole d’exemple teste les effets de plusieurs produits chimiques perturbateurs endocriniens (EDC).
Protocol
Ce protocole est un extrait de Bovier et coll.,Methods to Test Endocrine Disruption in Drosophila melanogaster, J. Vis. Exp. (2019).
1. Analyse d’alimentation
REMARQUE: Il est recommandé de vérifier si la présence de la SEE sélectionnée dans le milieu pourrait avoir une incidence sur l’alimentation des mouches.
- Mettez 15 jeunes mouches dans des flacons contenant du milieu de semoule de maïs (CM) complétés par différentes concentrations de l’EDC sélectionnée et un aliment à colorier. Laissez les mouches se nourrir des médias pendant 1 jour.
REMARQUE: Par exemple, utilisez le colorant rouge no 40 (1 mg/mL). - Mettez 15 jeunes mouches dans des flacons contenant cm complété par le solvant seul et un aliment à colorier pour le contrôle. Laissez les mouches se nourrir des médias pendant 1 jour.
- Anesthésier individuellement chaque groupe de mouches avec de l’éther.
- Transférer les mouches de chaque groupe dans un récipient en verre cylindrique (étherisateur) avec un entonnoir inséré dans l’extrémité ouverte, en inversant le flacon au-dessus de l’entonnoir et en tapant doucement les deux récipients ensemble pour faire tomber les mouches dans l’étherisateur.
REMARQUE: L’entonnoir les empêchera de sortir de l’étherisateur. - Renversez les mouches en appuyant doucement sur l’étherisateur sur une surface molle, comme un tapis de souris, et remplacez rapidement l’entonnoir par un bouchon de coton et de gaze trempé par l’éther.
- Attendez environ 1 min jusqu’à ce que les mouches tombent au fond et cessent de bouger.
REMARQUE: Ne dépassez pas le temps ou les mouches mourront.
- Transférer les mouches de chaque groupe dans un récipient en verre cylindrique (étherisateur) avec un entonnoir inséré dans l’extrémité ouverte, en inversant le flacon au-dessus de l’entonnoir et en tapant doucement les deux récipients ensemble pour faire tomber les mouches dans l’étherisateur.
- Placez les mouches immobilisées sous un microscope stéréo et comparez la coloration abdominale de chaque groupe de traitement par rapport au groupe témoin.
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Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
17α-Ethinylestradiol | Sigma | E4876-1G | |
Agar for Drosophila medium | BIOSIGMA | 789148 | |
Bisphenol A | Sigma | 239658-50G | |
Bisphenol AF | Sigma | 90477-100MG | |
Cornmeal | CA' BIANCA | ||
Diethyl ether | Sigma | ||
Drosophila Vials | BIOSIGMA | 789008 | 25 mm x 95 mm |
Drosophila Vials | BIOSIGMA | 789009 | 29 mm x 95 mm |
Drosophila Vials | Kaltek | 187 | 22 mm x 63 mm |
Ethanol | FLUKA | 2860 | |
Etherizer | Crafts | cylindrical glass container with a cotton plug | |
Hand blender Pimmy | Ariete | food processor | |
Instant Success yeast | ESKA | Powdered yeast | |
Red dye no. 40 | SIGMA | 16035 | |
Stereomicroscope with LED lights | Leica | S4E |