Summary
De kikker
Abstract
We hebben ontwikkeld in de amfibie Xenopus laevis een unieke niet-zoogdieren model om het vermogen van bepaalde heat shock eiwitten (HSP's) zoals gp96 om cross-presentatie van begeleid antigenen te vergemakkelijken en ontlokken aangeboren en adaptieve T-cel responsen. Xenopus huid afstoting van het transplantaat studie biedt een uitstekend platform om het vermogen van gp96 naar klassieke MHC klasse Ia (klasse Ia) beperkt T-cel reacties uitlokken te bestuderen. Daarnaast is de Xenopus model biedt ook een aantrekkelijk alternatief voor muizen voor het verkennen van de mogelijkheid van gp96 om reacties te genereren tegen tumoren die zijn down-gereguleerd hun klasse Ia moleculen zo te ontsnappen immuun surveillance. Onlangs hebben we een adoptieve overdracht van cel-test in Xenopus klonen met behulp van peritoneale leukocyten als antigeen presenterende cellen (APC's), en laten zien dat gp96 kan premier CD8 T-cel responsen in vivo tegen kleine histocompatibility huid antigenen als tegen de Xenopus thymus tumor 15 / 0 dat niet uitdrukken klasse Ia moleculen. We beschrijven hier de methodologie die betrokken zijn bij deze proeven, waaronder de elicitatie, pulseren en adoptieve overdracht van peritoneale leukocyten, evenals de huidtransplantatie en tumor transplantatie assays uit te voeren. Daarnaast zijn we ook het beschrijven van de oogst en de scheiding van perifeer bloed leukocyten gebruikt voor flowcytometrie en proliferatie assays die het mogelijk maken voor de verdere karakterisering van de effector bevolkingen die betrokken zijn bij de huid afwijzing en anti-tumor respons.
Protocol
1. Dieren
X. laevis x X. Gilli hybriden LG-6 en LG-15 isogenetic klonen een zijn van onze broedkolonie aan de Universiteit van Rochester (http://www.urmc.rochester.edu/smd/mbi/xenopus/index.htm). LG-6 en LG-15 delen dezelfde heterozygote MHC haplotype (a / c), maar verschillen op kleine histocompatibility (H) loci. Nakomelingen van deze klonen worden geproduceerd door gynogenesis, waarbij diploïde eieren door het vrouwtje worden geactiveerd door UV-bestraalde zaadcellen (geen DNA-bijdrage aan het nageslacht).
Het gebruik van handschoenen is facultatief. Sommige mensen liever niet dragen want het is moeilijker te hanteren van de kikkers (glad) en in feite lijkt te maken van de kikkers ongemakkelijk.
2. Zuivering van gp96 van 15 / 0 Tumor (spreekt Zowel de tumor en Klein-H-AGS)
Gp96 zuivering is eerder beschreven twee, drie. In het kort wordt gp96 gezuiverd door 50-70% ammoniumsulfaat fractionering, gevolgd door ConA-Sepharose en DEAE chromatografie. Ongeveer 20 tot 50 ug van eiwit kan verkregen worden per 1 mL van de tumor weefsel. Zuiverheid van het preparaat wordt bepaald door SDS-PAGE en sliver vlekken.
3. Elicitatie en Oogst van Peritoneale Leukocyten (PLS) uit Klein-H-Ag-ongelijksoortige LG-6 Kikkers
- Grow een 25 ml 's nachts E. Coli cultuur in een 50 ml conische buis bij 37 ° C met schudden.
- De volgende dag hitte doodt de bacteriën door het koken van het voor 1 uur.
- Centrifugeer de hitte gedood E. Coli gedurende 15 min bij 2000 rpm (1500 g) bij 4 ° C.
- Verwijder het supernatant en resuspendeer de bacteriële pellet in 1 / 10 e van de oorspronkelijke cultuur volume (2,5 ml) in APBS. Op dit punt is de bacteriecultuur is klaar voor gebruik en moet gebruikt worden binnen de 24 uur.
