Summary
Bazı fare suşlar miyelin temel protein olan deneysel otoimmün ensefalomyelit (EAE) indüksiyon karşı edebiliyoruz. Burada anlatılan yanıtsızlık tersine çevirir ve birkaç tipik EAE dirençli fare lekeler paralitik hastalığın neden basit bir bağışıklama protokoldür.
Abstract
Deneysel otoimmun ensefalomiyelit (EAE) merkezi sinir sistemi (MSS) iltihabi bir hastalıktır ve insan demyelinizan hastalığı, multipl skleroz (MS) çalışma için bir hayvan modeli olarak kullanılmaktadır. EAE MSS içine mononükleer hücrelerin patolojik infiltrasyonu ve paralitik hastalığın klinik bulgusu ile karakterizedir. Diğerleri dirençli iken MS benzer şekilde, EAE bazı fare suşları arasındaki genetik kontrolü altında da hastalığın oluşumunda duyarlıdır. Tipik olarak, C57BL / 6 (H-2 b) farelerde miyelin temel protein ile aşılanan (MBP) paralitik işaretleri geliştirmek için başarısız. Burada anlatılan deneysel bir protokol C57BL / 6 fareler gibi diğer tanınmış dirençli fare suşlarının ciddi EAE ikna etmek için kullanılmış olan bu cevapsızlık, kesinlikle antijen işleme veya MBP antijen sunumu hataları nedeniyle değil. Buna ek olarak, C57BL / 6 ve MBP reaktif Balb / c fareleri gelen encephalitogenic T hücre klonu başarılı olmuşturtamamen izole edilmiş ve yayılır.
Deneysel protokol (200 ug / fare) MBP-astarlanmış C57BL / 6 donör lenf düğümü hücreleri izole edilir ve MBP özel T hücrelerinin havuz genişletmek için antijen ile beş gün kültüre hangi bir hücresel adoptif aktarım sistemi kullanılarak içerir. Kültürü sürenin sonunda, 50000000 yaşayabilir hücrelerin kuyruk damarından vasıtasıyla Saf singeneik alıcı aktarılır. Bu yüzden normalde tedavi Alıcı fareler dolayısıyla dayanıklı durumu tazeleyen, EAE geliştirmek değil, onlar sonsuza kadar, normal kalabilir. On gün sonrası hücre nakli, alıcının fareler tam Freund adjuvan (CFA) emülsifiye yamaçlarında dört tesiste MBP ile zorlanmaktadır. Şiddetli EAE 10-14 gün, tehditten sonra bu farelerde gelişmeye başlar. Sonuçlar alakasız antijenleri ile meydan hastalığın klinik bulguları neden olmadı gibi hastalığın indüksiyon antijenik spesifik olduğunu gösterdi. Önemli ölçüde, antijene dozun bir titrasyonu için kullanılanmeydan alıcı farelerin, 5 mikrogram / fare gibi düşük olabileceğini göstermiştir. Ayrıca, antijenik meydan okuma bir zamanlama kinetik çalışmada hastalığın ikna etmek için, bu sorunu 5 gün sonrası antijenik meydan ve 445 gün sonrası antijenik meydan üzerinde olduğu sürece erken kadar etkili olduğunu gösterdi. Yanıtsızlık sağlanması bakımından önemli bir "uzun ömürlü" T hücre popülasyonunun katılımı yönünde Bu veriler, kuvvetli noktası. Bu sistem düzenleyici T hücreleri (Tregs) katılımı tanımlı değil.
Protocol
1. CFA-emülsifiye Antijen Hazırlanması
- 2 mg / ml arasında derişimde fosfat tampon solüsyonu (PBS) içinde kobay MBP (Swanborg1 bir metoda göre hazırlandı ve 4 ° C'de iyofilleştirilmiş formda saklanan) içinde çözülür. Sentezlenen MBP peptitler (MBP 60-80, SHHAARTTHYGSLPQKSQR) 2 kullanılması halinde, 2 mg / ml solüsyon hazırlanır. Luer-lok bir cam şırıngaya antijen çözeltisi uygun miktarda (fare başına 0.1 ml aşı olmak) kadar çizin.
