Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove

Biology

التشخيص والتشريح والأنسجة عينة مختارة كوكتيل في الجرذان والفئران

doi: 10.3791/2966 Published: August 7, 2011

Summary

توضح هذه المقالة كيفية إجراء الفحص بعد الوفاة الأساسية للماوس أو الفئران ، وجمع من الأجهزة الأساسية ، فضلا عن أكثر من أنواع التحدي عينة من أجل التقييم النسيجي ، الميكروبيولوجية ، وPCR.

Abstract

هناك أنواع متعددة العينة التي يمكن جمعها من حيوان الموت الرحيم من أجل المساعدة في تشخيص أو اكتشاف العوامل المعدية في مستعمرة الحيوانات. ويمكن جمع الأنسجة السليمة لمعالجة النسيجي مزيد من التأثير على نوعية نتائج الاختبار. توضح هذه المقالة إجراء الفحص الإجمالي الأساسية بما في ذلك تحديد القلب والكبد والرئتين والكليتين ، والطحال ، وكذلك كيفية جمع تلك الأجهزة. وبالإضافة إلى ذلك أظهرت four التقنيات أكثر صعوبة جمع الأنسجة / العينة. ويمكن جمع نضح الرئة وتكون تحديا من نوع خاص مثل الأنسجة يحتاج إلى مبالغ بشكل صحيح مع مثبت من أجل داخل الأنسجة لإصلاح صحيح وتمكين نسيجية تقييم شامل. هذه المقالة يوضح خطوة خطوة تقنية لإزالة تضخم الرئة وذلك مع مثبت من أجل تحقيق التثبيت الأمثل للنسيج في غضون 24 ساعة. ويمكن جمع الدماغ يمكن أن يكون تحديا بالمثل كما الأنسجة الناعمة وتلف بسهولة. هذه المقالة يوضح خطوة خطوة تقنية لكشف وازالة الدماغ من الجمجمة بأقل ضرر للأنسجة. العقدة الليمفاوية المساريقي هو نوع العينة التي جيدة في الكشف عن العديد من العوامل المعدية والفيروسات المعوية المشتركة لفترات اطول في العقدة الليمفاوية مما هي أنها تسلط في البراز. هذه المقالة يوضح الإجراء خطوة خطوة لتحديد موقع وإزالة جو معقم و مطهر المساريقي العقدة الليمفاوية. أخيرا ، قد يتم تنفيذ وتحديد العوامل المعدية في الجهاز التنفسي عن طريق الثقافة البكتيرية أو اختبار PCR و / أو الأنف القصبي aspirates اتخذت السوائل في التشريح. يصف هذا الإجراء الحصول على العينة وإعداد نضح التنفسية الجرثومية للثقافة واختبار PCR.

Protocol

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

1. التحضير للتشريح

  1. أجزاء مهمة من أي فحص الجثة بعد الوفاة الإجمالي (الإجمالي التشريح) هي تاريخ من الحيوان ووصف النتائج.
  2. قد علم الامراض البيطرية قراءة الشرائح الهيستوباثولوجيا لم تر الحيوان ويعتمد عليك للحصول على المعلومات الخلفية.
  3. تصف بالضبط ما تراه قبل الموت ببطء الحيوان. على سبيل المثال ، "فئران ، واحد من خمسة في القفص ؛ C57BL/6N ؛ إمالة الرأس إلى اليمين" أو "الجرذ البني الذكور ؛ سلالة غير معروفة ؛ الحيوان الخدش ، وليس هناك غير مكتمل فقدان الشعر على ظهر بالقرب من الذيل و الرأس ".
  4. الاستخدام ، وصفي واضح ، واللغة الهدف. قد المعدلات مثل "خفيفة" ، "المعتدل" ، و "خطير" مفيدا إذا تم ترسيمها بوضوح الانقطاع بين المستويات. عموما تصف الأشياء من حيث الطعام أو الأجسام المنزلية غير مستحسن.
  5. قياس الوزن والحيوانات ، والنتائج ، أو الأجهزة غالبا ما تكون مفيدة. قد ألف "الطحال كبير" لكم يكون الطحال الطبيعي أن مراقب آخر. قائلا ان الطحال التدابير 3cm خ 1.5cm يقدم معلومات أكثر موضوعية.
  6. يمكن Photodocumentation لا تقدر بثمن.
  7. مراقبة جميع الصحة المهنية ذات الصلة ومعدات الحماية الشخصية اللازمة للعمل مع الحيوانات الحية والذبائح التي قد تكون معدية ، أو المواد الكيميائية مثل الفورمالين.

