Summary
Степень магазин управлением Ca
Protocol
1. Внутриклеточного Са 2 + измерение для отдельных ячеек
- KYSE-150, человек пищевода плоскоклеточный рак (ECSS) клеточной линии культивируют в 5% CO 2 атмосферы при температуре 37 ° C в смешанных RPMI 1640/Ham "с F-12, средние (1:1), содержащий 5% эмбриональной телячьей сыворотки.
- KYSE-150 клеток, трансфицированных плазмиды или содержащие ShRNA именно против Orai1 или зашифрованная последовательность. Плазмид также включен ген, кодирующий красный флуоресцентный белок (RFP) в качестве репортера, который приводится в движение отдельным промоутер.
- Клетки, выращенные в стеклянным дном посуды (№ 1.5 покровного стекла, Маттек, Массачусетс) в течение 48 часов.
- Удаление среды и промыть клетки сбалансированный солевой раствор (BSS) (140 мМ NaCl, 2,8 мМ KCl, 2 мМ CaCl 2, 2 мМ MgCl 2, 10 HEPES мМ, рН 7,2).
- Добавить 1 мл раствора, содержащего BSS 2 мкМ Фура-2 ацетоксиметил эфира (Molecular Probes) в блюдо и обернуть целое блюдо фольгой, чтобы proteКТ от света месте.
- Инкубируйте клетки в течение 40 мин при 37 ° С, а затем оставляют их в течение 15 мин период при комнатной температуре, чтобы гидролиз эфира должно быть завершено. Промойте клетки с BSS в два раза.
- Установите блюдо на сцене Nikon TE200 инвертированного микроскопа, который подключен к PTI spectrofluorometer, при возбуждении длиной волны 350 и 390 нм и излучения на длине волны 510 нм. Точное длинах волн возбуждения может быть использована слегка меняться в зависимости от оптики каждой отдельной системы. Двух длинах волн с лучшим соотношением динамических определяется спектр возбуждения сканирования Фура-2 соли в растворе, содержащем Ca 2 + в диапазоне от 0 до 39,8 мкм (или выше концентрация, при которой Фура-2 флуоресценции насыщенный).
- Настройка системы тяжести перфузии с 4 различными решениями в BSS: Ca 2 + (2 мМ), EGTA (0,5 мм), EGTA-TG (тапсигаргин, 5 мкм), Ca 2 +-2-APB (ингибитор SOCE, 75 мкМ). С компьютерным управлением автоматизированной perfusiна системы также может быть использован.
- Выделите ячейки, выразив ППП в режиме визуализации.
- Установите открытия кончик перфузии системы в 10-кратным увеличением, пока наконечник находится прямо над интересующей нас области на 45 градусов.
- Одновременно запись сигналов флуоресценции F 350 нм и F 390nm. Соотношение (350 нм F / F 390nm) отображается в третьем окне. Изменение перфузионные растворы в следующем порядке: Ca 2 +; EGTA, Ca 2 +; EGTA-TG, Ca 2 +, Ca 2 +-2-APB.
Выше протокол может быть модифицирован для измерения внутриклеточного Са 2 + в клетке система подвески.
- Культура KYSE-150 клеток в колбе T25 с тем же условием культуры, как указано выше.
- Когда клетки достигают 90% слияния, удалить среды и промыть клетки раствором BSS.
- Добавить 2,5 мл раствора, содержащего BSS 2 мкМ Фура-2 АМ и инкубироватьклетки в течение 40 мин при 37 ° С с последующим deesterification.
- Удалить BSS, добавить 2,5 мл трипсина в колбу и инкубировать при температуре 37 ° C до клетки отделяются. Затем добавить 2,5 мл питательной среды, чтобы остановить трипсинизации и уборки клетки центрифугированием при 800 оборотов в минуту в течение 5 мин.
- Промойте клетки культуральной среде еще раз с помощью центрифугирования и повторно приостанавливать клеток гранул в растворе BSS (без добавления 2 мМ CaCl 2, содержащий мкм Ca 2 +) и подсчитать количество клеток помощью hematometer.