- Luer-lok sahip başka bir cam şırınga içine antijen çözeltisi eşit komple Freund adjuvan H37Ra (0.1WT%) (CFA, Difco Laboratories) bir hacme kadar çizin.
- Üç yollu ile iki cam şırıngalar bağlayın. Ileri ve geri pistonu iterek CFA ile MBP çözüm karıştırın. Bir emülsiyon meydana gelinceye kadar hareket tutmak.
- Bir emülsiyon oluşturulur halinde test etmek için, bir şırınga içinde karışımı her püskürtülür. Boş şırınga ayırın, t çekino biraz piston geri ve oda sıcaklığında temiz su behere kalan emülsiyon bir damla boşaltın. Emülsiyon damla su yüzeyinin üzerinde olduğu gibi kalır, bir emülsiyon oluşmuştur. Emülsiyon halinde damla dağılır, şırınga yeniden ve karışım hareket etmektedir.
- Antijen doğru bir doz teslim sağlamak için aşılama işlemi için 1 ml plastik şırınga kullanın. Plastik enjektöre antijen emülsiyonu aktarmak için, piston çekin ve önceki cam şırınga 1.4 gibi kesildi üç yollu deliğine boş plastik şırınga takın.
- Cam enjektörün dalma piston iterek jantın plastik bir şırınga doldurun. Geri plastik şırınganın pompasına yerleştirin ve plastik şırınga üzerine 1.2 mL işaretine kadar ulaşan geri aşırı emülsiyon itin. Bu manevra hiçbir hava kabarcığı plastik şırınga içinde sıkışıp olduğunu garanti eder.
- Üç yollu gelen plastik şırınga çıkarın. Attaplastik enjektöre bir # 26 gauge iğne ch. Emülsiyon artık iğne boşluk hacmine doldurur böylece 1 mL işareti piston püskürtülür.
2. Donör Fare Bağışıklama
Not: Kadın C57BL / 6 fareleri genellikle başlangıçta Ulusal Sağlık Enstitüleri McFarlin grubu 3 tarafından tasarlanan yöntem izleyerek, yanları dört sitelerde antijen emülsiyonu ile enjekte edilir. Deneyimli bir araştırmacı, bir kişi bütün görevi gerçekleştirebilir. Yeni başlayanlar için, yardım bir kişi fare tutan ve diğer kişi enjeksiyon yapar böylece İstenen olabilir. Alternatif olarak, fare enjeksiyon için anestetize olabilir.
- Boyun cilt tarafından sıkıca tutun ve fare Göğüs ve karın kolayca erişilebilir olduğu gibi 4. ve 5. parmaklar arasında kuyruk geri tutun.
- (Mo biraz sağ koltuk üzerinde toraks bir yerinde 1mL plastik enjektör iğnesi yerleştirinkullanın) ve subkutan antijen emülsiyonu 0,05 mL enjekte edilir. Beyazımsı CFA A little şişkinliği soluk cilt üzerinden görülebilir. Biraz sol koltuk altına yukarıda toraks site için aynı tekrarlayın.
- Kuyruk bırakın ve sağ ayak (fare) tutun, çevirin ve 4. ve 5. parmaklar arasında tutun. Sağ kanadının sadece kaburga durumda aşağıdaki site bulun ve antijen emülsiyonu 0,05 mL enjekte edilir.
- Sağ ayak bırakın, fare başka bir yol açmak ve 4. ve 5. parmaklar arasında sol ayak (fare) tutun. Sol kanadında sadece kaburga durumda aşağıdaki site bulun ve antijen emülsiyonu 0,05 mL enjekte edilir.
- 10 farelerin enjeksiyonundan sonra taze bir iğne ile değiştirin veya iğne olursa dulled.
3. 7 ila 10 gün sonra Bağışıklama Doku Kültürü Lenf Bezleri Hücre İzolasyonu
- Yedi ile 10 gün sonra ortaya çıkabilir, fareler kurbanve lenf düğümleri kaldırın. Ötenazi tercih edilen yöntem CO 2 inhalasyon gereğidir. Bacaklarda uzattı ve iğneler ile kuruluna güvenli olan kurban sonra, diseksiyon gemide sırtında fare yatıyordu. Farelerde% 70 etanol bir sprey ile ıslatılır.
