Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Neuroscience

Bir Fare Modelinde İntravenöz Öz Yönetim Yöntemleri

Published: December 8, 2012 doi: 10.3791/3739

Summary

Intravenöz kendinden-yönetim (IVSA) paradigma kemirgenlerde kötüye ilaçların takviye özelliklerini incelerken altın standart olarak kabul edilir. Bu yazıda güvenilir IVSA verilerini elde etmek için gerekli deney prosedürleri ve cerrahi teknikler özetliyor. Özellikle, titiz kateter implantasyonu ve bakım vurgulanır.

Abstract

Hayvan modelleri intravenöz kendinden-yönetim (IVSA) paradigma dahil ilaçların takviye etkileri incelemek için geliştirilmiştir. Kokain gibi kötüye ilaçların takviye özelliklerini incelemek için bir IVSA paradigma kullanmanın avantajları ilacın yerine öz-yönetilen deneyci-yönetilen, takviye programı değiştirilebilir olduğu gerçeği, ve miktarlarının hassas bir şekilde ölçebilecek ilaç olarak tüketilen zamanlama ve IV enjeksiyon kalıbı elde edilebilir. Ayrıca, idarenin intravenöz ilk geçiş metabolizması veya tat ile ilgili potansiyel karıştırıcıların önler, kan ve beyin ilaç düzeyleri hızlı artışlar üretir. Bu video özetlendiği gibi, intravenöz öz-yönetim yıkama ve bakım cerrahi ve titiz günlük kateter sırasında dikkatli kateter yerleştirilmesini takiben önceden yiyecek kısıtlaması veya önceden ilaç eğitim olmadan elde edilebilir. Bu belirtilen deneysel prosedürlerkağıt bir hayvan barınağı tanımı ve alıştırma yöntemleri, şekerli süt çözümlerini kullanarak edimsel eğitim ve kateter implantasyonu içerir.

Protocol

1. Hayvan Konut ve Alışma Prosedürleri

  1. Erkek ve dişi CD-1 fare su şişeleri ve gıda karşılamak için tel ızgara kapaklı beta çipine yatak ve nestlet yastıkları, içeren standart plastik kafeslerde eşcinsel littermates, kafes başına en fazla 5 hayvan ile yerleştirilmiştir. Standart fare yemi ve su deney boyunca ev kafeslerine mevcut ad libitum bulunmaktadır.
  2. Fare bir ters ışık-karanlık zamanlama (22:00 10:00 'ışıkları) tutulur.
  3. Fare deneysel prosedür başlamadan önce bir hafta boyunca IVSA test odaları iklime alıştırmak için izin verilir.

2. Edimsel Eğitim

  1. Şekerli süt eğitim ve intravenöz ilaç öz-yönetim oturumu dahil tüm davranışçı tedaviler 2 ultra-hassas fare kolları, diper bardak, uyarıcı ışıklar ve mikrolitre şırınga pompaları (Med Association ile donatılmış 15,9 x 14 x 12,7 cm, ölçüm edimsel odaları kullanılarak yapılmaktadırates Inc, St Albans, VT, ABD). Chambers donatı planı programlamak ve veri toplamak için Med Associates Akıllı CR arayüzü ve Med-PC yazılımı kullanılarak bir bilgisayara bağlanabilirler.
  2. Naïve fareler edimsel odalarına alışan ve diper fincan sunulan bir şekerli süt ödül (0,1 ml) kullanarak kolu basın için eğitilmiştir. Operant süt eğitim 5-7 gün boyunca 1 saatlik seans yapılır. Etkin kolu üzerinde sabit bir oranı (FR) programının tamamlanması dipper fincan ve bir uyarıcı ışık aydınlatma tanıtımı sonuçlandı. Şekerli süt çözeltisi sütler (3,25% yağ içeriği) eklenen sakaroz (10 mg / ml, ACS Reaktif, Sigma-Aldrich Inc St-Louis MO, USA) oluşuyordu. Şekerli bir çözelti süt ya da bir sıvı besin güçlendiricidir ile operant eğitim operant fareler 1,2 yanıt kolaylaştırmak için kullanılan yaygın bir tekniktir.

3. Cerrahi Sırasında Kullanılacak Ekipman hazırlanması

RequIRED ekipmanları - 20, 23 ve 26 gauge iğne, taşlama, 1 cc şırınga, Tygon tüp, havya, heparin, antibiyotikler ve analjezik.

