Summary
Um ensaio de freqüência de adesão para medir cinética de interação receptor-ligante, quando ambas as moléculas estão ancoradas nas superfícies das células que interagem é descrito. Este ensaio mecanicamente baseado é exemplificado usando uma micropipeta pressurizado glóbulo vermelho humano como sensor de adesão e integrinas αLβ2 e molécula-1 de adesão intercelular como interagindo receptores e ligantes.
Abstract
O ensaio de adesão micropipeta foi desenvolvido em 1998 para medir a duas dimensões (2D) receptor-ligante cinética de ligação 1. O ensaio utiliza uma célula vermelha do sangue humano (RBC) como sensor de adesão e apresentar célula de uma das moléculas que interagem. Ela emprega micromanipulação para trazer o RBC em contato com outra célula que expressa a molécula de interagir com outras área controlada com precisão e tempo para permitir a formação de vínculo. O evento de adesão é detectado como alongamento RBC em cima puxando as duas células separadas. Ao controlar a densidade dos ligantes imobilizados na superfície RBC, a probabilidade de adesão é mantido em mid-range entre 0 e 1. A probabilidade de adesão é estimada a partir da freqüência de eventos de aderência em uma seqüência de ciclos de repetição do contato entre as duas células de um determinado tempo de contato. Variando o tempo de contato gera uma curva de ligação. Montagem de um modelo probabilístico para o receptor-ligante reação cinética de 1 a a ligaçãocurva retorna a afinidade 2D e desconto na tarifa.
O teste foi validado usando interações de receptores Fcγ com IgG Fc 1-6, selectinas com ligantes glicoconjugada 6-9, integrinas com ligantes 10-13, homotypical caderina vinculativo 14, T receptor celular e co-receptor com complexos peptídeo-major de histocompatibilidade 15 - 19.
O método tem sido utilizado para quantificar os regulamentos da cinética 2D por fatores biofísicos, tais como a membrana microtopology 5, membrana âncora 2, orientação molecular e comprimento 6, rigidez transportadora 9, 20 curvatura, e força impingement 20, bem como os fatores bioquímicos, tais como moduladores do microambiente citoesqueleto e membrana onde as moléculas interagem e reside na organização superfície dessas moléculas 15,17,19.
O método também foi usado to estudo a ligação simultânea de dupla receptor-ligante 3,4 espécies e interações trimolecular 19 usando um modelo modificado 21.
A principal vantagem do método é que ele permite estudo de receptores de membrana em seu ambiente nativo. Os resultados poderiam ser muito diferentes daqueles obtidos com receptores purificada 17. Ele também permite estudo das interações receptor-ligante em uma escala de tempo sub-segundo, com resolução temporal muito além dos métodos típicos bioquímicos.
Para ilustrar o método de freqüência de adesão micropipeta, mostramos a cinética de medição da molécula de adesão intercelular 1 (ICAM-1) em hemácias funcionalizados ligação a integrina β α L 2 em neutrófilos com dimérica E-selectina na solução para ativar α β L 2.
Protocol
1. RBCs isolamento do sangue total
- Prepare EAS-45 soluções. Pesar até todos os ingredientes da Tabela I e dissolver em 100-200ml de água DI. Adicionar água para fazer a solução de 1000ml e ajustar o pH para 8,0. Filtrar e alíquota, de acordo 50ml. Congelar a -20 ° C para armazenamento.
Nota: Passo 1.2 deve ser realizada por um médico treinado profissional, como enfermeira, com um Conselho de Revisão Institucional protocolo aprovado.
- Desenhe 3-5ml de sangue da veia cubital mediana em um tubo de 10 ml contendo EDTA e delicadamente misturar o sangue com EDTA imediata e cuidadosamente para evitar a coagulação.
- Processo de amostra de sangue o mais rapidamente possível. Todos os passos a seguir, exceto centrifugação deve ser feita sob o capô para manter a preparação estéril. Transferir o sangue para um tubo de centrífuga 50ml, adicione 10 ml de Histopaque frio e estéril 1077 e centrifugar por 5 min @ 1000 rpm, 4 ° C. Repita duas vezes.