- Kadar steril makas ve forseps ile çene karın alt ucundan ortasına uzunlamasına deri bir yarık kesin.
- Her bacak için aşağı kasık bölgesinden karın cildi kesin. Sırt ve kasık lenf düğümleri açığa cilt aşağı pin soyun.
- Cilt geri soyulmuş ve koltukaltı yakın koltuk altı lenf düğümleri maruz altına sokulamayacak böylece ön ayakları (sol ve sağ) boyunca deri kesin.
- Birlikte çalışma forseps iki çift ile, kaplama bağ dokuları çekmeye ve inguinal lenf düğümleri etrafında. Bağ doku temizlendiği zaman, lenf düğümü altında forseps bir çift koyun ve vücudun uzak çekin. Yerleştirin35 mm petri lenf düğümleri steril PBS ile doldurulur.
- Iki çift forseps kullanarak iki koltuk altı lenf düğümleri kapsayan bağ dokuları dışarı doğru çekin. Lenf düğümleri izole etmek ve Petri tabağına yerleştirin. Kanama çok zor lenf düğümleri tanımlamak yapar gibi bölgede geçen kan damarlarını kırmak için çok dikkatli olun.
- Tüm lenf düğümleri toplandıktan sonra, biyogüvenlik kaput Petri taşıyın. Kırın ve diğer karşı bir taşlama, forseps, iki çift dışında lenf düğümleri kızdırmak. Alternatif olarak, lenf düğümleri Petri altındaki lenf düğümlerine karşı basarak 3 ml'lik plastik şırınga pistonu düz ucunu kullanarak yukarı kırılabilir.
- Membranlar ve enkaz kaldırmak için bir naylon gözlü bir alay lenf hücre süspansiyonu geçirin.
- Lenf nodu hücre süspansiyonu steril PBS ile 50 ml kadar olun. 10 dakika 1000 rpm'de santrifüj. Kültür ortamı içinde pelletini. Uygulanabilir bir c yapınell 4 x 10 6 hücre / mL konsantrasyon saymak ve ayarlayın. UseRPMI 1640% 10 fetal dana serumu, 2 mM L-glutamin, 1 mM sodyum piruvat MEM, 0.1 mM MEM olmayan amino asitler, 100 U / ml penisilin, 100 ug / ml streptomisin, 10 mM Hepes tamponu, 5 x ile desteklenmiş 10 -5 M 2-ME. Hücreleri resuspending Pre-sıcak kültürü.
- Çukur başına 2 mL hacmi (nihai konsantrasyon hücre 8 x 10 6 hücre / çukur) ile birlikte 24 bölümlü kültür tabaklarına kültürü hücre. 100 ug / mL 'lik nihai bir konsantrasyon her oyuğa antijen ekleyin. % 5 CO2 içeren bir 37 ° C inkübatörde kültürü plakası yerleştirin. 5 gün boyunca hücre inkübe edin.
4. 5 Gün Kültürler başlatılması sonra Kültür Lenf Hücreler Hasat
- Pasteur cam pipet veya küçük hacimli pipet ile yukarı ve aşağı pipetleme her iyi hücreleri karıştırın. 50 ml'lik bir santrifüj tüpüne hücreler hasat.
- 10 dakika için 1000 devirde hücreleri santrifüjleyin. Edinmek vePBS küçük bir hacim içine hücre peleti pend.
- Hücreleri saymak ve steril PBS ile 2.5 x 10 8 hücre / ml canlı hücre konsantrasyonunu ayarlamak. Bir # 26 gauge iğne ile donatılmış bir enjektöre hücre çizin.
- Kuyruk damarından genişler yardımcı olmak için alıcı farelerin kafes üzerine bir ısı lambası yerleştirin.
- Bir fare tutucu kullanarak, tutucu yarık boyunca farenin kuyruk uzanır. Kuyruk uzatmak için çekin. Ven bulun.
- 5 x 10 7 hücreleri eşit, hücre süspansiyonu 0.2 ml / fare enjekte edilir.