  1. 20 gauge iğne aşağı tıraş tarafından juguler vene kateter yerleştirilmesi yönlendirecek bir iğne hazırlayın. Iğne mili vene kateter tüp rehberlik iğne içinde bir kanal oluşturmak için bir değirmeni kullanarak aşağı traş edilir. İğne kanalı dikkatle tevdi edilmiş herhangi bir metal artıkları kontrol edilmelidir. Kanal için herhangi bir engel ince uçlu forseps kullanılarak kazınıp atılmalı.
  2. Yıkama ve kateter kontrol edilmesi için kullanılmak üzere iki adet 1 cc şırınga uyarlamak. Tygon boru 12 cm parça alarak ve 1 cc şırınga yapıştırılmış 26 gauge iğne ile bir ucunda onları takın ve 23 gauge iğne üzerinde hortumun diğer uçları germe tarafından iki şırınga hazırlayın. Bir şırınga bir heparinize tikarsilin çözeltisi (tikarsilin 33 mg ile% 0.9 steril tuzlu su ve diğer doldurulmalıdırve steril salin 10 ml heparin başına 0.3 mg).
  3. Kateter kanül kapaklar hazırlayın. Tygon tüp bir 23 gauge iğne gerilir ve konik 1 cm kesilir. Kalın bir mühür oluşturmak için boru parçasının açık olan ucundan eritin. Hortum tüm kanül kapak kanül ucuna sıkıca kapalı ucu geçme ile, kateter kanül üzerine uyacak şekilde yeterince uzun olacak şekilde eritilir olmalıdır. Kapağı çok uzun ise, o vidalı kateter kapsar bağlama işlemi sırasında eğildi ve sonradan delinmiş olacak bir risk olduğunu unutmayın. Böylece kateter kapaklar dikkatli bir hazırlık kanül ile iyi bir uyum sağlamak için, tavsiye edilmektedir.
  4. Gerekli çözümleri hazırlayın. Tüm reaktifler Sigma-Aldrich Inc (St-Louis MO, ABD) satın alınır.
    1. Kateter yıkama için Heparinize tikarsilin çözüm - 0.33 g tikarsilin (disodyum tuzu) ve steril serum fizyolojik 10 ml heparin 0.003 gr çözülür. Çözeltisi 0.03 mL thr temizlendiGünlük ough kateter. Antibiyotik çözüm geliştirme kan pıhtıları ve enfeksiyonları önlemek için uygulanır.
    2. Deri altı enjeksiyon için Amikicin (antibiyotik) - A tek bir subkutan enjeksiyon, 10 mg / post-operatif enfeksiyonları önlemek için kg 'lik bir dozda ameliyatı takiben verilir.
    3. Deri altı enjeksiyon için ketoprofen (analjezik) - A tek bir subkutan enjeksiyon 5 mg / herhangi ameliyat sonrası ağrı yönetimi kg 'lik bir dozda ameliyatı takiben verilir.

4. Kateter İmplantasyon Cerrahi

Gerekli ekipman ve reaktifler: İzofluran, steril salin, alkol (% 70), 1 ve 3 cc şırınga steril salin, 1-cc adapte şırıngalar, Yukarıdaki bölümde 3, fare kateterler (CamCaths, Cambridgeshire, UK hazırlanan antibiyotik ve analjezik çözümleri ile dolu ), kateter kapakları (HRS Bilimsel, Montreal, Quebec kristal kapaklar), göz yağlayıcı, (bu damar yükseltmesine 4 cm plastik çubukplastik bir Q-ucu), polysporin, steril pamuklu çubuklar ve gazlı bez, kavisli ve düz forseps, arter kelepçeler, ince makas inşa edilebilir.