- Adicionar 10ml frio e estéril PBS, centrifugue por 5min @ 1000 rpm, 4 ° C. Retire o sobrenadante. Repita 4 vezes (total de 5 vezes).
- Lavar com estéril EAS-45 (5min @ 1000 rpm, 4 ° C) duas vezes. Durante os últimos RBCs mover de lavagem para um novo tubo estéril 15ml.
- Ressuspender RBCs in10ml EAS-45.
2. Biotinilação RBCs
- Pegue o tubo com hemácias a partir do passo 1. Remover todas as sobrenadante após a centrifugação para 5min @ 1000 rpm, 4 ° C. Coloque 10μl de hemácias pellet a cada um dos vários frascos e adicionar uma quantidade correspondente de PBS a cada frasco (ver Tabela II, por exemplo, de preparação de seis diferentes concentrações de hemácias Biotinilação).
- Faça novos Biotin-X-NHS/DMF 1:10, 1:100 diluições de acordo com a Tabela II.
- Adicionar 10μl de tampão borato 0,1 M para cada frasco.
- Adicionar montante calculado de solução biotina para cada frasco (ver Tabela II como exemplo) e vortex imediatamente.
- Coloque cada frasco RBCdentro de um tubo cônico de 50ml e incubar no rotador por 30min em temperatura ambiente.
- Lave cada frasco 3 vezes com 800μl de EAS-45 para 2min @ 2000 rpm.
- Adicionar 100μl da EAS-45 para cada frasco e armazenar a 4 ° C. Em cada 1μl da solução final deve ser agora ~ 1mln de hemácias.
3. Funcionalização da biotina ligada * ligantes na RBCs
- Prepare 2mg/ml solução estreptavidina de acordo com instruções do fabricante. Aliqouted solução pode ser armazenada a -20 ° C.
- Misture uma quantidade igual de glóbulos vermelhos a partir do passo 2.7 (10μl) com estreptavidina solução, imediatamente vortex e incubar no rotador por 30min a 4 ° C.
- Lavar 3 vezes com 500μl de EAS-45 para 2min @ 2000 rpm. Adicionar 15μl EAS-45 / 1% BSA para armazenamento.
- Mix igual quantidade de glóbulos vermelhos a partir do passo 3.3 (10μl) com solução de ligante 20μg/ml, imediatamente vortex e incubar no rotador por 30min em temperatura ambiente.
- Lave duas vezes com 500μl de EAS-BSA 45 / 1% para 2min @ 2000 rpm. Adicionar 15μl de BSA EAS-45 / 1% para armazenamento.
* Se sua proteína não tem nenhuma ligação biotina você pode usar um dos kits disponíveis comercialmente para Biotinilação proteína (por exemplo, Thermo Scientific # 21955 EZ-Link Kit Micro NHS-PEG4 Biotinilação) ou usar biotinilado anticorpos captura como um passo intermediário, como mostrado no vídeo.
4. Quantificação da densidade do receptor e ligante
- Incubar ligante revestido hemácias a partir do passo 3 e, em diferentes frasco, receptor-rolamento células com concentrações de saturação de mAbs respectivos por 30min em temperatura ambiente. Incubar em celas separadas frascos com irrelevantes isotipo pareados anticorpos para o controle. Se os anticorpos primários não são etiquetadas fluorescente, fluorescente incube com anticorpos conjugados secundários de acordo com instruções do fabricante.
- Analisar amostras preparada no passo 4.1 por cytometery fluxo com correspondentes fluorescentes calbração contas. Calcular as densidades como mostrado na figura. 1.
5. Preparação para micropipeta e câmara de celular
- Puxe micropipetas de tubos capilares usando PN-30 Narishige 'Puller microeletrodos Magnetic Vidro Horizontal ou Sutter Instruments Micropipeta Puller.
- Use micromanipulador com microforge para ajustar a ponta da micropipeta puxado para o tamanho desejado (geralmente o diâmetro necessário varia de 1-5m, dependendo do tamanho das células para ser utilizada no estudo).