- Injecteren intraperitoneaal (ip) 200 (voor een 2 inch kikker) of 300 pi (voor een 3 inch kikker) van de warmte-gedode bacteriën de voorbereiding per kikker met behulp van een 25 gauge 5 / 8 naald.
- Drie dagen na de injectie PL's worden geoogst door intraperitoneale spoeling.
- Voor PL oogsten, volwassen kikkers worden verdoofd door onderdompeling in een 0,1% waterige oplossing van tricaïne methaan sulfonaat (TMS, MS-222) gebufferd met natriumbicarbonaat voor maximaal 5 minuten totdat alle beweging stopt (duur afhankelijk van de grootte en de leeftijd). Dieren wakker binnen 10-20 minuten na de behandeling.
- Desinfecteer de buik van de kikker met een kleine hoeveelheid van 70% ethanol.
- Injecteer 5 ml (voor een 2 inch kikker) of 10 ml (voor een 3 inch kikker) van steriele APBS voorverwarmde bij kamertemperatuur in de buikholte met behulp van een 18 gauge 1 ½ naald. Verwijder de naald en zachtjes masseren van de kikker een minuut om te verzekeren dat de geïnjecteerde buffer evenwicht houdt met de vloeistof in het lichaam holte.
- Gebruik een nieuwe 18 gauge 1 ½ naald zonder een spuit om de peritoneale vloeistof die uit de achterkant van de naald infuus in een schone 50 ml conische buis te verzamelen. Zorg ervoor dat u zoveel mogelijk van de oorspronkelijke geïnjecteerde volume op te halen als mogelijk. Wees voorzichtig om te voorkomen dat de bloedvaten in het centrale deel van de buikstreek.
- Zodra PL's worden geoogst zet de kikker in een bak met ondiep water tot hij wakker is op dat moment kan worden teruggeplaatst in zijn kooi.
4. Pulsing en adoptieve overdracht van Lg-6 Pls In Naive Lg-6 Ontvangers
- Een keer wassen van de PL met koud APBS en centrifugeer ze op 1000 rpm (750 g) gedurende 10 min bij 4 ° C.
- Verwijder het supernatant en resuspendeer de PL's in APBS.
- Puls van de PL's met gp96 bij een concentratie van 1 ug gp96 per 5 x 10 5 PL.
- Zodra de juiste hoeveelheid gp96 wordt toegevoegd aan de bijsluiters, meng ze door pipetteren en incubeer op ijs gedurende 1 uur.
- Ofwel Centrifugeer de cellen bij 1000 rpm gedurende 10 min bij 4 ° C of bij 14.000 rpm gedurende 1 minuut op een ongebonden gp96 te verwijderen.
- Was de PL's 3X met koud APBS om te zorgen dat er geen resterende gp96 links.
- Resuspendeer de gepulste PL bij een concentratie van 5 x 10 5 PL's per 300 pi.
- Adoptief overdracht PL's door ip injectie met 25 gauge 5 / 8 naald. Injecteer 300 pi van gepulste PL's (5 x 10 5 cellen) per dier.
- Kikkers moeten worden voorbereid ten minste 3 dagen voordat u verder gaat met de huid transplantaat of tumor uitdaging experimenten.
5. Skin Graft Assay
Skin afstoting van het transplantaat is een gevestigde assay in Xenopus 4, 5, 6. In Xenopus, een ontvanger verwerpt donorhuid weergave van een of twee MHC haplotype mismatches binnen 18-22 dagen bij 21-22 ° C. In tegenstelling, zijn huidtransplantaties tussen LG-6 en LG-15-klonen die alleen verschillen door kleine H-Ags langzamer afgewezen (meer dan 30 dagen). Echter, is deze afwijzing versneld bij ontvangers that zijn voorbereid tegen de donor kleine H-Ags hetzij door een eerdere huidtransplantatie of door immunisatie met gp96 gezuiverd van de donor. Geen afwijzing op alle treedt op wanneer de donor en de ontvanger zijn genetisch identiek zijn (bijvoorbeeld gekloonde of volledig ingeteeld dieren). Daarom is deze eenvoudige techniek is erg krachtig voor het karakteriseren van in vivo immuunrespons opgewekt door gp96.