Adım 1

  1. Standart aseptik teknikler cerrahi tezgah, cerrahi aletler ve kateterlerin kullanılması ameliyat öncesinde sterilize edilir. Uygun sterilizasyon teknikleri CamCaths satın cerrahi aletler ve kateterler için otoklav buhar içerir. Cam boncuk sterilizasyon ayrıca cerrahi aletlerin uçları kullanılabilir. Etilen oksit sterilizasyon riski erime olduğunu daha hassas kateterler veya malzemeler üzerinde istihdam edilebilir. Kemirgen cerrahi aseptik teknikler daha ayrıntılı bir açıklaması ilişikteki referanslar 1,2 bulunabilir. Tezgah kurma, cihazlar ve bakım anestezi için burun konisi fotoğrafı gösterilmiştir.
  2. Fare izofluran gaz anestezisi, ve bir atma sistemi altında bir solunum tüpü kullanılarak anestezi altında yapılmaktadır. Göz yağlayıcı (Tears Naturale PM) işlem sırasında kurumasını önlemek için her iki göze uygulanır. Uygun cerrahi sınır hayvanın sırtına ve boynuna traş edilir. Herhangi kesiler yapılır önce, cerrahi alanları steril örtüler kullanarak sınırlıdır.
  3. Kalbin sağ atriyum içine yerleştirilmesi için kateter hazırlamak için, fazlalık kateter tüp, kateter bir ampul itibaren 1,2 cm kesilir. Bu yetişkin CD-1 farelerde, yaş yaklaşık 8 hafta, 20-25 gram vücut ağırlığı için kurulan uygun uzunluğudur. Kateter tüp uzunluğu fare suşu, büyüklüğü ve yaşına göre, (deneme ve yanılma ile) hafifçe ayarlanması gerekebilir. Yerleştirilmeden önce, steril tuzlu su içeren şırınga (bölüm 3.2) kateter kanül takılır ve kateter temizlendi ve kaçakları kontrol. TutmakBu şırınganın cerrahi prosedür boyunca kateter bağlı. Bu kateter yıkayın ve adım 4.7 kan geri çekmek için kullanılacaktır.
  4. 2 cm uzunluğunda midscapular kesi arka ortasında başlayan ve kateter tabanına karşılamak amacıyla ensenin hemen altında biten yapılmış,% 70 alkol ile sterilizasyon olduğunu ardından. Bağ dokusu, deri altı kateter tabanı için yer açmak için forseps ile ayrı zorunlu olmalıdır.
  5. Alanı% 70 alkol ile temizlenmesi sonra 2 cm çapraz kesi, hayvanların çene yukarı doğru gidiyor, sağ klavikulanın yapılır - ikinci bir sığ 1, sırtında hayvan yerleştirme. Juguler ven boyun deri altında yüzeysel bulunacaktır. Kateter hazırlıklarında, kateter tabanından boru arka kesiden çekilir ve sadece sağ omuz üzerinden deri altına tüp geçirerek yakın şahdamarından getirdi. Kateter tüpünün sonudursonra bir arter kelepçe takılı ve onu yerde tutmak için hayvanın yan yerleştirildi.
  6. Sağ juguler ven hafifçe hayvanın boynuna kesiden yüzeysel bağ ve yağ dokusu uzaklaşıyor tarafından bulunur. Ven çevresinde bağ dokusu kavisli bir forseps kullanarak ayrı kırık ve ven daha sonra steril bir plastik çubuk kullanarak yükselir. Gevşek açık sütür venin her iki ucu etrafında yapılır ve kateter tüp tepe püskülü aracılığıyla dişli ve sağ omuz üzerinden çözülür dinlenmek için dikiş ipliğinin üzerinde döngü gerçekleştirilir.
  7. Önce ekleme için, ıslak sürtünmeyi azaltmak için steril serum fizyolojik ile 20 gauge ekleme iğne ve ven hem de. İğne damarına paralel olarak düzenlenen ve yükseltilmiş ven (Not: iğne ucu yaklaşık 0,5 cm ven girmesi gerekir) altına yakın yavaşça eklenir. Forseps kullanarak, ven içine iğne mili aşağı kateter tüp kaydırın. Direnç bu boru i işaret ederbağ dokusu içinde değil ven içinde s. Hiçbir sızıntı olmadığından emin olmak için damar yoluyla tuzlu 0.03 cc itin. Kaçaklar ven deldi veya kateter tüp yerleştirme ayarlanması gerektiğini olabileceğini işaret eder.
    Not: Hortumun ven içinde olup olmadığını kontrol etmek için, ekteki salin şırınga kullanarak bazı kan çekmeyi deneyecek. Kan hemen çizilebilir yapamıyorsanız, ven veya kalp duvarının kateterin ucu tıkanıklığını gidermeye olabilir veya ven deldi olmamıştır; tüp ayarlayın ve tekrar deneyin. Kan hala çizilmiş olamaz eğer İğne reinsertion gerekli olabilir.
  8. Yerinde kateter sabitlemek için, ekleme noktası için kateter ampul itmek ve iğne çıkarılır. Alt düğüm ve daha sonra ampul Yukarıdaki ikinci düğüm sağ ipe önce bar karşı kateter sifonu çekerim. Kan çizilebilir görmek ve gerekirse biraz eğer knot gevşetmek için tekrar sınayın. Deri ve dikiş altında kateter tüp sıkıştırınhayvanın boynuna ventral kesi. Steril pamuk uçlu bir aplikatör veya tercihen kapalı kesi bazı analjezik içeren diğer antibiyotikli merhem kullanarak Hızlı Heal Polysporin uygulayın.
  9. Onun karın hayvan ile hazırlanan kesi içinde arka deri altında kateter tabanı yerleştirin. Aşırı boru minimal ilmekledi ve iyi çiğneme ve piercing hayvanın şansını en aza indirmek için kateter tabanı altında gizli olduğundan emin olun. Kateter baz her iki kesik dikiş, ve steril bir pamuk uçlu bir aplikatör kullanılarak Polysporin Heal hızlı uygulanır.
  10. Yapıştırılmış boru (bölüm 3.2) ile şırınga kullanarak heparinize tikarsilin çözüm 0,03 cc ile kateter yıkayın. Beyaz kateter kapağı üzerindeki plastik kanül kapağı ve vida ile kanül kapak takın. Kanül şapkalı önce ameliyat taze bazı farelerde kan kateter dışarı sızabilir. Bu re-floş hayvan ve rapidl önemlidirKan akmaya şansı bulamadan y kanülün kapağını değiştirin. Hayvanlar kateter açıklığını korumak için günlük olarak yıkanması gerekir.
  11. % 70 etanol ile hayvanlara arka bacakları arasından enjeksiyon alan aşağı silme sonra, deri altından bir tarafında 5 mg / kg 'lık bir dozda enjekte analjezik ketoprofen, ve diğer yan üzerinde 10 mg / kg' lik bir dozda antibiyotik amikicin.
  12. Anestezi kesilir sonra, hayvanlar 5 ila 7 gün boyunca yiyecek ve su kolay erişim ile temiz bir kafes içinde kurtarmak için izin verilir. Fare post-operatif hipotermi önlemek için bir gecede bir ısıtmalı kabin konulmalıdır.