- Добавить ~ 10 6 клеток в кварцевую кювету (10 мм, Starna клеток) и заполнить объем до 2 мл с BSS.
- Поместите кювету (перемешивание с магнитным бар) в spectrofluorometer.
- Одновременно запись сигналов флуоресценции F 340 и F 380 нм с длиной волны излучения на длине волны 510 нм. Работает протокол: КПП, добавлением 0,5 мкл EGTA (0,25 М акций), добавление 1 мкл тапсигаргин(Т., 10 мМ акций), добавление 4 мкл Са 2 + (1 М акций).
2. Mn тушение анализа в культуре клеток
- Выполните длины волны возбуждения сканирования Фура-2 в растворах, содержащих различные концентрации Са 2 + в диапазоне от 0 до 39,8 мкм для определения концентрации кальция в качестве независимого волны изобестической точки. Как правило, изобестической точка находится на или около 360 нм.
- KYSE-150 клетки культивировали в стеклянным дном посуды и загружается с Фура-2 AM.
- Настройка системы перфузии с 5 различными BSS решений: Ca 2 + (2 мМ), EGTA / TG (0,5 мм и 5 мкм соответственно), Mn 2 + (0,5 мм, без добавления EGTA или Ca 2 +, содержащих свободный Са 2 + в мкм), Mn 2 + / 2-APB (75 мкм), EGTA / Triton X-100 (0,1%).
- Установите блюдо на сцене под микроскопом и выберите "Возбуждение Ratio" режиме с длиной волны возбуждения при 360 нм и 390 нм и эмиссии при 510нм.
- Одновременно запись сигналов флуоресценции F 360 нм и F 390nm с отношением (F 360 нм / F 390nm), представленные в третьем окне. Работает протокол: Ca 2 + в течение 1 мин для стабилизации флуоресценции, Mn 2 + в течение 30 секунд, EGTA / TG в течение 10 мин, Mn 2 + в течение 2 мин, EGTA-Тритон Х-100 (0,1%) в течение 1 мин для получения фона чтении. Mn 2 + / 2-APB решение может быть использовано вместо Mn 2 + для изучения отменил тушение флуоресценции, что свидетельствует о том, что Mn 2 + запись через SOCE пути.
3. Mn тушение анализа в мышечных клетках
- C2C12, мышь миогенной линии клетки, культивированные на стеклянным дном блюда в 5% CO 2 атмосферы при температуре 37 ° C в DMEM среде, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 10% лошадиной сыворотки.
- После того как клетки достигают слияния, питательной среды меняется на дифференциации среды (удаление эмбриональной бычьей сыворотки и снижениюэлектронной лошадиной сыворотки до 2,5%). C2C12 миобластов будет дифференцироваться в myotubes через 4 дня.
- Загрузка C2C12 myotubes с конечной концентрации 5 мкМ Фура-2 утра, как описано в 1,4-1,6.
- Добавить в конечной концентрации 20 мкМ N-бензил-п-толуол сульфаниламидами (BTS) для подавления мышц и движение артефакты, вызванные ими и позволяет за 15 минут до начала эксперимента.
- Установите блюдо на стадии микроскоп подключен к устройству PTI и загрузить следующие решения BSS в перфузионной системе: 2 Ca 2 + (2 мМ), 0 Ca 2 +, Mn 2 + (0,5 мм); Mn 2 + / TG (0,5 мм, 20 мкм, соответственно).
- Настройка системы перфузии, как описано выше.
- Одновременно запись сигналов флуоресценции F 360 нм и F 390nm с отношением (F 360 нм / F 390nm), представленные в третьем окне. Работает протокол: 2 Ca 2 + в течение 1 мин, 0 Са 2 + в течение 1 мин этуш от Ca 2 +, Mn 2 + в течение 0,5 мин, Mn 2 + / ТГ в течение 10 минут, и Mn 2 + / EGTA-Тритон Х-100 (0,1%).