2. إجمالي موقع تشريح الجثة وفحص القلب والرئتين والكبد والكلى والطحال

  1. جمع الإمدادات اللازمة قبل القتل الرحيم للحيوان. الحد الأدنى ، ينبغي أن يشمل هذا التشريح لوحة أو ما شابه سطح العمل ، ملقط ، مقص ، والملصقات للحاويات ، ومثبت ، وبأية وسيلة أو أنابيب جمع / الكؤوس التي قد يحتمل أن تكون هناك حاجة.
  2. تقييم الوضع لفترة وجيزة ، والسلوك ، وحركة الحيوان. مراقبة وتسجيل أنماط التنفس (على سبيل المثال ، سريع ، الضحلة) ، وكذلك القدرة على المشي والإسعافية (على سبيل المثال ، يعرج ، تحلق ، والهزات).
  3. الموت ببطء والحيوانية وفقا للاجراءات المتبعة في المؤسسة ، والتمسك دائما على المبادئ التوجيهية اخر احصاء.
  4. تقييم حالة الحيوان الجسم لتشوهات الجلد ومعطف ، والهزال ، أو الجفاف. تقديم مذكرة من أي تلاعب الاصطناعي ، ويزرع ، أو تندب الجراحية.
  5. دراسة جميع الفوهات الخارجية (الأذنين والعينين والأنف والشرج ، وفتحات الأعضاء التناسلية ، وتجويف الفم). فمن المستحسن استخدام نطاق تشريح لتوثيق المراقبة.
  6. وضع الماوس الموت الرحيم أو الذبيحة الفئران في الاستلقاء على ظهري مجلس تشريح النظيفة أو ما شابه سطح العمل.
  7. باستخدام مقص ، شق الجلد على كامل طول ventrum من فتحة الشرج إلى الذقن ، والتي تعكس على الجلد وعمل قطع في جدار البطن ، ويعرض أحشاء البطن ، والغدد اللعابية والقلفة / البظر ، وعنق الرحم والغدد الليمفاوية الابطية. قطع القفص الصدري لكشف وفحص الأحشاء الصدرية من خلال جعل التخفيضات 2 أفقيا يصل كل جانب من القفص الصدري ، ثم واحدة عبر ، في الجزء العلوي من عظمة القص ، لفتح مساحة واسعة بما يكفي لفحص بدقة كل فصوص الرئة.
  8. دراسة مظهر الهيكل العضلية.
  9. تقييم جميع الأجهزة للشذوذ. العثور على وجه التحديد والتعرف على القلب والرئتين في التجويف الصدري. العثور على وجه التحديد والتعرف على الكبد والكلى والطحال في تجويف البطن. ملاحظة أي تغيرات اللون وحجم الخلافات ، والأجهزة المفقودة أو mislocated. علما اتساق السطوح ، أي نوع من الأنسجة الإضافية (مثل الجماهير) ، جيوب السوائل ، أو وجود السوائل في تجاويف البطن / الصدر.
  10. مراقبة الجهاز الهضمي للمحتويات ، أو عدم وجود المحتويات ، مع إيلاء اهتمام خاص للجدران سميكة ، الجماهير ، و / أو النزيف. شق الكلى (اليسار مقطع طولاني ، عبر الباب الأيمن ، في خط الوسط ، ولكن خارج الوسط) بشفرة حلاقة أو مشرط للتحقق حمة عن أي شذوذ. التحقق من مساريق لتضخم العقد اللمفاوية و / أو الجماهير.
  11. فحص الجهاز البولي التناسلي ، وتبحث عن انسداد ، جيوب السوائل ، أو نزف تشوهات أخرى.