Adım 2

5. Davranışsal test - Öz-Yönetim İntravenöz

  1. Davranış testi kateterler öncesinde% 0.9 steril serum fizyolojik ile temizlendi. Fare ardından yerleştirmek edilird operant odalarında ve infüzyon hattı ve infüzyon pompası bağlanır. Aktif Kolu pres uyarıcı ışık aydınlatması ile birleştiğinde bir 3.2 sn 18 ul ilaç infüzyonu ile sonuçlanabilir. Her kolu basın uyarıcı ışığı açık kalır dönem sırasında üzerinden 8 sn süre ile takip edilir.
  2. Edimsel oturumun ardından, farelerin kateterler evlerine kafes iade edilmeden önce heparinli tikarsilin çözeltisi ile temizlendi.
  3. Fareler her dozda 3 ardışık 2-hr oturumları için kendini yönetmek için izin verilir. Aşağıdaki bölümde gösterildiği gibi Dozlar her fare için rastgele sırayla sunuldu.
  4. Kateter açıklığı tuzlu ve antibiyotik solüsyon hem kateter ile yıkanabilir sağlayarak günlük değerlendirilir. Ekli referans 5 içinde tarif edildiği gibi Buna ek olarak, midazolam / ketamin deney yapılır. Kısaca, bu tür 0,02-0,03 ml ketamin (15 mg / ml) bir infüzyon 5 saniye içinde hareketsizlik gibi anestezi belirtileriveya midazolam (0.75 mg / ml) midazolam patent kateter 5 kanıtıdır.