- Prepare a câmara de célula cortando tampa de vidro do microscópio para o tamanho desejado. Vedação da câmara utilizando óleo mineral de ambos os lados para evitar a evaporação média para mudar a osmolaridade durante o experimento.
- Adicione a células receptoras e de suporte de ligante para a câmara.
6. Micropipeta ensaio de freqüência de adesão
- Aspirar as células interagindo por pipetas respectivos e uso do computador programado piezoelectr Tradutor ic para conduzir o RBC dentro e fora de contato com a outra célula com área de contato controlado e tempo. Detectar eventos de adesão, observando alongamento RBC sobre separação de células.
- Repetir o ciclo de contato-retração 5-10 vezes para um tempo de contato fornecido. Registrar os eventos de adesão observado pela adição de "1" para a adesão ou "0" para não adesão em uma coluna de planilha Excel. Você pode usar um dispositivo de gravação, por exemplo, a mídia digital ou fita de vídeo, para as imagens microscópicas.
- Registrar a freqüência de aderência versus a curva do tempo de contato com pelo menos três pares de células diferentes para cada tempo de contato para obter uma média e SEM.
- Registro da curva de inespecífica para o controle usando hemácias revestidas com ligantes irrelevantes (por exemplo BSA) e / ou bloquear os receptores ou ligantes específicos usando seus mAbs bloqueio funcional. Freqüência de adesão específicas em cada ponto de tempo de contato pode ser calculado pela remoção da freqüência de adesão inespecífica 1.
- Fit a freqüência específica de adesão P uma relação de contato de dados em tempo t por um modelo probabilístico (Equação 1) que descreve uma segunda ordem para a frente e de primeira ordem inversa, a interação de um único passo entre uma única espécie de receptores e uma única espécie de ligantes um :
onde K a é a afinidade de ligação eficaz 2D, k off é o desconto na tarifa, m r e m l são os respectivos receptores e densidades ligante medida no passo 4, e A c é a área de contato. A curva de ajuste tem dois parâmetros, A c K a k e fora, como um C e um K são agrupados e chamados coletivamente como afinidade 2D eficaz. Seu produto com o desconto na tarifa é a taxa efetiva 2D-on: A c k = A em c K a k x off.
A freqüência específica de adesão P a é calculado pela subtração da fração de adesão inespecífica (P inespecíficos) da adesão total medidos (medidos P) 1,21:
8. Resultados representativos:
Figura 1 Determinação da integrina β 2 L α densidade site em neutrófilos. Neutrófilos foram primeiro incubadas com 1μg/ml de E-selectina-Ig de 10min para coincidir com a condição experimental utilizada nas Figuras 3,4 ou sem E-selectina-Ig, e depois com as concentrações de saturação (10μg/ml) de conjugado anti-PE -humano CD11a mAb (Clone HI111, consulte a Tabela de específicasreagentes e equipamentos) ou rato IgG1 irrelevante para controle, lavados, e analisadas imediatamente. As amostras foram lidas no citômetro de fluxo BD LSR com o padrão QuantiBRITE contas calibração PE. Um painel mostra os histogramas de fluorescência de contas de calibração (rosa), juntamente com os de E-selectina-Ig células tratadas (cor azul) ou sem tratamento (cor verde). Específicas CD11a coloração mAb é mostrado nas curvas de sólidos e coloração do anticorpo irrelevante isotipo controle pareados é mostrado nas curvas pontilhadas. Células tratadas com E-selectina-Ig (presença em todas as etapas de lavar e em tampão FACS) não afetou a densidade CD11a como pode ser visto a partir da comparação com células não tratadas. Painel B mostra o processo de quantificação de densidade. Log10 foi calculado para a intensidade média fluorescente (FI) de cada valor de pico de quatro histogramas talão de calibração a partir do Painel A (círculos cor de rosa) e para as moléculas muito específicas PE por talão (do fabricante). Uma regressão linear de moléculas Log10 PE por talão contra Log10 fluoresccia foi plotada. Por E-selectina células tratadas a Log10 FI (y) valores iguais 3,99 (círculo sólido azul) e 2.23 (círculo aberto azul) para mAb específico e anticorpo controle, respectivly. Resolvemos a equação linear de x (os valores são representados como círculos verde e azul no painel B) x = Log10 PE / célula e, como PE:. MAb proporção de 1:1, o número total de α β L 2 em neutrófilos foi calculado como 9587. Densidade de superfície foi calculada em 43 moléculas / M 2, usando 8.4μm como o diâmetro de neutrófilos 22. Densidade de ICAM-1 foi igualmente medido pelo cytometery de fluxo, utilizando-PE anti-CD54 humano mAb, que igualou 65 mol / M 2.
Figura 2 sistema de esquemas Micropipeta. Nosso sistema de micropipeta foi montado em casa e é composto por três subsistemas: um subsistema de imagem para permitir que se observe, record e analisar os movimentos da célula micropipeta de aspiração; um subsistema de micromanipulação para habilitar uma para selecionar as células da câmara de célula, e um subsistema de pressão para permitir uma para aspirar as células em micropipetas. A peça central do subsistema de imagem é invertida microscópio (Olympus IMT-2 IMT2) com um óleo de imersão 100x 1,25 NA objetivo. A imagem é enviada para um gravador de vídeo através de um dispositivo casal de carga (CCD) da câmera. Um temporizador de vídeo é acoplado ao sistema para manter a noção do tempo. Cada micropipeta pode ser manipulado por um acionamento mecânico montado no microscópio e finamente posicionado com um micromanipulador de três eixos hidráulicos. Manipuladores mecânicos de Newport poderia ser usado também. Um dos titulares micropipeta é montado em um tradutor piezoelétrico, o condutor de que é controlado por um computador LabView código (disponível a pedido) e os traduz sinal através de uma placa DAQ através de um amplificador de tensão (caseiro) para o atuador piezo. Este umllows um para mover a pipeta de forma precisa e repetidamente em um ciclo de teste de aderência. O subsistema de regulagem de pressão é usado para controle de sucção durante o experimento. A linha hidráulica conecta o titular micropipeta para um reservatório de fluido. Um posicionador fino mecânica permite que a altura do reservatório a ser manipuladas com precisão.
Micropipetas são gerados usando a fusão KIMAX ponto de tubos de vidro borossilicato capilar (com diâmetro externo de 1,0 ± 0,07 mm e um diâmetro interno de 0,7 ± 0,07 mm. Primeiro, o micropipetas de tubos capilares são puxados usando PN-30 Narishige 'Puller microeletrodos Magnetic Vidro Horizontal (Sutter Instruments Micropipeta Puller é outra opção extrator). Em segundo lugar, o sistema Microforge (construído em casa) é usado para cortar o micropipetas para a abertura tamanho desejado. Commercial modelos de sistemas de Microforge também estão disponíveis.
Para evitar a vibração do micropipetas durante o experimento, o Microscope, juntamente com o micromanipuladores, é colocado em uma mesa de suspensão a ar.
Figura 3 Executando F freqüência de adesão específica para i (A) e inespecíficos (B) ligação em 1s (vermelho) e 10s vezes (azul) de contato medido a partir de ciclos repetidos de adesão de teste entre hemácias revestidas com ICAM-1 (A) ou hIgG (B ) com neutrófilos humanos expressando integrina α β L 2. F i = (X 1 + X 2 + ... + X i) / i (1 ≤ i ≤ n), onde i é o índice de ciclo de teste, X i é igual a "1" (aderência) ou "0" (sem adesão). F n (n = 50) foi usado como a melhor estimativa para a probabilidade de adesão.
Figura 4 Cinética deICAM-1 vinculativo para neutrófilos integrina β L α 2 ( 
). Probabilidade de adesão, como indicado na Figura 3 para três pares de células em cada tempo de contato é média e plotados versus tempo de contato. O meio de câmara foi HBSS com 1mm de cada um de Ca 2 + e Mg 2 +, mais 1μg/ml dimérica de E-selectina-Ig para upregulate α β L 2 vinculativo. Para capturar ICAM-1-Ig de hemácias, uma etapa intermediária foi adicionado para incubar hemácias com anticorpos de captura de 10μg/ml (biotinilado de cabra anti-anticorpo humano Fc, eBioscience) após a etapa de incubação estreptavidina. Para controlar inespecífica duas condições diferentes foram utilizados: 1) hemácias revestidas com o anticorpo de captura anti-humano Fc e incubadas com IgG humana em vez de ICAM-1-Ig (O) e 2) neutrófilos ligação a eritrócitos não revestidos com o captura de anticorpos (Δ). 10μg/ml IgG humana foi adicionadas ao meio de minimizar ligação de E-Selectina-Ig em solução para o anticorpo de captura na superfície RBC. Ligação não específica registrada como curva de controle humano IgG foi utilizado para obter uma curva de probabilidade específica de adesão ( 
) Usando a equação. 2. Curva de probabilidade de montagem específicas de adesão com a Eq.. 1 (linha contínua) retornou afinidade de ligação eficaz A K c a = 1,4 • 10 -4 e μm4 k off = 0,3 s -1.
| Reagente | MW (g / mol) | Concentração (mM) | Quantidade (g) |
|---|---|---|---|
| Adenina | 135,13 | 2 | 0,27 |
| D-glicose (dextrose) | 180,16 | 110 | 19,82 |
| D-Manitol | 182,17 | 55 | 10,02 |
| Cloreto de sódio (NaCl) | 58,44 | 50 | 2,92 |
| Fosfato de sódio dibásico (Na HPO ) | 141,95 | 20 | 2,84 |
| L-glutamina | 146,15 | 10 | 1,46 |
Preparação tabela 1. EAS-45 buffer (1L).
| 25 mg biotina-XHS em 550 mL de DMF | 0,1 M solução de biotina |
| Diluição de 1:10 de 0,1 biotina w / DMF | 0,01 M solução de biotina |
| Diluição 1:100 de 0,1 biotina w / DMF | 0,001 m solução de biotina |
Tabela 2. Preparação da solução de biotina.
| biotina concentração final (M) | 4 | 10 | 20 | 50 | 100 | 160 |
|---|---|---|---|---|---|---|
| RBCs pellet de ações (mL) | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 |
| 1x PBS (mL) | 179,2 | 178 | 176 | 179 | 178 | 176,8 |
| 0,1 M de borato tampão (mL) | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 | 10 |
| 0,01 M biotina solução (mL) | 1 | 2 | 3,2 | |||
| 0,001 m biotina solução (mL) | 0,8 | 2 | 4 |
Tabela 3. Biotinilação de hemácias.
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Discussion
Para usar com sucesso o ensaio de micropipeta freqüência de adesão deve-se considerar várias etapas críticas. Primeiro, certifique-se de registrar a interação específica para o sistema de receptor-ligante de interesse. Medidas de controle não-específica (cf. fig. 3, 4) garantir a especificidade. Idealmente, as probabilidades de adesão não específica deve ser inferior a 0,05 para todas as durações de tempo de contato e ter uma diferença significativa entre as probabilidades de adesão específicas e não específicas para cada ponto de tempo. Diferentes métodos podem ser utilizados para o casal ligantes à superfície hemácias. Foi mostrado que o cloreto de cromo método de acoplamento 17 deu um maior nível de ligação não específica do que a biotina-estreptavidina acoplamento.
Segundo, uma probabilidade de adesão para a interação específica deve ser na faixa intermediária. Esta obrigação pode ser cumprida através da variação da densidade de receptores e ligantes (ou ligantes apenas em glóbulos vermelhos se receptores são constitutivamente expressa em célulass a densidade de que é difícil mudar). Para esse fim, ao testar um novo sistema com afinidade receptor-ligante de ligação desconhecida, prepare uma gama de hemácias biotinilado (ver Tabela III, por exemplo) para testar uma variedade de densidades ligante. A probabilidade de adesão steady-state não deve ser superior a 0,8, em média, como célula-célula variação de densidade do receptor geralmente traz o nível de adesão de algumas células a 1 se a densidade média de ligante é muito alto. Durante os testes iniciais para a especificidade, se algumas células têm níveis de adesão de 0 ou 1, a densidade de ligante precisa ser ajustado. Medidas de controle inespecífico geralmente seguem as medidas específicas e aqui gostaria de ter probabilidade de adesão o mais próximo possível de zero.
Em terceiro lugar, encontrar o intervalo correto para os tempos de contato. Se o tempo de contato é o suficiente o exp (- k off t) termo na equação. Um vai para zero ea afinidade efetiva 2D pode ser calculado a partir do nível planaltoda curva de aderência 1: 
O k off-off taxa determina a fase de transição ou a rapidez com que a curva de aderência chega a um nível de patamar. Para estimar a taxa de off-precisão exige medições de vários pontos em um nível planalto, bem como pontos bastante tempo na fase de transição. Contabilidade para as três etapas críticas descritas acima obterá uma curva semelhante à figura de ligação. 4.
A tarefa restante é usar um receptor-ligante modelo de cinética de ligação para interpretar a curva experimental medida obrigatória e para estimar os parâmetros cinéticos de 2D a partir da instalação do modelo de previsão para os dados. Note-se que a Eq.. 1 representa um modelo mais simples de segunda ordem para a frente, de primeira ordem inversa, única etapa, cinética reversível entre um único receptor-ligante espécies 1. Mais complexos processos cinéticos têm sido descritos, incluindo ªe casos de dupla receptor-ligante espécies 3,4, em duas etapas obrigatórias, sem 14 ou com 19 interações trimolecular, e cinética de adesão limitada pela formação de sítio ativo em vez de vínculo cinética 10. Nestes casos, mais envolvidos modelos matemáticos são necessários para relacionar a probabilidade de aderência versus curva de tempo de contato ea cinética receptor-ligante de ligação.
O interesse contínuo na cinética de interação receptor-ligante decorre da hipótese fundamental que os parâmetros de cinética de desempenhar um papel na determinação dos eventos a jusante de sinalização dentro da célula. A micropipeta ensaio de freqüência de adesão apresentado aqui é um dos muito poucos métodos que permitem medições in situ das duas dimensões (2D) cinética de ligação. Bidimensional significa que ambos os receptores e ligantes estão na superfície das células, como ocorre naturalmente em muitas interações célula-célula dentro do organismo. O 2D cinética constantes de velocidade de receptor de lig-e vinculativa fornecer informações para a rapidez com que as células se ligam uns aos outros ou à matriz extracelular, quanto tempo permanecem vinculados, e quantos títulos irá se formar. Em comparação, na ressonância de plasmons de superfície método (SPR) 23 uma das moléculas interagindo está em fase de fluido, por isso chamado tridimensional (3D) de ligação. Porque ambas as moléculas interagem são purificadas e isoladas do ambiente celular, os parâmetros cinéticos obtidos na medição 3D poderia ser drasticamente diferentes daqueles obtidos nas medições 2D mesmo para o par receptor-ligante mesmo 17.
O método de freqüência de adesão análises cinética 2D vivendo membrana celular e, portanto, oferece uma oportunidade para que se analise os regulamentos biofísicos e bioquímicos do ambiente celular. Estes incluem a membrana microtopology 5, membrana âncora 2, orientação molecular e comprimento de 6, 9 e rigidez transportadora curvatura 20, a força de impacto 20, e moduladores do citoesqueleto e da organização da membrana onde as moléculas interagem residem 15,17.
Porque cross-juncional interação receptor-ligante requer contato físico direto entre duas células e resulta em ligação física entre duas células, a cinética de reação química de interação molecular pode ser analisado por um ensaio mecânico que coloca as células em contato e detecta ligação pelo efeito da força. Apesar de termos exemplificado o teste de aderência de freqüência usando um RBC micropipeta aspirado como um sensor de adesão, as técnicas de outra força pode ser usada, incluindo microscopia de força atômica 24, a força biomembrana sonda 8,17, 25 pinças ópticas, ea micropipeta integrada e cantilever 26.
Outros mecanicamente baseado ensaios 2D têm sido desenvolvidos. Estes incluem o ensaio de flutuação térmica 8, centrifugação do ensaio 27,28, rosetting ensaio de 29, e ensaio de câmara de fluxo 30,31.
A limitação do ensaio de freqüência de adesão é a natureza lento e trabalhoso do ensaio devido aos ciclos repetidos de série com um único par de células testado um contato de cada vez. Torna-se difícil para o receptor-ligante interações com off-lenta taxas porque os tempos de contato longa seria necessário para a curva de ligação a atingir o estado estacionário, tornando a experiência inhibitively longo.
O transdutor de força construída por uma micropipeta RBC aspirado é capaz de detectar piconewton nível de forças, que é uma ordem de magnitude menor do que a força típica de uma ligação receptor-ligante noncovalent 1,32. No entanto, receptor-ligante dissociação pode ocorrer mesmo em zero forças. Qualquer adesão fraca que vai leva detectado a uma subestimação da afinidade de ligação e on-taxa de 1.
TEle método de freqüência de adesão pressupõe que cada teste de adesão é idêntica e independente dos outros. Esta exigência pode ser violada como foi mostrado para alguns sistemas de 33, onde a adesão atual aumentado ou diminuído a probabilidade de a adesão seguinte. O código Matlab para verificar se a exigência for atendida para a seqüência gravada de eventos de adesão está disponível mediante solicitação.
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Disclosures
Não há conflitos de interesse declarados.
Acknowledgments
Este estudo foi financiado pelo NIH concede R01HL091020, R01HL093723, R01AI077343 e R01GM096187.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10x PBS | BioWhittaker | 17-517Q |
Dilute to 1x with deionized water prior to use |
| Vacutainer EDTA | BD Biosciences | 366643 | RBCs isolation |
| 10ML PK100 | |||
| Histopaque 1077 | Sigma-Aldrich | 10771 | RBCs isolation |
| Adenine | Sigma-Aldrich | A2786 | EAS-45 preparation |
| D-glucose (dextrose) | Sigma-Aldrich | G7528 | EAS-45 preparation |
| D-Mannitol | Sigma-Aldrich | 6360 | EAS-45 preparation |
| Sodium Chloride (NaCl) | Sigma-Aldrich | S7653 | EAS-45 preparation |
| Sodium Phosphate, Dibasic (Na₂HPO₄) | Fisher Scientific | S374 | EAS-45 preparation |
| L-glutamine | Sigma-Aldrich | G5763 | EAS-45 preparation |
| Biotin-X-NHS | Calbiochem | 203188 | RBCs biotinylation |
| Dimethylformamide (DMF) | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 20673 | RBCs biotinylation |
| Borate Buffer (0.1M) | Electron Microscopy Sciences | 11455-90 | RBCs biotinylation |
| Streptavidin | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 21125 | Ligand functionalizing |
| BSA | Sigma-Aldrich | A0336 | Ligand functionalizing |
| Quantibrite PE Beads | BD Biosciences | 340495 | Density quantification |
| Flow cytometer | BD Biosciences | BD LSR II |
Density quantification |
Capillary Tube 0.7-1.0mm x 30" |
Kimble Chase | 46485-1 | Micropipette pulling |
| Mineral Oil | Fisher Scientific | BP2629-1 | Chamber assembly |
| Microscope Cover Glass | Fisher Scientific | 12-544-G | Chamber assembly |
PE α-human CD11a Clone HI 111 |
eBioscience | 12-0119-71 | Reagent for Fig.1 |
| PE anti-human CD54 | eBioscience | 12-0549 | Reagent for Fig.1 |
| Mouse IgG1 Isotype Control PE | eBioscience | 12-4714 | Reagent for Fig.1 |
| hydraulic micromanipulator | Narishige International | MO-303 | Micropipette system |
| Mechanical manipulator | Newport Corp. | 461-xyz-m, SM-13, DM-13 | Micropipette system |
| piez–lectric translator | Physik Instruments | P-840 | Micropipette system |
| LabVIEW | National Instruments | Version 8.6 | Micropipette system |
| DAQ board | National Instruments | USB-6008 | Micropipette system |
| Optical table | Kinetic Systems | 5200 Series | Micropipette system |
References
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