3. بعد الوفاة جمع القلب والكبد والكلى والطحال ولالهيستوباثولوجيا

  1. جمع بحجم مناسب ، والحاويات المسمى (ق) مليئة كمية مناسبة من 10 ٪ محايدة مخزنة الفورمالين (NBF). ضبط كمية من NBF 10 ٪ من أجل الحصول على نسبة 20:01 لتثبيتي إلى الأنسجة.
  2. مكان الماوس أو الذبيحة الفئران في الاستلقاء على ظهري مجلس تشريح نظيفة أو ما شابه سطح العمل وتعريض الأنسجة من الاهتمام.
  3. إزالة أنسجة من جثة باستخدام ملقط ومقص.
  4. وينبغي أن الأنسجة قلص بشكل وثيق لازالة الدهون والنسيج الضام لا لزوم لها. وينبغي أن تكون نظيفة الأنسجة من الدم ، والاستخدام العادي (أو فيزيولوجي) المالحة) لشطف حسب الضرورة. أبدا استخدام الماء المقطر أو الصنبور لغسل الأنسجة.
  5. مكان النسيج في وعاء من NBF 10 ٪.

ق = "jove_title"> 4. بعد الوفاة جمع ونضح من أنسجة الرئة

  1. جمع بحجم مناسب ، والحاويات المسمى (ق) مليئة كمية مناسبة من NBF 10 ٪. ضبط كمية من NBF 10 ٪ من أجل الحصول على نسبة 20:01 لتثبيتي إلى الأنسجة.
  2. مكان الماوس أو الذبيحة الفئران في الاستلقاء على ظهري مجلس تشريح نظيفة أو ما شابه سطح العمل.
  3. فضح القصبة الهوائية والقلب والرئتين.
  4. باستخدام مقص وملقط إزالة الجلد والعضلات التي تغمر المناطق البطنية الصدرية وسرطان عنق الرحم.
  5. باستخدام مقص وملقط ، إزالة القفص الصدري تعريض القلب والرئتين عن طريق جعل التخفيضات 2 أفقيا يصل كل جانب من القفص الصدري ، ثم واحدة عبر بالقرب من الترقوة لفتح مساحة واسعة بما يكفي لفحص بدقة كل فصوص الرئة.
  6. قطع بعيدا في عضلات الرقبة وتمتد من القص والضلوع في الفك ، بما في ذلك تلك التي تغمر القصبة الهوائية.
  7. إدراج المقص تحت الحافة الأمامية من القفص الصدري وجعل التخفيضات 2 ، واحدة على كل جانب ، لإزالة جزء من العظم المغطي القصبة الهوائية.
  8. فهم القصبة الهوائية بالقرب من الفك مع ملقط وقطع تماما من خلال القصبة الهوائية مع مقص توضع فوق ملقط
  9. الساحبة بلطف صعودا القصبة الهوائية باستخدام الملقط ، القص اتصالات مع مقص نسيج بطني حتى مجموعة كاملة من الأنسجة الصدرية (القصبة الهوائية والرئتين والقلب ، ويسمى هذا في بعض الأحيان على "نتف") تمت إزالته من الجسم.
  10. وضع الرئتين شقة على سطح العمل.
  11. التعادل فضفاضة قطعة من مواد خياطة الجروح أو خيوط المطبخ حول القصبة الهوائية مع الحرص على عدم سحب ضيقة.
  12. حقنة ملء مع تثبيتي ، وإرفاق ذلك إبرة صغيرة بما يكفي للدخول في القصبة الهوائية. بالنسبة للفئران ، أو حقنة 1ml 3ml مع إبرة قياس 26 يعمل بشكل جيد. بالنسبة للفئران ، 5ml مع حقنة حقنة عيار 18 تعمل بشكل جيد.
  13. ادخال الإبرة في افتتاح القصبة الهوائية واستخدام ملقط لعقد القصبة الهوائية المحيطة الإبرة. تبدأ ببطء ملء الرئتين مع مثبت.
  14. ملء الرئتين حتى تضخمت بشكل كامل. لا تبالغ أو underinflate. كمية تثبيتي اللازمة لتضخيم الرئتين يختلف تماما حسب العمر والسلالة ، وصحة الحيوان.
    1. تم الكشف عن الإفراط في التضخم عن طريق السائل الرغوي وتتسرب من أنسجة الرئة.
    2. تم الكشف عن Underinflation بواسطة الرئتين وتظهر مسطحة بالكامل وليس في كل المجالات.
  15. إزالة الإبرة من القصبة الهوائية.
  16. تشديد مواد خياطة الجروح أو سلسلة المحيطة القصبة الهوائية لمنع قلس خارج من تثبيتي في الرئتين.
  17. مكان الرئتين الى تضخم مثبت به تقريبي 20:01 تثبيتي إلى نسبة الأنسجة.