Representative Results

Şekil 1
Şekil 1. İntravenöz ilaç öz-yönetim için yanıt paterni kullanılan ilaç, doz aralığı ve fare zorlanma göre değişir. Sunulan rakam video açıklanan yordamı kullanarak başarılı kateterizasyon operasyonlar sonrasında kokain öz-yönetim verileri gösterir. Şekil kokain infüzyon takviye bir FR1 zamanlamaya göre rastgele sırayla sunulan 4 kokain doz aralığında (mg / kg vücut ağırlığı) kazandı ve ortalama (± SEM) kokain tüketimi (± SEM) anlamına gösterir. Abscissa: infüzyon başına kendi kontrolünde ilaç dozu. Sol Ordinat: infüzyonlarının toplam sayısı 2-hr edimsel oturumu sırasında kazandı. Sağ Ordinat: 2-hr test oturumu sırasında mg / kg toplam kokain alımı. Tüm 13 kateterler çalışma süresi (4 hafta) patent kalmıştır. Doz konusunda yapılan tek yönlü ANOVA ortaya koyduğu mikrofonE [F (1,12) = 42.8, p <0.05]. doza bağımlı bir şekilde kokain idare edildi Doz-yanıt eğrisi [F (3,36) = 29.6, p <0.05] daha yüksek dozlarda basarak kolu bir düşüşe rağmen fazla kokain tüketiminin bir artış vardır. Her veri noktası CD-1 fare (kombine n = 13 / doz, erkek ve kadın) toplanan her kokain dozu (± SEM) az 3 test seans ortalama temsil eder. Doz yanıt eğrisi boyunca yanıt aktif (ilaç takviyeli) vs inaktif kolu Karşılaştırmalar bu fareler iki kolu arasında ayrımcılık vardı sağlamak için iki yönlü ANOVA kullanılarak yapılmıştır. CD1 fareler için analiz aktif kolu için bir tercih [F (1,12) = 10.255, p <0.05] tam doz-tepki eğrisi (veriler burada gösterilmemiştir) üzerinde mevcuttu.

Discussion

Uyuşturucu hayvan modelleri uyuşturucuyla ilgili davranışların genetik temelini anlamada yararlıdır. Örneğin, farklı genetik profilleri ile farelerin kokain 6-8 duyarlılıkları farklılıklar kalıtsaldır ve identify potansiyel gen adaylar fenotipik değişkenlik 9 gözlenen arabuluculuk yardımı göster. Bu yazıda anlatılan intravenöz kateterizasyon girişimlerinde farelerin yanı sıra farklı genetik geçmişleri 10 farelerde çeşitli suşları ilaç IVSA incelemek için hatırı sayılır bir başarı ile kullanılmaktadır.

Bu videoda gösterilen işlemler sırasında odaklanmak önemli faktörler vurgulamak ve güvenilir intravenöz kendinden-yönetim veri elde etmek amacıyla kateterizasyon cerrahi sonrası. İlk olarak, sağ atriyum içinde kateter tüp yerleştirme blot pıhtı ikinci kateter yetersizliği önlemek için son derece önemlidir. Ameliyat sırasında emin olmak için önemli olduğu katetersonunda engelsiz ve kalp veya damar dokusu da tıkanmasıyla değildir. İkinci olarak, her gün sonda yıkama tıkanıklıkları önlemek için operant seans önce hem de sonra gereklidir. Son olarak, kateter kanül enkaz girişini önlemek için, hayvanlar kafeslerine zaman kanül kapaklar ve kristal hem kapaklar sürekli örtülmelidir. Kateter kanül Minör tıkanması, özellikle hayvanlar IVSA için test edilmemiştir günlerde, heparinize antibiyotik solüsyon gerekli olan ancak günlük yıkama, ince bir 26 gauge iğne kullanılarak yerinden olabilir.

Hayvan sağkalım cerrahi, aseptik tekniklerin iyi bir bilgi gerçekleştirmek için, analjezi ve anestezi gereklidir. Bu videoyu uygun bir cerrahi eğitimi yerine geçmez iken, bu paradigma için gerekli teknikleri edinmek isteyen araştırmacılar için bir kılavuz olarak kullanılabilir.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgments

Deney hayvanları üzerinde yapılan Hayvan Bakım ve McGill Üniversitesi Hayvan Bakım Komitesi Kanada Konseyi tarafından belirlenen kurallara ve yönetmeliklere uygun olarak yapıldı. Bu araştırma Sağlık Araştırması (CIHR) ve Kanada Enstitüsü'nün KG verilen fonları tarafından desteklenmiştir. Çıkar çatışması ilan etti.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ticarcillin Disodium Salt Sigma-Aldrich T5639-1G 1 gram bottle
Tears Naturale P.M (Eye lubricant) Alcon N/A 3.5 gram tube
This eye lubricant can be found in most pharmacies. Any ophthalmic eye lubricant can be used.
Cocaine Medisca Pharmaceutique 0723-06 1 gram bottle
Ketamine Medisca Pharmaceutique 1754-04 25 gram bottle
Midazolam Medisca Pharmaceutique 2519-06 1 gram bottle
Heparin sodium salt Sigma-Aldrich H4784-250MG 250 gram bottle
Ketoprofen Sigma-Aldrich K1751-1G 1 gram bottle
Amikicin Sulphate salt Sigma-Aldrich A2324-5G 5 gram bottle
Sucrose ACS Reagent Sigma-Aldrich S5016-500G 500 gram bottle
Standard mouse catheters with soft mesh CamCaths MIVSA/20/26/BC-1S Tubing specifications: 26SWG;0.451;0.254
Crystal cap applicator HRS Scientific 313CAC This is the white catheter cap.
Tygon Micro Bore Tubing Thomas Scientific 9561S41 Tubing specifications (bore x o.d. x wall thickness in inches): .01 x .03 x .01

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rocha, B. A., Ator, R., Emmett-Oglesby, M. W., Hen, R. Intravenous Cocaine Self-Administration in Mice Lacking 5-HT1B Receptors. Pharmacology Biochemistry and Behavior. 57 (3), 407-412 (1997).
  2. Zapata, A., Chefer, V. I., Ator, R., Shippenberg, T. S., Rocha, B. A. Behavioural sensitization and enhanced dopamine response in the nucleus accumbens after intravenous cocaine self-administration in mice. European Journal of Neuroscience. 17 (3), 590-596 (2003).
  3. Pritchett-Corning, K. R., Mulder, G. B., Luo, Y., White, W. J. Principles of Rodent Surgery for the New Surgeon. J. Vis. Exp. (47), e2586 (2011).
  4. Hoogstraten-Miller, S. L., Brown, P. A. Techniques in Aseptic Rodent Surgery Current Protocols in Immunology. , John Wiley & Sons, Inc. 1.12-1.14 (2001).
  5. Thomsen, M., Caine, S. B. Chronic Intravenous Drug Self-Administration in Rats and Mice. Current Protocols in Neuroscience. . 9, 20.1-20.40 (2005).
  6. Gill, K. J., Boyle, A. E. Confirmation of quantitative trait loci for cocaine induced activation in the AcB/BcA series of recombinant congenic strains. Pharmacogenetics. 13, 329-338 (2003).
  7. Gill, K. J., Boyle, A. E. Genetic influences on drug-induced psychomotor activation in mice. Genes, Brain & Behavior. 7, 859-868 (2008).
  8. Boyle, A. E., Gill, K. Sensitivity of AXB/BXA recombinant inbred lines of mice to the locomotor activating effects of cocaine: A QTL analysis. Pharmacogenetics. 11 (3), 255-264 (2001).
  9. Boyle, A. E., Gill, K. J. A verification of previously identified QTLs for cocaine-induced activation using a panel of B6.A chromosome substitution strains (CSS) and A/JxC57Bl/6J F2 mice. Psychopharmacology. 207 (2), 325-3234 (2009).
  10. Thomsen, M., Caine, S. B. Psychomotor stimulant effects of cocaine in rats and 15 mouse strains. Experimental and Clinical Psychopharmacology. 19 (5), 321-341 (2011).
  11. Thomsen, M., Caine, S. B. Intravenous drug self-administration in mice: practical considerations. Behavior genetics. 37 (1), 101-118 (2007).

Tags

Tıp Sayı 70 Nörobilim Farmakoloji Davranış Anatomi Fizyoloji Genel Cerrahi İntravenöz öz-yönetim IVSA kateterizasyon kateter uyuşturucu bağımlılık edimsel eğitim fare kalıcı hayvan modeli
Bir Fare Modelinde İntravenöz Öz Yönetim Yöntemleri
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Kmiotek, E. K., Baimel, C., Gill, K. More

Kmiotek, E. K., Baimel, C., Gill, K. J. Methods for Intravenous Self Administration in a Mouse Model. J. Vis. Exp. (70), e3739, doi:10.3791/3739 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter