Summary
Kronisk kateterisation af blodkar i rotten er ofte nødvendigt for administration af stoffer, få blodprøve i løbet af en periode eller for direkte bevidst blodtryksmålinger. Femoral arteriel kateterisation af rotten og tilsvarende målinger af blodtryk i den bevidste dyret vil blive demonstreret.
Abstract
I flere studieretninger, adgang til kredsløbssygdomme i laboratorieforsøg er nødvendig. Farmakologiske studier i rotter med kronisk implanterede katetre tillade, at en forsker til effektivt og humant administrere stoffer, udførelse af gentagne blodprøver og assisterer i bevidst direkte målinger af blodtryk og hjertefrekvens. Når kateteret er implanteret langsigtet prøveudtagning er mulig. Åbenheden og kateter liv afhænger af flere faktorer, herunder låsen anvendte løsning, rødmen regime og kateter materiale. Denne video vil demonstrere metoden for femoral arterie og venøs kateterisation af rotten. Ud over videoen vil demonstrere brugen af femoralis venøse og arterielle katetre til blodprøvetagning, Drug Administration og brug af arteriekateter i at tage målinger af blodtryk og puls i en bevidst frit bevægelige rotter. En snor og sele fastgjort til en drejelig system vil gøre det muligt for dyret at være hobrugt og har prøver som forskeren med minimal forstyrrelse af dyret. For at fastholde åbenheden af kateteret, er omhyggelig daglig vedligeholdelse af kateteret ønsket ved hjælp låse løsning (100 E / ml hepariniseret saltvand), maskin-jorden stump spids sprøjte nåle og brugen af sprøjte-filtre for at minimere potentiel forurening. Med omhyggelig aseptisk kirurgiske teknikker, korrekt kateter materialer og omhyggelig kateter vedligeholdelse teknikker, er det muligt at opretholde patentet katetre og raske dyr i lange perioder ad gangen (flere uger).
Protocol
1. Før Start Kirurgisk procedure
Bemærk: Før starten alle dyr procedurer sikrer, at du har fået den nødvendige tilladelse via din institution / organisation. Som med alle overlevelse operationer, sørg for, at operationen er udført under sterile forhold og de nødvendige smertestillende medicin og havde brug for antibiotika, der anvendes for et vellykket resultat.
- Forud for starten den kateterisation procedure vurdere katetre ved at skylle dem med sterilt saltvand for at sikre, at de er patentbeskyttede.
- Bedøver rotter.
- Forbered rotten for den kirurgiske procedure.
- Barbere pelsen fra det kirurgiske områder, som omfatter nakken (mellem skulderbladene) og den indre benet regionen.
- Brug Betadine og en 70% ethanol krat henholdsvis skure barberede kirurgiske regioner starter i midten og lave en cirkulær sweep udad. Gentagdette 3 gange for hver region, afsluttende med en endelig rengøring med 70% ethanol.
- Placer dyret på en steril overflade og placere sterilt drapere over kirurgiske områder. (Brugen af Press-n-Seal er et ideelt kirurgisk draping gør det muligt for investigator til at overvåge dyret under hele proceduren.)
- Sikre, at alle kirurgiske redskaber til den kirurgiske procedure er blevet steriliseret.
2. Udarbejdelse af Kirurgisk Områder til placering af kateter
- Med rotten om tilbøjelige (på maven), at cirka en ½ tommer (12 mm) vandret snit på bagsiden af halsen på niveau med skulderbladene med en saks eller en skalpel, så stumpt dissekere en subkutan "lomme" i bagsiden omtrent på størrelse med en fjerdedel. Dette vil blive brugt som et område for at placere en lille mængde af slangen, der vil kompensere for dyrs vækst og / eller bevægelse, dvs således, at kateteret ikke er trukket på, og dermed fjernet fra arterien var det stedd ind (Alternativt dette trin kan udføres umiddelbart forud for tunneling kateteret.)
- Placer rotte på ryggen (liggende position) og foretage et snit i lyskelymfeknuder området [omtrentlige ½ inch (12 mm) snit langs den naturlige vinkel på bagbenet.
- Blunt dissekere at adskille bindevæv (Figur 1) (kan bruge stump-spids saks, hemostats, vatpinde, osv.) (typisk ved at holde din stump spids saks og / eller vatpinde i en 45 graders vinkel dette sikrer jo lettere lokalisering i regionen renter), indtil femoral arterie og vene er udsat for.
- Venen er mørk rød i farven, og arterien er klarere og lysere end vene. Den nerve, der løber langs arterien er hvidlig i tonen.
- Blunt dissekere i benet regionen til at gøre en lille åben region under huden (dvs. lomme, omtrent på størrelse med en fjerdedel) langs indersiden af benet til placering af en mindre del af catheter (igen for at tage hensyn til dyrs bevægelser og vækst af dyret, hvis kroniske placering).
- Placer retraktorer ind i indsnittet område, så du fuldt ud kan se arterie og vene.
- Brug af fin spids pincet forsigtigt adskille nerve (hvidlig farve), som er langs den femorale arterie væk fra arterie og vene. (Figur 2) Vær forsigtig med ikke at skære eller beskadige nerven.
- Adskil arterie og vene som én enhed, forsøger at udsætte en ca ¼ tomme (5-7 mm) længde del af arterie / vene.
- Gentag processen i at adskille vene fra arterie. Hold dine kirurgiske instrumenter (dvs. fin spids tang) vinkelret på skibe og adskille fartøjer i parallel. Dette hjælper med at undgå tåreflåd, prikkende eller beskadigelse af fartøjer. Ved at placere den fine spids pincet forsigtigt mellem arterie og vene fra undersiden og langsomt åbne pincet og gentage dette, vil du langsomt adskille fartøjer. Bemærk: hvis du rive eller iagttage nogleblødning bruge en steril vatpind og / eller 2 x 2 gaze og lægge pres på området, indtil blødningen er stoppet, og derefter fortsætte med kirurgi.
3. Tunneling Kateteret
- Placer sterilt saltvand gennemblødt 2 x 2 gaze over incisionen og vende dyret til sin mave.
- Placer Rochester Pean pincet (lange lige tang) i snit på bagsiden, der blev lavet tidligere, og vejlede pincet subkutant ned tilbage til niveauet i hofterne [sikre spidsen af hemostats der peger opad, (ikke mod rygsøjlen ) for at undgå skade på rygmarven]. På omtrent hofte-regionen dreje hemostat spidsen hen imod indsnittet, der blev lavet i benet regionen og skubbe spidsen af hemostats ud af den forberedte benet incisionen.
- Forsigtigt fat i enden af katetre (ikke den ende, der vil blive indsat i arterie / vene) med pincet og træk forsigtigt katetre gennem hulrum, der blev foretagetog i sidste ende ud af halsen incisionen.
- Placer passende stumpe-spids kanyle sprøjte fyldt med 20 U / ml heparin / saltvand på enden af de respektive katetre og fyld katetre (sikre, at der ikke er luftbobler) med hepariniseret / saltvand. Endnu engang kontrollere, at katetre er patentbeskyttede, og ingen skader er kommet til katetre. Lad sprøjter fastgjort til enden af kateteret linjer for at sikre, at ingen luft er i stand til at komme ind i kateteret linjer og vende rotte på ryggen igen.
4. Indsættelse af Katetre i Femoral vene og arterie (figur 3)
- Læg et foldet stykke sterilt 4,0 silke / tråden under collum vene, og derefter klippe silke på den foldede ende. Der vil nu være to stykker silke under vene. Eller alternativt, sted 2 stykker på 4,0 silke under vene individuelt.
- Adskil silke, som du har placeret under den vene, et stykke i retning af benet (distale ende) og den anden mod kroppen. Tdvs en løs ligatur på den side tættest på kroppen, og derefter ved hjælp af små hemostats, tage fat i silke og trække undervist, men ikke stramme knude. Træk den anden stykke silke så vidt muligt i retning af benet (distal ende) og binde det til en tredobbelt knude, tage fat i silke med små hemostats og træk undervist. Denne metode vil gøre det muligt blodåre til at fyldes med blod, hvilket gør det lettere at få snittet, der er nødvendig for at indsætte katetret (trin 4).
- Placer 1-2 dråber af lidocain på venen.
- Brug af Vanna mikro-dissekere saks, lave et lille snit i venen ca ¼ igennem og i en 45 graders vinkel.
- Placer fin spids pincet (45 tang) i snit, og ved hjælp af et andet par af tang; omhyggeligt foder i vene kateter. Forsigtigt åbne pincet, der er placeret i venen, da dette vil gøre det muligt for forskeren at blidt sted venekateter under pincet og ind i venen.
- Når kateteret er sat helt ind (passendex. 6-7 cm) (når de foretager kateteret et mærke er placeret på kateteret til at hjælpe kirurgen med at identificere, når kateteret er helt indsat) (dette placerer venekateter i den abdominale vena cava), spænd forreste ligatur omkring venen og kateter, binde en tredobbelt knude (sikre, at det ikke er okkluderende venen). Brug silke sutur nær benet (posterior ligatur) for igen at sikre kateter (triple knude) og sikre placering. Langsomt trække sig tilbage på sprøjten, indtil der er lidt blod synligt i kateteret, som hjælper med at sikre, at suturen knuderne ikke er for stramme, og at kateteret er funktionel. Efter at have kontrolleret, trykkes stemplet, indtil blodet er ikke længere synlig på kateteret.
Bemærk: Det er muligt at indsætte 2 katetre i femorale vene hvis det er nødvendigt. - Gentag trin 9-13 for at placere et femoral arterie kateter med følgende undtagelser:
- Tie silke nærmest benet (posterior) med en tredobbelt knude og træk tauGHT før binde de løse ligatur tæt på kroppen (anterior) inden du gør snittet for placering af kateter. Dette vil gøre det muligt arterie for at fyldes med blod at gøre det lettere at skære. Sørg for proksimale sutur er trukket lært at occlude arterien før skære arterien. Dette vil forhindre blodtab, når snittet er lavet.
- Sæt arteriekateter ca 5 cm fra arteria femoralis (dette placerer kateteret i den abdominale aorta).
- Ved fastspænding af kateteret med sutur, skal du sørge for sutur ikke er for stram og okkluderende kateteret.
5. Kirurgisk Wrap-up
- Lav en skilling til kvartal mellemstore loop i katetre og plads på indersiden af benet (løkken skal passe i det område, der var stumpt dissekeret tidligere). Efter at placere begge katetre, sikre dem med 1-2 sting på 5,0 kirurgisk sutur i en muskel lag.
- Luk snittet med 4,0 Ethilon med ikke-kontinuerlig sutures.
- Vend rotte på sin mave og foretage endnu en løkke i katetre om størrelsen af et kvartal og plads i lommen dissekeret i ryggen. Luk snittet med sutur.
- Ved hjælp af en dråbe vetbond, sikre katetre i ryggen.
- Fastspænd katetre tæt på bagsiden incisionen med polstret hemostats og fjern sprøjter fra enderne.
- Montér rotte med en snor-type jakke, kasket den katetre (at bevare heparin lås), og fjern det polstrede hemostats.
- For opretholdelse på lang sigt erstatte kateter saltvandsopløsning med 20 U / ml heparin / saltvand.
6. Vedligeholdelse af kateter (sterile handsker skal bæres under procedure)
- Klemme kateteret med polstret pincet.
- Fjern kateteret stikket.
- Placer en stump tippes sprøjte med lås løsning på kateteret.
- Unclamp af tang.
- Fyld kateter med låsen opløsning (volumen er pre-DETErmined-typisk 0,3 ml).
- Klemme kateteret, mens skylning for at undgå tilbagestrømning af blod ind i kateterspidsen og fjern sprøjten.
- Udskift kateteret stikket.
- Unclamp den pincet, og skub forsigtigt stikket i lidt for at sikre, at ingen blod er i spidsen af kateteret.
7. Blodprøvetagning (Sterile handsker skal bæres under procedure)
Klemme kateteret med polstret pincet.
- Fjern kateteret stikket.
- Langsomt trækker låse løsning med en stump spids sprøjte og kassér.
- Sæt prøvetagning sprøjten til kateteret og langsomt trække sig prøven.
- Klemme kateteret med polstret pincet og læg en sprøjte med lås løsning på kateteret og re-fill kateteret med låsen løsning.
- Klemme kateteret, mens påfyldning kateteret med løsningen.
- Sæt kateteret stikket.
- Fjern det polstrede pincet, og skub forsigtigt t han stik i lidt længere.
8. Drug Infusion
- Klemme kateteret med polstret pincet.
- Fjern kateteret stikket.
- Langsomt trækker låse løsning med en stump spids sprøjte og kassér.
- Fastgør stof fyldte injektionssprøjte til kateteret og indgyde stoffet i dyret.
- man kan bruge en 3-vejs stophane samt en mellemliggende hvis flere injektioner er nødvendig, og dermed kræver mindre væske i dyret.
- Man kan også vedhæfte en konstant infusion sprøjtepumpe med et sterilt filter til kontinuerlig infusion.
- Klemme med polstrede pincet og læg en sprøjte med lås løsning på kateteret og re-fill kateteret med låsen løsning.
- Klemme kateteret, mens påfyldning kateteret med løsningen.
- Sæt kateteret stikket.
- Fjern det polstrede pincet, og skub forsigtigt stikket i lidt længere.
- Spænd arteriekateter med polstret pincet og fjern kateter stikket.
- Fastgør arterielle linje til tryktransduceren.
- Følg fremstilling vejledning i brug af software til blodtrykket kollektionen.
- Ved afslutningen af blodtrykket overvågningsperioden, klemmen ved hjælp af polstrede pincet kateteret og afbryde forbindelsen til transduceren.
- Skyl kateter med låsen løsning og erstatte kateter stikket som beskrevet ovenfor.
10. Repræsentative resultater
En repræsentant blodtryk foranstaltning blev truffet ud fra et bevidst frit bevægelige dyr og er præsenteret i Figur 4. Phenylephrin (3 ug / kg, iv), en alfa-1 adrenerge receptor agonist, blev administreret i collum vene linje for at øge blodtrykket, samtidig med måling af blodtryk fra femoralis arterielle linje. Phentolamine (4 mg / kg, iv),en non-selektive alfa-adrenerg antagonist, blev derefter givet til at sænke blodtrykket.
Figur 1. Stump dissektion af væv. Med rotte på ryggen, vil du have gjort omkring en ½ tommer (12 mm) incision på vinklen på bagben og bruge sløve saks eller hemostats du vil sløve dissekerer bindevævet at blotlægge femoral arterie og vene.
Figur 2. Adskillelse af femoral arterie og vene fra bindevæv.
Figur 3. Placering af kateter. Brug af Vanna mikro-dissekering saks placere et lille snit ca ¼ af vejen gennem skibet i en 45 graders vinkel (øverst) og placere fine spids pincet til the snit og med et andet par pincet fodre kateter i skibet (midten). Endelig, efter afslutningen af placeringen af kateteret sutur kateteret på plads (nederst).
Figur 4. Repræsentant blodtryk foranstaltning, der træffes ud fra et bevidst frit bevægelige dyr.
Discussion
Arteriel og venøs kateterisation har historisk været brugt til både akut og kronisk overvåger blodtryk, blodprøver og leverer stoffer i eksperimentelle rotte dyremodel 1-4. En stor fordel ved disse kirurgiske besætninger er, at det giver mulighed for overvågning, herunder, blodprøvetagning, medicinindtagelse og blodtryk overvågning, der skal gennemføres med minimale forstyrrelser og / eller stress til dyret 1. Talrige efterforskere har skrevet protokoller og har særlige metoder, som deres laboratorium udfører den kirurgiske procedure 5-8. Videoen og illustrationer vise, hvad vores laboratorium har fundet til at være en succes med hensyn til collum arteriel og venøs kateterisation procedure.
Rotter er almindeligt anvendt i laboratoriet for en lang række videnskabelige undersøgelser på grund af deres lille størrelse og bekvemmelighed i håndtering. Der er flere steder, hvor en kroniskkateter kan placeres inden for et dyr, herunder halsfedt, abdominal aorta, halspulsåren og arteria femoralis, for at nævne nogle få. Rotten femorale placering for kronisk kateterisation resulterer i øget længde af kateter åbenheden og havde den hurtigste genopretning af præ-kirurgisk dyrets vægt i forhold til andre kateter steder 9.
Talrige efterforskere har brugt indlagte katetre til akut såvel som kronisk blodprøvetagning 1-5,11-13. I mange undersøgelser flere blodet trækker kræves af et dyr og eksterne kanylering / kateterisation er en metode, der er fordelagtigt på grund af sin ikke-traumatisk art Derudover kan det gøres, mens dyret er ved bevidsthed, er således ikke begrænset af virkningerne af anæstesi og også dyret kan frit bevæge 1,10. Den bedste metode til at skaffe blodprøver og måling af stresshormoner i gnavere har været længe debatteret 6,13. Med hensyn til farmakokinetiske Studies, kateterisation af forskningen dyret tillader gentagne blodprøver med minimal tilbageholdenhed, når du bruger en kronisk implanteret kateter system. Desuden har undersøgelser vist reduceret basal koncentrationer af adrenalin, noradrenalin og dopamin i plasma af frit bevægelige rotter (jugularis kateter) sammenlignet med dyr, der er blevet håndteret (30 sekunder) og eller behersket (5 minutter) 14. En yderligere metode til at skelne stigninger i stress er ved at måle plasma corticosteron niveauer. Tidligere var det foreslået, at selv efter tre til fire dage af kirurgiske opsving gange, at plasma corticosteron niveauet var forhøjet i den kroniske kanylerede rotte 15. Imidlertid har de seneste forbedringer i metode fastslået, at der ikke er nogen forskel i basal plasma corticosteron niveauer i jugularis venen kanylerede rotter i forhold til uncannulated rotter 16. Desuden HPLC metode til corticosteron analyse viste, at corticosteren niveauer er forhøjede ved tilbageholdenhed stress, men stabil efter jugularis kateterisation 16.
En yderligere brug af kroniske kateterisation er måling af blodtryk og hjertefrekvens hos gnavere. Der er flere metoder, der er brugt til at måle blodtryk og puls hos rotter, disse omfatter den ikke-invasive hale manchet metoder, radiotelemetry procedurer og direkte iboende katetre. Hver metode har sine fordele og ulemper, som er beskrevet i detaljer i andre publikationer. Iboende væskefyldte katetre kan implanteres i flere arterier i rotten. Det femorale arterie er kun en arterie, der kan bruges til denne foranstaltning. For blodtryk / puls foranstaltninger, er den distale ende af kateteret er tilsluttet en kalibreret tryktransducer. Kateteret kan være anbragt i en beskyttende foråret, der er forbundet til en drejelig at tillade fri bevægelighed for dyret, eller fastgjort til en knap surgitisk implanteret til dyret. Indlagte katetre har den fordel at minimere langvarig stress på dyret 17,18. Hertil kommer, at materialerne er billige, er kalibrering nemt for pres foranstaltninger og vedvarende langsigtede foranstaltninger kan opnås under forhold med relativ lav belastning for mange uge 19. Vi ville være forkert, hvis vi ikke nævne, at der er ulemper til denne teknik, herunder, det er en kirurgisk invasiv teknik, er vedligeholdelsen af kateteret nødvendige for at opretholde passage, skader på arterien på grund af implantation af kateter og potentiale for infektion at nævne nogle få.
For kronisk foranstaltninger blodtryk direkte optagelser fra kronisk-implanterede arterielle katetre er mere teknisk udfordrende, men er mere nøjagtige og kan ske løbende uden at forstyrre dyrene. Hale-manchet målinger er mindre nøjagtige, men de ikke kræver operation og kan også gentageed. Hale-manchet metoder kræver håndtering samt opvarmning af dyret til at spile halen fartøjer for at lette påvisning af puls 20. Håndtering og den ekstra varme stress kan påvirke blodtrykket målinger, og dermed ikke giver helt præcise foranstaltninger. Hertil kommer, at de ikke-direkte hale-manchet metoden ikke tillader nem samtidige blodprøver eller Drug Administration.
En yderligere metode, som direkte mål kan opnås, er ved hjælp af telemetri metode. Telemetri giver mulighed for høj kvalitet optagelser af blodtrykket (og andre foranstaltninger) uafbrudt i længere tid i bevidst frit at flytte dyr uden begrænsninger eller anæstetika 18. Men telemetri-enheder, mens ideal er meget dyre. Sammenlignet med telemetri, kateterisation fordele kan nævnes: nedsat "setup" og driftsomkostninger, evnen til let administrere medicin og nemt tage blodprøver i bevidst frit bevægelige dyr. Den administreres afion af narkotika og stoffer, og få blodprøver fra den forskning, dyret kan gøres mens minimalt forstyrrende dyret, og dermed minimere stress til dyret og giver mulighed for en mere nøjagtig måling.
Disclosures
Produktion og fri adgang til denne video-artikel er sponsoreret af ADInstruments.
Acknowledgments
Forfatterne ønsker at takke Dr. Andrew King, ph.d. og Katrina King for bidrag af illustrationerne. NIH tilskud: R00HL087927.
Materials
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| Arterial Catheter | Consumable | SAI Infusion | RFA-01 | |
| Venous Catheter | Consumable | Scientific Commodities Inc. | BB518-20 & BB31785-V/2 | |
| 27g 1/2" Blunt Needle | Equipment | Integrated Dispensing Solutions, Inc. | 9991113 | |
| 23g 1/2" Blunt Needle | Equipment | Integrated Dispensing Solutions, Inc. | 9991109 | |
| PowerLab/8SP | Equipment |  ADInstruments |
ML765 | |
| Quad Bridge | Equipment | ADInstruments |
ML118 | |
| LabChart 7.2 | Software | ADInstruments |
||
| BP Transducer with stopcock & Cable | Equipment | ADInstruments |
MLT844 | |
| Single Channel Swivel | Equipment | Instech Laboratories, Inc | 375/22PS | |
| Single Axis-Counter Balance Swivel Mount | Equipment | Instech Laboratories, Inc | CM375BP | |
| Covance Infusion Harness | Equipment | Instech Laboratories, Inc | CIH105 | |
| Table Top Isoflurane Anesthesia Unit | Equipment | Protech International, Inc. | 61020 | |
| Rodent Anesthesia Mask | Equipment | Protech International, Inc. | RAM-02 | |
| Rodent Induction Chamber | Equipment | Protech International, Inc. | RIC-01 | |
| Anesthesia Gas Filter Canister | Equipment | Protech International, Inc. | 80120 | |
| Tabletop Laminar Flow Hood | Equipment | Sentry Air Systems, Inc. | SS-200-WSL | |
| Oster Golden A5 | Equipment | Oster Professional Products | 78005-140 | |
| Fiber Optic Light with Dual Gooseneck Guide | Equipment | LW Scientific, Inc. | ILL-1502-DGG1 | |
| Deltaphase Isothermal Pad | Equipment | Braintree Scientific, Inc. | 39DP | |
| Cotton-Tipped Applicators | Consumable | Solon Manufacturing Company | 36200 | |
| Gauze Sponges 2"x2" | Consumable | Kendall | 2146 | |
| 5-0 Nylon Suture | Consumable | Ethicon Inc. | 661G | |
| 4-0 Silk Suture | Consumable | Deknatel | 8-S, 136075-0208 | |
| Tissue Adhesive | Consumable | 3M | 1469SB | |
| Splinter & Fixation Forceps | Equipment | George Tiemann & Co. | 160-55 | |
| Student Tissue Forceps | Equipment | Fine Science Tools | 91121-12 | |
| Micro Forceps/Bracken Forceps | Equipment | George Tiemann & Co. | 10-1942 | |
| Extra Fine Graefe Forceps | Equipment | Fine Science Tools | 11152-10 | |
| Olsen-Hegar Needle Holder | Equipment | Fine Science Tools | 12002-12 | |
| Student Halsted-Mosquito Hemostat | Equipment | Fine Science Tools | 91308-12 | |
| Rochester Pean Forcep | Equipment | Biomedical Research Instruments | 31-1640 | |
| Student Surgical Scissors | Equipment | Fine Science Tools | 91402-12 | |
| Dumont Forceps | Equipment | Fine Science Tools | 11251-35 | |
| Micro Dissecting Scissors | Equipment | George Tiemann & Co. | 160-210 | |
| Strabismus Scissors | Equipment | Fine Science Tools | 14075-11 | |
| Hartman Hemostat | Equipment | Fine Science Tools | 13003-10 | |
| Tissue Scissors | Equipment | George Tiemann & Co. | 160-150 | |
| Retractor | Equipment | Custom Made |
References
- Tabata, Y., Chang, T. M. Intermittent vascular access for extracorporeal circulation in conscious rats: a new technique. Artif. Organs. 6, 213-215 (1982).
- Chester, J. F., Weitzman, S. A., Malt, R. A. Implantable device for drug delivery and blood sampling in the rat. J. Appl. Physiol. 59, 1665-1666 (1985).
- Koeslag, D., Humphreys, A. S., Russell, J. C. A technique for long-term venous cannulation in rats. J. Appl. Physiol. 57, 1594-1596 (1984).
- Hall, R. I., Ross, L. H., Bozovic, M., Grant, J. P. A simple method of obtaining repeated venous blood samples from the conscious rat. J. Surg. Res. 36, 92-95 (1984).
- Burt, M. E., Arbeit, J., Brennan, M. F. Chronic arterial and venous access in the unrestrained rat. Am. J. Physiol. 238, H599-H603 (1980).
- Cocchetto, D. M., Bjornsson, T. D. Methods for vascular access and collection of body fluids from the laboratory rat. J. Pharm. Sci. 72, 465-492 (1983).
- Rigalli, A., E, D. L. V. Experimental surgical models in the laboratory rat. , CRC Press. New York. (2009).
- Waynforth, H. B. F.P.A. Experimental and surgical tehcnique in the rat. , Elsevier Academic Press. Burlington. (2007).
- Yoburn, B. C., Morales, R., Inturrisi, C. E. Chronic vascular catheterization in the rat: comparison of three techniques. Physiol. Behav. 33, 89-94 (1984).
- Staub, J. F., Coutris, G. A technique for multiple, high-rate blood samplings via an external cannula in rats. J. Appl. Physiol. 46, 197-199 (1979).
- Steffens, A. B. A method for frequent sampling of blood and continuous infusion of fluids in the rat without disturbing the animal. Physiol. Behav. 4, 833-836 (1969).
- Thrivikraman, K. V., Huot, R. L., Plotsky, P. M. Jugular vein catheterization for repeated blood sampling in the unrestrained conscious rat. Brain. Res. Brain. Res. Protoc. 10, 84-94 (2002).
- Vahl, T. P. Comparative analysis of ACTH and corticosterone sampling methods in rats. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 289, E823-E828 (2005).
- Buhler, H. U., da Prada, M., Haefely, W., Picotti, G. B. Plasma adrenaline, noradrenaline and dopamine in man and different animal species. J. Physiol. 276, 311-320 (1978).
- Fagin, K. D., Shinsako, J., Dallman, M. F. Effects of housing and chronic cannulation on plasma ACTH and corticosterone in the rat. Am. J. Physiol. 245, E515-E520 (1983).
- Ling, S., Jamali, F. Effect of cannulation surgery and restraint stress on the plasma corticosterone concentration in the rat: application of an improved corticosterone HPLC assay. J. Pharm. Pharm. Sci. 6, 246-251 (2003).
- Fink, G. D., Bryan, W. J., Mann, M., Osborn, J., Werber, A. Continuous blood pressure measurement in rats with aortic baroreceptor deafferentation. Am. J. Physiol. 241, H268-H272 (1981).
- Van Vliet, B. N., Chafe, L. L., Antic, V., Schnyder-Candrian, S., Montani, J. P. Direct and indirect methods used to study arterial blood pressure. J. Pharmacol. Toxicol Methods. 44, 361-373 (2000).
- Wang, J., Tempini, A., Schnyder, B., Montani, J. P. Regulation of blood pressure during long-term ouabain infusion in Long-Evans rats. Am. J. Hypertens. 12, 423-426 (1999).
- Bunag, R. D. Facts and fallacies about measuring blood pressure in rats. Clin. Exp. Hypertens. A. 5, 1659-1681 (1983).