5. بعد الوفاة جمع الدماغ

  1. جمع بحجم مناسب ، والحاويات المسمى (ق) مليئة كمية مناسبة من NBF 10 ٪. ضبط كمية من NBF 10 ٪ من أجل الحصول على نسبة 20:01 لتثبيتي إلى الأنسجة.
  2. مكان الماوس الموت الرحيم أو الذبيحة الفئران في بطني الاستلقاء على لوحة التشريح تنظيف سطح العمل أو ما شابه ذلك.
  3. باستخدام مقص وملقط ، إزالة الجلد والعضلات التي تغمر calvaria.
  4. باستخدام مقص إزالة الرأس تماما عن الذبيحة.
  5. باستخدام مقص صغير إدراج شفرة أسفل إلى ماغنوم الثقبة ، وفتح الجمجمة حيث يفتح في القناة الشوكية ، والحفاظ على مقص نصائح وأشار إلى أعلى ، تبدأ خفض ما يصل مباشرة ومن خلال خط الوسط للcalvaria.
  6. باستخدام الملقط ، تعكس مرة كل شطر من calvaria تعريض الدماغ.

    1. عندما يكون ذلك ممكنا ، ومكان الدماغ يتعرض تثبيتي في حين لا يزال في الجمجمة. هذا وسوف تسمح للشركة لتصبح أنسجة قبل إزالة من الجمجمة ، وإذا تطلب الأمر ذلك. يفضل كثير من الأطباء أن يتم قطع المقاطع من الدماغ في حين لا يزال في الجمجمة.

  7. قلب الجمجمة برفق بحيث الجاذبية ستساعد الأنسجة ليسقط من الجمجمة.
  8. باستخدام الملقط المنحني ، الشريحة بعناية ملقط على طول الحافة الخارجية للدماغ وتحت الدماغ بدءا من فصوص الشم ، تتحرك تحت المخ والمخيخ صوب. قرصة برفق مع أي ملقط النسيج الضام أو الأعصاب التي تمنع من الوقوع في الدماغ من الجمجمة.
  9. مكان تثبيتي في الدماغ باستخدام 20:01 تقريبي نسبة الأنسجة لتثبيتي.

6. تشريح الجثة مجموعة من الغدد الليمفاوية المساريقي (MLN)

  1. وينبغي أن يتم جمع الأنسجة للتحليل PCR باستخدام تقنية العقيم. الشعلة تعقيمها ، أو تعقيمها وينبغي أن تستخدم أدوات تعقيم مكافئ.
  2. تجميع أنابيب معقمة إيبندورف ومقص وملقط معقم.
  3. مكان الماوس الموت الرحيم أو الذبيحة الفئران في الاستلقاء على ظهري مجلس تشريح نظيفة أو ما شابه سطح العمل.
  4. باستخدام مقص وملقط معقم شق الجدار البطني البطن من منطقة الأعضاء التناسلية إلى قاعدة القفص الصدري، وإزالة كل من الجلد والعضلات وتعريض الامعاء.
  5. تقع MLN في تجويف البطن في الأنسجة المساريقي على طول القولون ، متاخم لالأعور.
  6. لتحديد موقع MLN ، حدد لأول مرة وهو الأعور ، فاصلة كبيرة على شكل مقطع من الأمعاء. ويمتد من القولون الأعور ، ويمكن في كثير من الأحيان يتم التعرف من خلال وجود حبيبات البراز. تقع MLN في مساريق على طول القولون الأعور المتاخمة ل. ويمكن التعرف على أنها كتلة صفراء صغيرة بيضاوية أو كروية من الأنسجة في أنسجة المساريقي الأبيض وغالبا ما تكون أكثر سمكا قليلا وأكثر حزما في الملمس من مساريق المحيطة والدهون. استخدام الكتب المدرسية اللازمة لتشريح التوجه.
  7. باستخدام تقنية العقيم وأدوات معقمة إزالة MLN ومكان في أنبوب إيبندورف المسمى مع تحديد المعلومات.

7. بعد الوفاة جمع نضح الجهاز التنفسي

  1. جمع الإمدادات اللازمة -- ماصة معقمة ، مقص وملقط معقم ، والحلول العقيمة إلى أن يتم مسح عن طريق الجهاز التنفسي ، وتشريح لوحة نظيفة أو ما شابه سطح العمل.
  2. وضع الماوس الموت الرحيم أو الذبيحة الفئران في الاستلقاء على ظهري مجلس تشريح.
  3. لنضح الشعب الهوائية في الفئران ، والوصول إلى الجهاز التنفسي عن طريق القصبة الهوائية. الأنف لنضح في وصول الفئران إما من خلال القصبة الهوائية أو عن طريق الصماخ الأنفي البلعومي. لaspirates الشعب الهوائية أو الأنف في الفئران ، والوصول إلى الجهاز التنفسي عن طريق الصماخ الأنفي البلعومي.
  4. إذا كانت هناك حاجة aspirates كلا الأنفية والشعب الهوائية ، نفذ نضح الشعب الهوائية الأولى. أداء الأنف نضح باستخدام ماصة معقمة جديدة.
  5. القصبة الهوائية وصول (الأسلوب المستحسن بالنسبة للفئران) :
    1. يعكس الجلد بعيدا عن منطقة عنق الرحم للكشف عن الأنسجة تحت الجلد.
    2. إزالة الغدد اللعابية والجهاز العضلي للكشف عن سرطان عنق الرحم والقصبة الهوائية.
    3. باستخدام أدوات معقمة ، شق القصبة الهوائية للسماح بالوصول إلى التجويف. المحافظة على عقامة طوال جمع (انتقل إلى الخطوة 7.7).
  6. البلعوم الوصول الصماخ (الأنف ونضح نضح الشعب الهوائية ، الأسلوب المستحسن بالنسبة للفئران نتيجة لحجم أصغر من القصبة الهوائية) :
    1. ويمكن تنفيذ هذا الإجراء لكل من نضح الأنفية والشعب الهوائية نضح.
    2. باستخدام اللهب أو تعقيمها تعقيم الأدوات وقطع الصدغي (الفك) المشتركة ، وتعكس الفك بعيدا عن الفك العلوي ، ويعرض الصماخ الأنفي البلعومي. المحافظة على عقامة طوال جمع (انتقل إلى الخطوة 7.7).
  7. تعادل ما يقرب من السوائل 1ml أخذ العينات الى ماصة معقمة. الفوسفات مخزنة هذا قد يكون ملحي عادي ، المالحة ، أو trypticase مرق الصويا. (انتقل إلى الخطوة 7.8 أو 7.9 ، اعتمادا على نضح كنت جمع).
  8. القصبي نضح :

    1. إدراج جو معقم و مطهر ماصة في تجويف القصبة الهوائية ، وجهت caudally ، وحقن السائل ببطء أخذ العينات في القصبات والرئة. سحب عينة من السائل في الرئتين والشعب الهوائية في ماصة وإزالة ماصة من القصبة الهوائية. ليس كل من السائل العودة إلى ماصة. كرر اذا كانت هناك حاجة أكثر مرونة للاختبار.