- Verdoven donor kikker, zoals beschreven in 3.7.
Opmerking: Alleen een minimale voorzorgsmaatregelen moeten worden genomen, omdat Xenopus produceren krachtige anti-microbiële peptiden (bv. magainin) in de huid dat de noodzaak voor de totale aseptische procedures overbodig maakt. In feite zou de behandeling van de kikker met een ontsmettingsmiddel schadelijk voor de huid. Daarnaast, hebben Xenopus geen pathogenen die kan worden overgedragen op de mens. Daarom is het gebruik van handschoenen is optioneel. Echter, alle gebruikte dissectie-instrumenten moeten worden geautoclaveerd en alle oplossingen moeten steriel zijn. - Knippen en verwijderen van een klein (20 mm x 5 mm) stuk van de ventrale huid (buik huid die lijkt zilverachtige door de aanwezigheid van irridophore gepigmenteerde cellen) van een LG-15 donor kikker met een schaar.
- Plaats van de huid in een petrischaal met APBS en houd het op ijs. Manipuleren van de huidweefsel heel voorzichtig en vermijd het houdt hem in tussen de tang.
- Met behulp van een scheermes of een schaar individuele enten gesneden in 5 mm x 5 mm stukken. Houd de fragmenten in APBS op ijs.
- Op dit punt is de donor kikker wordt geplaatst in een bak met ondiep water tot hij wakker en dan is het geplaatst in water met antibiotica (Penstrep bij een concentratie van 5 mg / L). De kikker wordt bewaard in water met antibiotica gedurende twee dagen op welk punt is het weer in de normale water. De kleine wond op de plek waar de huid werd verwijderd hoeft niet te worden genaaid en geneest binnen een week.
- Verdoven van de ontvanger LG-6 kikker.
- Maak een kleine incisie aan de dorsale (rug) de huid van de ontvanger en plaats de 5 mm x 5 mm graft onder de huid met de zilveren kant naar boven. Wees voorzichtig om geen grote luchtbellen te introduceren onder de huid, omdat die kunnen leiden tot verplaatsing of zelfs verlies van het transplantaat.
- Zorg ervoor dat u let op de schaar en pincet markeringen op de enten omdat die niet wordt beschouwd als afstoting van het transplantaat na de puntentelling begint.
- 24 uur later een deel van de bovenliggende gastheer huid moet worden verwijderd uit het transplantaat.
- Verdoven van de ontvanger LG-6 kikker. Behandel het dier, zoals beschreven in 5.1.
- Met behulp van geautoclaveerd schaar knippen uit een raam om de graft, zodat het implantaat kan worden vrij gevisualiseerd. Wees voorzichtig niet aan de donor huid aan te raken of om het bloeden te induceren. Laat de kikker terug, zoals beschreven in 5.5.
- Start het scoren van de transplantaat meteen door het nemen van een schets. Skin afstoting van het transplantaat wordt bepaald door het percentage van de vernietiging van de irridophores op de geënte huid.
- De transplantaten moeten worden gecontroleerd om de 2-3 dagen, maar de dieren hoeven niet te worden verdoofd voor. Te visualiseren de enten, de kikkers moeten worden geplaatst in een petrischaal onder een dissectie microscoop.
6. Whole-mount Immunohistology van getransplanteerde huid
Kikker hele-mount immunohistology is eerder beschreven 6. Kortom, de kikker wordt verdoofd en onder de microscoop op een steriele papieren handdoek pre-nat met kikker water (het werkgebied is ook aseptisch bereide). De getransplanteerde huid wordt vervolgens geoogst, samen met een kleine hoeveelheid van de omliggende gastheer huid en het is gekleurd met antilichamen eveneens naar cel kleuring voor flowcytometrie-analyse 6. Geautoclaveerd instrumenten en steriele buffers moeten worden gebruikt. Na het kleuren van de huid wordt geplaatst op een objectglaasje en voorzichtig geperst met een dekglas. Op dit punt is de huid kan worden gevisualiseerd met behulp van een fluorescentiemicroscoop voor verschillende celpopulaties die zijn geïnfiltreerd in de graft. Na de procedure de kikker wordt gehouden in water met antibiotica, zoals beschreven in paragraaf 5.5. en keerde terug in het normale water. De kleine wond links waar de huid werd verwijderd geneest binnen een week.