4. Пространственно и временно решен в SOCE кожей мышечных волокон
- Подготовьте следующие решения.
Изотонический буфер Тироде: 140 мм NaCl, 5 мМ KCl, 10 мМ HEPES, 2 мМ MgCl 2, 2,5 мМ CaCl 2, рН 7,2, 290 мосм
Культура среда: DMEM с 2% лошадиной сыворотки и 1% пенициллина и стрептомицина
Промывочный раствор № 1: 109,6 мМ K-глутамата, 2 мМ EGTA-KOH, 6,7 мМ MgCl 2, 2 мМ АТФ, 6 мм креатин фосфат (СР), 20 мМ N, N-бис (2-гидроксиэтил)-2-аминоэтансульфоновая кислоты (BES), KOH, рН 7,0
Промывочный раствор № 2: 140 мм К-глутамата, 5 мМ EGTA-KOH, 6,5 мМ MgCl 2, 2 мМ АТФ, 6 мм CP, 20 мМ BES-KOH, рН 7,0
Снятие шкур решение: 140 мм К-глутамата, 6,5 мМ MgCl 2, 2 мМ АТФ, 6 мм CP, 20 мМ BES-KOH, рН 7,0
TT-загрузкиРешение: 90,6 мМ K-глутамата, 18 мМ Na-глутамата, 0,55 мМ CaCl 2, 2 мМ EGTA-KOH, 6,7 мМ MgCl 2, 5,4 мМ АТР, 15 мМ CP, 0,0025 мг / мл креатинкиназы (КК), 20 мМ BES-КОН, 5 мкМ карбонилцианид р-trifluoromethoxyphenylhydrazone (FCCP), рН 7,0, 7,0 рСа
SR загрузки решение: 107,8 мМ K-глутамата, 0,98 мМ CaCl 2, 2 мМ EGTA-KOH, 6,6 мМ MgCl 2, 5,4 мМ АТР, 15 мМ CP, 0,0025 мг / мл CK, 20 мМ BES-КОН, 5 мкМ FCCP, рН 7,0, 6,6 рСа
SR истощения решение: 100 мМ К-глутамата, 40 мМ Na-глутамата, 10 мМ EGTA-КОН, 10 мМ 1,2-бис (о-аминофенокси) этан-N, N, N ', N'-тетрауксусной кислоты (BAPTA ), 0,35 мМ MgCl 2, 0,5 мМ ATP, 1 мМ CP, 20 мМ BES-КОН, 5 мкМ FCCP, рН 7,0. 25 мМ caffeine/20 мкМ тапсигаргин (ТГ) добавляются перед экспериментами. - Чтобы вскрыть длинного разгибателя пальцев (EDL) мышц, в первую лег мышей и устроить ногу в боковом положении, затем снимите кожу от лодыжки площадью до колена, сократитьповерхностные слои мышц ткани, чтобы разоблачить EDL, и отделят как верхние и нижние сухожилия, чтобы освободить нетронутыми EDL мышцы, важно сохранить сухожилий как можно дольше. EDL передается Тироде раствор, содержащий 0 Са 2 + и 0,1 мм EGTA для предотвращения сокращений.
- Под стереомикроскоп, используйте два пинцета держать ниже сухожилия вставки и разделить EDL мышцы на две пачки. Повторите процедуру, чтобы получить 4, а затем 8 пучков. Очень важно, чтобы сухожилия остаются для каждого из 8 пучков в конце процесса. Если они потеряли от некоторых пучков, отказаться от них.
- Под стереомикроскоп, каждый EDL полосы расслоение griped на обоих сухожилий и тщательно растянуты до 3 ~ 4 разделенных одним мышечные волокна остаются нетронутыми с сухожилия на обеих сторонах.
- Поместите 1 каплю Ca 2 + свободный буфер Тироде в середине стеклянным дном тарелку, сложить EDL полосы прямо на блюдо, быстро снять как можно больше изрешение, то ленту вниз и сухожилий использование водостойкого скотча, и убедитесь, что лента является жесткой. Вымойте волокна сначала с 0 Ca 2 + раствор, а затем с 2,5 мМ Ca 2 + раствор в 2 раза. Если волокно гипер-контракты и повреждения заметить, отказаться от волокна.
- При необходимости волокно можно выращивать до 96 часов, что позволяет генетических манипуляций. Вымойте волокна 3 раза с полной культуральной среде и добавьте 2 мл среды на блюдо, место в 5% CO 2 и 37 ° C инкубатора. Перед каждым экспериментом, изучить мышечных волокон и отбросить те, кто не ясно страты или с признаками заражения, или с признаками повреждения, такие как контрактура сарколеммы мембраны. Хорошо волокон реагировать на KCl, электрической стимуляции и стимуляции кофеином.
- Одноместный мышечные волокна промывали 3 раза промывочного раствора № 1 и купались в внутриклеточных-скинов, как решение с 500 мкМ Род-5N и 0,5 мМ Ca 2 + в течение 5 мин. <LI> Использование вольфрамовой иглы присоединяется к контактным держатель, механически коже волокна под стереомикроскоп, позволяя поперечные трубочки (TT), чтобы автоматически пломбу, и для перехвата Род-5N сопряженной с Са 2 + в ТТ, мыть кожей волокон в два раза с моющим раствором № 2. Механический процесс воплощения в оптимальных случаях, когда менее чем 25% от ширины ячеек удаляется в процессе шкуры.
- Чтобы загрузить SR, кожей волокон инкубируют с скинов раствор, содержащий 20 мкм Fluo-5N утра в течение 1 часа при комнатной температуре, а затем обширные моет использованием моющего раствора № 2, и инкубировать в течение дополнительных 30 минут, чтобы позволить полную деэтерификации на красителе.
- Через 30 мин кожей волокон визуализируются при 60X Цель конфокальной микроскопии. Флуоресцентные изображения приобрели на длинах волн соответствующие красители (возбуждение при 543 нм и излучения более 570 нм для Род-5N, возбуждение при 488 нм и эмиссии на 530-560 нм для Fluo-5N). Регидополнений интереса (трансформирования) выбираются для каждого красителя загруженных районах.
- Экспериментальный протокол выглядит следующим образом: TT-загрузки решение в течение 120 с, SR-загрузки решение в течение 120 с, SR-истощение решение с 400-750 до разрушающих SR Ca 2 + магазине. Во время этого процесса, изменения в Род-5N интенсивности (TT Ca 2 +) и Fluo-5N интенсивности (SR Ca 2 +), отражаются, создавая определения времени хода относительной флуоресценции изменений в TT и SR. Средние значения интенсивности флуоресценции из нескольких волокон в дальнейшем анализе. Максимальная интенсивность нагрузки в конце TT / SR-нагрузки нормированы на 100%.
5. Представитель Результаты
Мы рассмотрели SOCE деятельности в KYSE-150 ячеек с помощью внутриклеточного Са 2 + измерений (рис. 2.). Использование ППП в качестве репортера, мы могли бы выбрать отдельные клетки трансфицированных плазмиды, содержащие конкретные ShRNA против orai1, ген, кодирующий SOCE сhannel. По сравнению с клетками трансфицированных плазмиды, содержащие борьба ShRNA (черная линия), сбивание Orai1 белка приводит к снижению активности SOCE (красная линия).
SOCE в KYSE-150 клеток было подтверждено с Mn 2 + закалка анализа (рис. 3.). Длине волны возбуждения 360 нм сообщает изобестической точки Фура-2, где флуоресценции не зависит от концентрации Ca 2 +. После TG полностью исчерпана ER Ca 2 + магазины, перфузии Mn 2 + приводит к значительному снижению флуоресценции. В целом деятельность SOCE можно судить по снижению скорости Фура-2 интенсивность флуоресценции с более крутой наклон, что свидетельствует о более активном SOCE, в то время как мелкие склоне смысл менее активных SOCE. Наклон флуоресценции снижение в 2-APB обработанные клетки оказались гораздо мельче, который показал, что SOCE деятельность была блокирована этого соединения. Mn2 + закалка ставки определяется по записи первых 10 секунд, где тушение еще в линейном диапазоне без насыщения.
Аналогичная Mn 2 + закалка анализ был выполнен в мышцах (рис. 4.). В этом случае Mn 2 + была применена вместе с ТГ. Хотя Т. был истощения SR Ca 2 + магазины, флуоресценция склоне закалки постепенно менялся, пока не достиг своей максимальной скорости. Сигмоидального кривой указывает на градуированной активации SOCE в этих экспериментальных условиях.
Здоровый нетронутым один мышечных волокон в культуре, показало четкую и равномерную страты, никаких признаков загрязнения, и нет никаких признаков сокращения вызванного повреждения. Эти волокна были в состоянии заключить в ответ на электрическую стимуляцию или деполяризующего решений. При конфокальной микроскопии, кожу волокна захвата Род-5N красителя в купе TT показал характерный млекопитающих картина дублета (визуальномическое, реализующееся в красный канал). После загрузки с Fluo SR-5N А.М., типичный перемежается SR картина была видна (в канале зеленого цвета). После перфузии кожей волокна с TT / SR загрузки решение, интенсивности флуоресценции и Род-5N и Fluo-5N увеличилось, при перфузии раствором истощение SR, флуоресценция уровней в отделение СР и купе TT начали снижаться, что указывает на тесную связь между SR Ca 2 + истощение магазин и SOCE активации, соответственно (рис. 5.).
Рисунок 1. Активация магазина управлением вход Са 2 + (SOCE). Orai1, канал поры формирования блока, находится на мембране (ПМ) и STIM1, Ca 2 + датчик, расположенный на эндоплазматического или саркоплазматического ретикулума (ER / SR) мембран. Когда ER / SR Ca 2 + магазины сводятся либо из-за блокирования ER / SR Ca 2 + насос (SERCА) и Са 2 + освобождение через IP 3 рецепторов или рианодиновых рецепторов, STIM1 активирована. Активированный STIM1 молекулы образуют патчи и вызывать агрегацию Orai1, что в дальнейшем приводит активации SOCE.
Рисунок 2. Измерение внутриклеточного Са 2 + в KYSE-150 клеток. Обмен внеклеточной решение от 0 Са 2 + (0,5 ммоль EGTA) до 2 мм Са 2 + не побуждать какое-либо изменение внутриклеточного Са 2 +. 5 мкМ ТГ в 0 Са 2 + ванна решение индуцированных пассивный ER Ca 2 + релизе. После того, как Р. Са 2 + магазины были исчерпаны (> 10 мин), добавление внеклеточного Са 2 + (2 мМ) активированный устойчивого внутриклеточного Са 2 + через повышение SOCE, который может быть заблокирован ингибиторами SOCE, например, SKF-96365 и 2 - APB (данные не показывают). Клетки трансфицированных плазмиды, содержащие ShRNA именно противorai1 (красный) продемонстрировали значительно сократить SOCE, чем клетки трансфицированных борьба последовательность (черный).
Рисунок 3. Mn 2 + закалка из анализа SOCE в KYSE-150 клеток. Тушение Фура-2 флуоресценции Mn 2 + (0,5 ммоль) измерялось в Ca 2 +-независимой длины волны возбуждения Фура-2 (360 нм). Клетки обрабатывали 5 мкМ ТГ в течение 10 минут, чтобы полностью разрушают ER Ca 2 + магазины. Распад склоне Фура-2 флуоресценции при Mn 2 + дополнение (пунктирные линии, в течение первых 10 сек) представлены активации SOCE, которая была выражена в процентах снижение флуоресценции в единицу времени (в качестве начального значения 100%). Максимально закаленных флуоресценции была создана в конце эксперимента лизиса клеток с 0,1% Тритон Х-100 (0%). Клетки обрабатывали 2-APB (75 мкм) продемонстрировали более мелкихсклон, предлагая SOCE заблокирован этого соединения в KYSE-150 клеток.
Рисунок 4. Адаптированная активации SOCE в мышечных клетках выявлены Mn 2 + закалка анализа. Активация SOCE может быть зарегистрирован в то время как Т. был истощения SR Ca 2 + магазины. Одновременное применение Mn 2 + (0,5 мм) и ТГ (20 мкм), индуцированный градуированный и сигмоидального снижение внутриклеточного Фура-2 флуоресценции (голубая пунктирная линия, чтобы показать самое быстрое тушение точка), который отличался от первоначального Mn 2 + закалка скорость (синяя линия тире). Mn 2 + закалка склон остался почти таким же, как базального уровня в клетках, обработанных 2-APB (75 мкм), что свидетельствует о SOCE было законсервировано.
Рисунок 5. Пространственно и временно решен в SOCE кожей мышечных волокон. (A) RhОД-5N соль загружают в TT и Fluo-5N А.М. был загружен в SR. (B) После применения Ca 2 + истощение решение, флуоресценции и в TT и SR отделения снизился. Потеря Fluo-5N флуоресценции указанных быстро выпустили SR Ca 2 + содержание и потери Род-5N флуоресценции предложил активации SOCE.
Discussion
Несмотря на возбуждение волн для Ca 2 +-связывающих и Ca 2 + бесплатный Фура-2, 340 нм и 380 нм, соответственно, лучшее соотношение динамического диапазона Фура-2 Ca 2 + измерения концентрации может произойти и на других длинах волн в той или иной микроскопа. Такие изменения в длине волны, как правило, в связи с изменениями в оптическом тракте с добавлением различных оптических компонентов. В этом исследовании возбуждения волн для Фура-2 были определены 350 нм и 390 нм, выполняя спектральный анализ Фура-2 флуоресценции.
Внутриклеточного Са 2 + уровня в цитозоле результаты баланс из нескольких источников, в том числе внутриклеточного Са 2 + релизе, внеклеточный Са 2 +, а также Ca 2 + механизм исключения на мембране ER и плазмы. Для выделения однонаправленных SOC-опосредованной Са 2 + из внутриклеточных приток Ca 2 + и освобождение Са 2 + дрожusion, Mn 2 + закалка анализ может быть использован. Mn 2 +, как известно, чтобы иметь возможность проникать в клетки через SOCE, но непроницаемой для экструзии поверхности мембраны или ER поглощение Са 2 + насосов. Таким образом, тушение флуоресценции представляет собой измерение однонаправленной Mn 2 + в клетки поток, который оценивает степень активации SOCE. Mn 2 + закалка анализ выполняется на изобестической точки, при такой длине волны Фура-2 интенсивность флуоресценции не зависит от концентрации Са 2 +. Изобестической точки для каждой системы должны быть определены спектр сканирования. Кроме того, Mn 2 + тушение могут быть записаны скорректированный флуоресценции при любых двух длинах волн таким образом, что окончательное значение не зависит от концентрации Са 2 + 13.
Чтобы получить пространственную и временную информацию о деятельности SOCE в скелетных мышцах, мы использовали двойные краски методом, который позволяет одновременно measuremeП о SOCE деятельности и SR Са 2 + в кожа взрослого млекопитающего EDL мышечных волокон. Корреляция между изменениями в СР Са 2 + содержание и SOCE деятельности могут быть построены, чтобы указать порог и чувствительность SOCE активации к истощению SR Ca 2 + хранения. TT-загрузки Решение оптимизировано дополнительно загрузить Т-трубочки с Са 2 + и для грунтования Т-канальцев и SR-загрузки решения, направленные на содействие максимальной SR Ca 2 + загрузки и дополнительно загрузить Т-трубочки с ~ 500 мкМ Са 2 +. FCCP входит в TT / SR-загрузки решения и SR-слой решение по ликвидации последствий от митохондрий.
Disclosures
Нет конфликта интересов объявлены.
Acknowledgments
Мы благодарим доктора Ноа Вайследер для чтения и редактирования этой рукописи. Эта работа была поддержана Исследовательские гранты Фонда UMDNJ 62-09 в ZP, Американской ассоциации сердца SDG2630086 на XZ, 0535555N БМ, и Национальными Институтами Здоровья RC2AR058962-01 Мб.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
RPMI 1640 | Mediatech | 10-040-CV | |
Ham's F-12 | Mediatech | 10-080-CV | |
DMEM | Mediatech | 10-013-CV | |
Glass Bottom Dish | MatTek | P35G-1.5-14-C | |
Fura-2 AM | Invitrogen (Molecular Probes) | F1221 | -20 °C, seal tight, protected from light, dissolved into DMSO |
Fluo-5N AM | Invitrogen (Molecular Probes) | F14204 | -20 °C, seal tight, protected from light |
Rhod-5N | Invitrogen (Molecular Probes) | R14207 | -20 °C, seal tight, protected from light |
Quartz Cuvette | Starna Cells | 3-Q-10 | |
thapsigargin | Tocris | 1138 | |
2-Amin–thoxydiphenylborane (2-APB) | Tocris | 1224 | |
N-benzyl-p-toluene sulphonamide (BTS) | Sigma-Aldrich | 435600 | |
Collagenase Type I | Sigma | C0130 | |
Equipment: |
|||
|
References
- Parekh, A. B., Putney, J. W. Jr Store-operated calcium channels. Physiol. Rev. 85, 757-810 (2005).
- Ma, J., Pan, Z. Retrograde activation of store-operated calcium channel. Cell Calcium. 33, 375-384 (2003).
- Feske, S. ORAI1 and STIM1 deficiency in human and mice: roles of store-operated Ca2+ entry in the immune system and beyond. Immunol. Rev. 231, 189-209 (2009).
- Parekh, A. B. Store-operated CRAC channels: function in health and disease. Nat. Rev. Drug Discov. 9, 399-410 (2010).
- Pan, Z. Dysfunction of store-operated calcium channel in muscle cells lacking mg29. Nat. Cell Biol. 4, 379-383 (2002).
- Shin, D. W. A retrograde signal from calsequestrin for the regulation of store-operated Ca2+ entry in skeletal muscle. J. Biol. Chem. 278, 3286-3292 (2003).
- Ma, J., Pan, Z. Junctional membrane structure and store operated calcium entry in muscle cells. Front Biosci. 8, d242-d255 (2003).
- Pan, Z., Damron, D., Nieminen, A. L., Bhat, M. B., Ma, J. Depletion of intracellular Ca2+ by caffeine and ryanodine induces apoptosis of chinese hamster ovary cells transfected with ryanodine receptor. J. Biol. Chem. 275, 19978-19984 (2000).
- Hirata, Y. Uncoupling store-operated Ca2+ entry and altered Ca2+ release from sarcoplasmic reticulum through silencing of junctophilin genes. Biophys. J. 90, 4418-4427 (2006).
- Zhao, X. Enhanced resistance to fatigue and altered calcium handling properties of sarcalumenin knockout mice. Physiol. Genomics. 23, 72-78 (2005).
- Zhao, X. Azumolene inhibits a component of store-operated calcium entry coupled to the skeletal muscle ryanodine receptor. J. Biol. Chem. 281, 33477-33486 (2006).
- Launikonis, B. S., Barnes, M., Stephenson, D. G. Identification of the coupling between skeletal muscle store-operated Ca2+ entry and the inositol trisphosphate receptor. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 2941-2944 (2003).
- Shuttleworth, T. J. Temporal relationships between Ca2+ store mobilization and Ca2+ entry in an exocrine cell. Cell. Calcium. 15, 457-466 (1994).