  9. الأنف نضح :
    1. إدراج في جو معقم و مطهر ماصة الصماخ الأنفي البلعومي (الفئران) أو تجويف القصبة الهوائية (الفئران) للمخرج cranially ، وحقن السائل ببطء أخذ العينات في تجويف الأنف.
    2. ضمان أن يتم التوصل إلى تجويف الأنف عن طريق الاتصال من الحنك مع طرف الأنف ماصة ، أو عن طريق الملاحظة من السوائل في تجويف القسري ، كما يرى تشكيل هلالات في فتحة الأنف (المنخر) أو السوائل وضوحا من خلال الحنك الشفوي شفافة. لا ينبغي أن ينظر إلى الخروج من السوائل عن طريق الفم. إذا كان الأمر كذلك ، وإعادة توجيه ماصة.
    3. سحب عينة من السائل في تجويف الأنف في ماصة وإزالة ماصة من الصماخ أو القصبة الهوائية.
  10. نقل جو معقم و مطهر عينة مناسبة لوسائل الإعلام أو وعاء للاختبار.

8. ممثل النتائج

الشكل 1
الشكل 1. البطن والصدر في أجهزة الماوس. هذه الأجهزة عادة ما تكون مرئية عندما افتتح أول حيوان (تم نقل أي من أجهزة للكشف عن الأجهزة الأخرى الموجودة أيضا في تجويف البطن). أ) الغدة الصعترية ، ب) القلب ، ج) والرئتين ، د) الحجاب الحاجز ، ه) الكبد ، و) الامعاء الصغيرة ، ز) الأعور ، ح) المثانة البولية.

الشكل 2
الشكل 2. البطن خلف الصفاق وأجهزتها في الماوس. إذا ما رفعت الامعاء والكبد وانتقلت (أو إزالة) ، وهذه الأجهزة كاليفورنيان أن ينظر إليها. كبد) (للمرجعية) ، ب) الأمعاء (للمرجعية) ، ج) المعدة ، د) الطحال ، ه) الكلى ، و) القولون النازل ، ز) الرحم.

الشكل 3
الشكل 3. الأجهزة التناسلية للذكور. يمكن لهذه أن تكون أكبر حجما أكبر في الذكور ، وناضجة جنسيا. حويصلات) المنوية والغدد التخثر ، ب) خصية المثانة البولية (توغلت في تجويف البطن من كيس الصفن من خلال حلقات الأربية ، والتي تبقى مفتوحة في الفئران والجرذان) ، ج) ، د) الغدد القلفة ، ه) البربخ.

الشكل 4
الشكل 4. الأعضاء التناسلية الأنثوية. أ) غير حامل الرحم (الفئران والجرذان ورحم ذو قرنين) ب) المبيض ، ودفن في لوحة المبيض الدهون ، ج) والمثانة البولية ، د) الغدد البظر (مشابه للغدد القلفة الذكور) .

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

or Start trial to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

قد جمع البيانات في نهاية الدراسة تتطلب الفحص بعد الوفاة من الحيوانات. يصف ما يراه جيدا وتذكر لدراسة جميع الأنسجة. وتهدف هذه الإجراءات بالدرجة الأولى إلى تحسين التشريح وجمع العينات لمراقبة الأمراض المعدية ، ولكن يتم تكييفها بسهولة أكثر لتحقيقات مركزة من حوادث أو مرض يشتبه في تفشي التي من شأنها أن تستخدم فقط ربما مجموعة فرعية من الإجراءات. العديد من الإجراءات هي أيضا ذات الصلة necropsies أكثر شيوعا في ختام إجراء الدراسات البحثية في اطار هذا التقييم الشامل المورفولوجية مقرونا جمع من الدراسة الخاصة عينات لتحليلها لاحقا.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب وجميع العاملين في المختبر نهر تشارلز القوارض التشخيص المختبر ، حيث يتم تقديم هذه الخدمات تجاريا.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Cutting board Thermo Fisher Scientific, Inc. Cat #36114
Small scissors Roboz Surgical Instruments Co. RS-5910, G204 23mm blades, 3.5" length, straight
Medium scissors Roboz Surgical Instruments Co. RS-6808, G207 5"
Large scissors Roboz Surgical Instruments Co. RS-6826, G65" 6.25"
Forceps-Curved Roboz Surgical Instruments Co. RS-8254 (M1/21004) 4.5", serrated, slight curve
Forceps-Microdissecting Roboz Surgical Instruments Co. RS-5238 Hudson-(EWALD)
Forceps-Tissue Forceps Roboz Surgical Instruments Co. RS--8160 Rat tooth
Flame sterilizer Oxford Labware Bacti-Cinerator #5889-001007
Scalpel Cancer Diagnostics, Inc. Finger Scalpels #60, Cat#FS0060
Pipettes VWR international Pasteur Pipet 5 3/4", Cat#14672-400
Autoclave bags Propper Manufacturing Company Sterilizer Bag Paper Pouches Cat#021002(3100923)E09110 For Pasteur pipettes
Pipette bulb VWR international Cat#56310-240
Eppendorf tubes Sarstedt Ltd SafeSeal microtube 2mL, Ref#72.695
Eppendorf tubes Argos 5mL microtube Cat#T20765-C
Syringe BD Biosciences 1ml-309602 3 ml-300910 5ml-309603 10mL Cat#309604 20mL Cat#309661
Needles BD Biosciences 26G-309625 18G-305195
Neutral buffered formalin VWR international 20L 10% NBF, Cat#16004-128
Saline Thermo Fisher Scientific, Inc. Buffered Blood Bank Saline, Cat#23-309-178
Trypticase soy broth BD Biosciences TSB: Dehydrated, Cat#211825
Phosphate buffered saline Sigma-Aldrich HA Buffer, Cat#P3813-10PAK
Formalin cups VWR international 4oz Cat#36318-852 8oz Cat#36318-860 16oz Cat#36318-858
Large formalin cups OakRidge Products 32oz container Cat#0432-1100
Extra large formalin cup VWR international HDPE Multipurpose 160oz container Cat#89038-282
Suture material Henry Schein Braided silk surgical suture, Ref#100-5000, M766750 For mouse lung inflation
Twine Staples Cat#QUA-46173 For rat lung inflation

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. AVMA. AVMA Guidelines on Euthanasia. (2007).
  2. Feldman, D. B., Seely, J. C. Necropsy Guide: Rodents and the rabbit. CRC Press. (1988).
  3. King, J. M., Dodd, D. C., Roth, L. The Necropsy Book. 4th edn, C.L. Davis Foundation. (2006).
  4. Kittel, B. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice--Part 2. A joint publication of the RITA and NACAD groups. Exp Toxicol Pathol. 55, 413-431 (2004).
  5. Fox, J. G. Chapter 1. The Mouse in Biomedical Research. Elsevier. Vol. 3: Normative biology, husbandry, and models 1-22 (2007).
  6. Morawietz, G. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice--Part 3. A joint publication of the RITA and NACAD groups. Exp Toxicol Pathol. 55, 433-449 (2004).
  7. Popesko, P., Raijtová, V., Horák, J. Colour Atlas of Anatomy of Small Laboratory Animals. 2, 1st edn, Saunders. vol. 2: Rat, mouse, hamster 91-106 (2002).
  8. Ruehl-Fehlert, C. Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice--part 1. Exp Toxicol Pathol. 55, 91-106 (2003).
التشخيص والتشريح والأنسجة عينة مختارة كوكتيل في الجرذان والفئران
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Parkinson, C. M., O'Brien, A., Albers, T. M., Simon, M. A., Clifford, C. B., Pritchett-Corning, K. R. Diagnostic Necropsy and Selected Tissue and Sample Collection in Rats and Mice. J. Vis. Exp. (54), e2966, doi:10.3791/2966 (2011).More

Parkinson, C. M., O'Brien, A., Albers, T. M., Simon, M. A., Clifford, C. B., Pritchett-Corning, K. R. Diagnostic Necropsy and Selected Tissue and Sample Collection in Rats and Mice. J. Vis. Exp. (54), e2966, doi:10.3791/2966 (2011).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
simple hit counter