7. Karakterisering van bloedleukocyten
- Voor het verwijderen van bloed uit de kikker, moet men "glazen naalden" voor te bereiden door te trekken steriele pasteurpipetten boven vlam. De fijne uiteinde van de pipet wordt aangescherpt onder de stereomicroscoop. De pipet wordt vervolgens aangesloten op een aspiratie plastic buis.
Alle instrumenten, zoals de tang en schaar moeten worden geautoclaveerd voor gebruik. - Ook voorbereiden ijskoude 10 ml APBS en heparine-oplossing door toevoeging van 50 eenheden heparine per 1 ml APBS. Houden oplossing op het ijs. Alle gebruikte oplossingen moeten steriel zijn.
- Verdoven kikker, zoals beschreven in 3.7, en volgt hetzelfde dier procedures voor de behandeling zoals beschreven in 5.1. .
- Snij de huid boven de achterste voet te ontmaskerende dorsale tarsus ader.
- Vul de Pasteur pipet met 1-2 ml APBS + heparine-oplossing.
- Plaats de "glazen naald" in de ader en beginnen met het verzamelen van het bloed door langzaam opzuigen met de mond. Het is belangrijk om APBS + heparine-oplossing hebben in de "glazen naald", aangezien dit zal voorkomen dat het bloed gaat klonteren en verstopping van de punt van de naald.
- 1 tot 2 ml bloed kan worden verkregen bij een gemiddelde grootte kikker.
- De kleine incisie op het been van de kikker hoeft niet te worden genaaid en de wond geneest binnen een week.
- Centrifugeer het bloed op 1000 rpm gedurende 10 min bij 4 ° C.
- Verwijder het supernatant en was de cellen 1x met 10 ml koud APBS.
- Breng 2 ml bloed (1-5 x 10 6 cellen) op 1 ml Ficoll Histopaque 1.077 (Sigma) voorverwarmde bij kamertemperatuur in om het bloed leukocyten te scheiden van de rode bloedcellen.
- Centrifugeer 20 min bij 1000 rpm bij kamertemperatuur zonder rem, en dan het verzamelen van de leukocyten band.
- Was de cellen met 2X APBS door centrifugeren bij 1400 rpm gedurende 10 min bij 4 ° C om de resterende Ficoll te verwijderen.
- Op dit punt zijn de cellen klaar om te worden gekleurd met antilichamen voor flowcytometrie-analyse, of te gebruiken voor in-vitro-cultuur assays worden.
8. Tumor Transplantatie Assay
- Ongeveer een week voordat het experiment dooi een nieuwe partij van 15 / 0 tumorcellen en zorgen ervoor dat de cellen beginnen te groeien goed. Kweekmedium wordt beknopt beschreven in het volgende hoofdstuk en in meer detail in 3.
- Vouw de 15 / 0 tumorcellen.
- Op de dag van het experiment, de telling van de cellen en bepaal celdood door trypan blauw uitsluiting. Celdood moet minder dan 5%. Was de cellen 1X in koude APBS, en centrifugeer bij 1000 tpm bij 4 ° C gedurende 10 minuten.
- Resuspendeer de cellen in tumor kweekmedium met een dichtheid van 5 x 10 5 15 / 0 cellen per 300 microliter.
- Transplantatie 5 x 10 5 cellen in 300 ul volume per kikker door subcutane injectie met een 25 gauge 5 / 8 naald aan de ene kant van de dorsale (rug) zijde van het dier.
- Groei van de tumor begint binnen 2-3 weken na de tumor uitdaging. De initiële tumor uiterlijk dient te worden opgemerkt en de tumor volume moet worden opgenomen om de 2-3 dagen. Tumorvolume (hoogte x lengte x breedte) is gemeten met behulp van remklauwen.
- Zodra de tumor groeit tot 3500 mm 3 of de kikker gaat op zoek lethargisch, moet ze worden gedood om ongemak te voorkomen.
9. Reagentia die nodig zijn:
- Amfibie fosfaat gebufferde fysiologische zoutoplossing (APBS): 6,6 g / L NaCl, 1,15 g / L Na 2 HPO 4, 0,2 g / L KH 2 PO. pH tot 7,5 met behulp van 10N NaOH en filter gesteriliseerd door middel van 0,2 um filter.
- Tricaïne methaan sulfonaat (TMS, MS-222) (Crescent Research Chemicals CAS # 886-86-2).
- Natriumbicarbonaat (Fisher Scientific S-233-500).
- Histopaque-1077 (Sigma-Aldrich 10771-100 ml)
- Heparine Natrium Zout (Sigma-Aldrich H3149-50KU)
- Voedingsbodem voor Xenopus 15 / 0 tumoren [zie 3 voor meer details]: 1 L van Iscove DMEM basaal medium (Invitrogen Gibco-11965) met 10 ml insuline, 10 ml niet-essentiële aminozuren, 10 ml penicilline-streptomycine; 10 pg / mL van kanamycine, 3 ml primatone (Sheffield Products Division), 1 ml van β2-mercaptoethanol, en 3,02 g NaHCO 3 in water (pH 7,0). Dit medium wordt verdund tot amfibie osmolariteit door de toevoeging van 30% dubbel gedestilleerd water, en aangevuld met 5% foetaal runderserum, 20% superantant van een Xenopus nier cellijn A6, en 0,25% van de normale Xenopus serum.
10. Representatieve resultaten
Figuur 1. Stereomicroscopic analyse van de huid afstoting van het transplantaat 12 dagen na de transplantatie. LG-6 gekloonde kikker kreeg een huidtransplantatie van beide (A) een MHC-identieke LG-6 (laat geen afwijzing) of (B) een MHC-ongelijksoortige outbred donor (80% afwijzing). Pijlen toont zilveren iridophore gepigmenteerde cellen markering gezonde (niet-afgewezen) geënt weefsel. (*) Mark van de tang niet te wijten aan afwijzing.
Figuur 2. Gp96 vergemakkelijkt kruis-presentatie van tumor antigenen in Xenopus. LG-15 PL's (5 x 10 5) werden gepulseerd gedurende 1 uur op ijs, ofwel met APBS (negatieve controle), 1 ug recombinant gp96 gezuiverd van een E. Coli cultuur, of 1 of 0,5 ug van gp96 gezuiverd van 15 / 0 tumorweefsel. Na 3 wasbeurten, werden de cellen adoptief overgebracht in LG-15 volwassen ontvangers (1 x 10 6 / persoon). Drie dagen later, wonen 15 / 0 tumorcellen (5 x 10 5) werdengetransplanteerde door sc injectie. Elke curve geeft de kinetiek van tumorgroei in een kikker. Dagen na de uitdaging bij tumoren verscheen voor het eerst werden gecontroleerd, en de grootte van de tumor werd periodiek bepaald met een schuifmaat (lengte x breedte x dikte).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
De amfibie Xenopus is een uniek veelzijdige niet-zoogdieren model om immuniteit te bestuderen. Het uitgebreide gebruik in de biomedische en immunologisch onderzoek heeft opgeleverd in vele belangrijke research tools, zoals de MHC gedefinieerd klonen LG-6 en LG-15, evenals verschillende cellijnen en monoklonale antilichamen. Met behulp van deze tools hebben we verschillende opgericht in vitro en in vivo testen om de mogelijkheid van heat shock eiwitten zoals gp96 aan krachtige Ag-specifieke anti-minor H-Ag en anti-tumor T-cel responsen 7 bemiddelen bestuderen. Dit model systeem laat ons toe om verder te onderzoeken van de immunologische eigenschappen gp96 tijdens de priming en effector-cel fasen.
Met betrekking tot de priming fase, de eerste studies van deze reacties gebruikt subcutane immunisatie met gezuiverd gp96 dat twee injecties van 10 ug gp96 vereist bij interval van twee weken eerder in vivo testen, zoals een huidtransplantatie of tumor transplantatie 2, 8. Ter vergelijking: de cross-presentatie methode die we hebben ontwikkeld, 7 en op dit moment gebruikt is handiger en efficiënter. De vele voordelen van deze strategie priming zijn tijd en de hoeveelheid eiwit die nodig is voor elk experiment. Bijvoorbeeld om een dier duurt 4 weken en 20 ug van gp96, terwijl bij PL priming we nodig hebben maar 3 dagen en 0,5 tot 1 ug van het eiwit immuniseren. Daarnaast is er minder variatie, omdat de priming bestaat uit slechts een injectie van de PL's gepulst met gp96. Dit is een belangrijke stap, want als de naald wordt uitgetrokken te snel tijdens een van de immunisatie door sc injectie, een aanzienlijk deel van de eiwitten kunnen verloren gaan dan het veroorzaken van een meer individuele variabiliteit. Belangrijk is dat deze cross-presentatie test biedt een manier om verder te onderzoeken de mechanismen van gp96-gemedieerde immuunrespons. Bijvoorbeeld, kunnen we ook het moduleren van de expressie van bepaalde moleculen zoals klasse Ia op het oppervlak van PL's voor pulseren met gp96 om hun rol te onderzoeken in gp96 gemedieerde immuunrespons en T-cel priming. Het proces van gp96 internalisatie kan ook worden bestudeerd door pre-incubatie PL's met antilichamen of concurrenten te interfereren met endocytische receptoren 7.
Met betrekking tot de effector fase, het Xenopus model is niet alleen geschikt om immuun cel effectoren karakteriseren in vitro door flowcytometrie, het doden en proliferatie assays 8, 9, maar biedt ook krachtig in vivo assays zoals kleine H-Ag-ongelijksoortige huidtransplantatie en tumor transplantatie assays. Beide testen zijn goed ingeburgerd in het Xenopus model maar er zijn een paar kritische stappen die moeten worden gevolgd. Bijvoorbeeld in de huid transplantatie assay speciale aandacht moet worden besteed bij het hanteren van het transplantaat in het bijzonder bij het knippen uit het raam van de bovenliggende gastheer huid. Het venster moet iets kleiner zijn dan het transplantaat zelf, zodat het transplantaat niet zal vallen. Bovendien, tijdens de tumor transplantatie is het belangrijk om eerst injecteren helft van de controle dieren, gevolgd door de experimentele enen en dan eindigen met de tweede helft van de controles kikkers. Dit zal ervoor zorgen dat de tumor levensvatbaar is tijdens de injectie proces en zal meer consistente gegevens. Het feit dat dit model systeem is gebaseerd op gekloonde dieren laat verder uit te breiden studies van effector-cellen gestimuleerd door HSP's met adoptieve overdracht cel 10.
Kortom, de methoden die hier benadrukken de kikker Xenopus als een uitzonderlijke niet-zoogdieren modelsysteem om HSP's, zoals gp96 rol in het immuunsysteem toezicht en immuunreacties te bestuderen.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Geen belangenconflicten verklaard.
Acknowledgments
De deskundige veeteelt verstrekt door Tina Martin en David Albright is erg gewaardeerd. Dit onderzoek werd ondersteund door subsidies T32-AI-07285 (HN), NIH R25 2GM064133 (TCL), 1R03-HD061671-01, R24-AI-059830-06 van de NIH.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagents needed: | |||
| Amphibian Phosphate Buffered Saline (APBS): | |||
| NaCl, 1.15 g/L | |||
| Na2HPO4, 0.2 g/L | |||
| KH2PO | |||
| 10N NaOH | |||
| Tricaine Methane Sulfonate (TMS, MS-222) | Crescent Research Chemicals | CAS#886-86-2 | |
| Sodium bicarbonate | Fisher Scientific | S-233-500 | |
| Histopaque-1077 | Sigma-Aldrich | 10771 | 100ml |
| Heparin Sodium Salt | Sigma-Aldrich | H3149-50KU | |
| Culture medium for Xenopus 15/0 tumors [see 3 for more details]: | |||
| Iscove DMEM basal medium | GIBCO, by Life Technologies | 11965 | |
| Insulin | |||
| Non-essential amino acids | |||
| Penicillin-streptomycin | |||
| Kanamycin | |||
| Primatone | Sheffield Products Division | ||
| β2-mercapt–thanol | |||
| NaHCO3 | |||
| 30% double distilled water | |||
| 5% featal bovine serum | |||
| 20% superantant from a Xenopus kidney cell line A6 | |||
| 0.25% of normal Xenopus serum | |||
| Materials and Equipment: | |||
| 50 and 15 ml conical centrifuge tubes (sterile) | |||
| 25 gauge 5/8 Precision Glide sterile needles | BD Biosciences | ||
| 18 gauge 1½ Precision Glide sterile needles | BD Biosciences | ||
| 1 ml Tuberculin Slip Tip Syringe sterile | BD Biosciences | ||
| 10 ml Slip Tip Syringe sterile | BD Biosciences | ||
| 1.5 ml MicroCentrifuge tubes (sterile) | |||
| 60 X 15 mm Polystyrene Petri Dishes sterile | Falcon BD | ||
| Razor blades | |||
| 25 X 75 mm X 1 mm Premium Microscope Slides | Fisher Scientific | ||
| 10 cm glass petri dishes | |||
| 9" Pasteur Pipetes Durex Borosilicate Glass Cotton Plugged Disposable | VWR international | ||
| Tygon tubing | |||
| Two # 5 Swiss Jeweler’s Forceps | Miltex Inc. | ||
| Micro Dissecting Spring Scissors McPherson-Vannas straight cutting edge 6 mm | Roboz Surgical Instruments Co. | ||
| Helios calipers | |||
| Dissecting microscope | |||
| High intensity illuminator | |||
| Hemacytometer | |||
| Un-bunsen burner | |||
| 37°C shaking incubator | |||
| Centrifuge |
References
- Kobel, H. R., Pasquier, D. u, L, Hyperdiploid species hybrids for gene mapping in Xenopus. Nature. 279, 157-158 (1979).
- Robert, J., Menoret, A., Basu, S., Cohen, N., Srivastava, P. R. Phylogenetic conservation of the molecular and immunological properties of the chaperones gp96 and hsp70. Eur J Immunol. 31, 186-195 (2001).
- Robert, J., Gantress, J., Cohen, N., Maniero, G. D. Xenopus as an experimental model for studying evolution of hsp--immune system interactions. Methods. 32, 42-53 (2004).
- Chardonnens, X., Pasquier, D. u, L, Induction of skin allograft tolerance during metamorphosis of the toad Xenopus laevis: a possible model for studying generation of self tolerance to histocompatibility antigens. Eur J Immunol. 3, 569-573 (1973).
- Du Pasquier, L., Bernard, C. C. Active suppression of the allogeneic histocompatibility reactions during the metamorphosis of the clawed toad Xenopus. Differentiation. 16, 1-7 (1980).
- Ramanayake, T., Simon, D. A., Frelinger, J. G., Lord, E. M., Robert, J. In vivo study of T-cell responses to skin alloantigens in Xenopus using a novel whole-mount immunohistology method. Transplantation. 83, 159-166 (2007).
- Robert, J., Ramanayake, T., Maniero, G. D., Morales, H., Chida, A. S., S, A. Phylogenetic conservation of glycoprotein 96 ability to interact with CD91 and facilitate antigen cross-presentation. J Immunol. 180, 3176-3182 (2008).
- Robert, J., Gantress, J., Rau, L., Bell, A., Cohen, N. Minor histocompatibility antigen-specific MHC-restricted CD8 T cell responses elicited by heat shock proteins. J Immunol. 168, 1697-1703 (2002).
- Morales, H., Robert, J. In vivo and in vitro techniques for comparative study of antiviral T-cell responses in the amphibian Xenopus. Biol Proced Online. 10, 1-8 (2008).
- Maniero, G. D., Robert, J. Phylogenetic conservation of gp96-mediated antigen-specific cellular immunity: new evidence from adoptive cell transfer in xenopus. Transplantation. 78, 1415-1421 (2004).