5.. Alıcı Fare antijenik Mücadelesi 20 Gün Mesaj Hücre Nakil ve Hastalık Belirtileri Gelişimi
- Mücadelesi alıcı farelerin antijen ile hastalık belirtileri gösteren değil. Prosedürler "Donör Fareler Bağışıklama" bölümü 2 aynıdır.
- 7 ile 10 gün antijenik uyarımı sonrası paralitik hastalık gelişimi dikkate alınmalıdır.
- Hastalık kuyruk güçsüzlük ile başlar. Hastalık 1 olarak sınıflandırılırkuyruğu gevşek hale gelir. Fare bir arka bacak felç olduğunda Hastalığı 2 olarak sınıflandırılır. Hastalık her iki arka ayakları felç olduğunda 3 derecelendirildi ve ileri tararken fare hem de arka ayakları sürükler edilir. Fare fare tamamen hareketsiz bırakarak, her iki ön ayakları kullanımı kaybettiğinde Hastalıkları 4 sınıflandırılır. Fare can çekişmekte olan ve cesedi kıvrılıyor zaman Hastalık 5 sınıflandırılır. Ölüm hastalığı 6. sınıfa 4 olarak kaydedilecektir.
- Bu protokolü takip C57BL / 6 fare uyarılan MBP spesifik EAE monofazik olup. Farelerde hastalığın kurtarmak ancak spontan relaps uğramamış.
6. Temsilcisi Sonuçlar
Alan fareler astarlanmış ve in vitro-genişletilmiş donör lenf hücrelerinin hastalığın oluşumunda onların direncini yansıtan, EAE hastalık belirtileri ortaya vermedi. Bununla birlikte, şiddetli hastalığı antijenik uyarma kabiliyeti gösteren, antijenik meydan okuma (Tablo I) sonra geliştirilendirenç mekanizması tersine çevirmede. Belirtildiği antijenik meydan iki vasıflar antijen dozlarda ve hastalık indüklemek için meydan kinetiğini bulunmaktadır. Tablo III de gösterildiği gibi antijen arasında çok düşük doz ihtiyaç duyulmaktadır. Antijen (Tablo IV) ile meydan okuduğunda Hayret, bir yıl önce donör hücreleri alınan fareler hala şiddetli hastalık gelişebilir. Bu iki gözlem güçlü EAE direnç sağlamada "uzun ömürlü" T hücrelerinin tutulumunu telkin etmektedir. Bu protokol, birçok EAE dirençli fare suşları 4 uygulanabilir.
Tanınmış dirençli fare suşlarının EAE indüksiyonu için deneysel tasarım Şekil 1. Akış çizelgesi.
| Klinik EAE evlatlık sonra transfer | |||||||
| Zorlanma | Antijen | insidansı | Av. Hastalığın derecesi (Aralık) | Av. başlangıç günde (Aralık) | İnsidans | Av. Hastalığın derecesi (Aralık) | Av. başlangıç günde (Aralık) |
| SJL | MBP | 21/21 | 4.0 (3-5) | 8.0 (6-10) | ND | ND | ND |
| C57BL / 6 | MBP | 0/10 | - | - | 7/7 | 3.85 (3-5) | 9.28 (9-10) |
| Balb / c | MBP | 0/7 | - | - | 5/5 | 3.2 (3-4) | 7.0 (7) |
| C3H/HeJ MBP | 0/7 | - | - | 4/4 | 3.2 (3-4) | 8.0 (8) | |
| C57BL / 6 | MBP 60-80 | 0/4 | - | - | 4/4 | 2.75 (2-4) | 10.2 (9-11) |
Tablo I. MBP-aracılı C57BL yılında EAE / 6 farelerde indüksiyonu. C57BL / 6 farelerde astarlanmalı vitro ve in-genişletilmiş donör hücreleri neden vermedi EAE ve evlatlık transferi. Antijenik meydan yazılan hücre transferi hastalığın oluşumunda duyarlı fareler kıldı. Av., Ortalama. ND, bitmiş değil.
| Antijenik uyarımı sonrası Klinik EAE | ||||
| Astar Antijen | Mücadelesi antijen | İnsidans | Av. Hastalığın derecesi (Aralık) | Av. başlangıç günde (Aralık) |
| MBP-CFA | CFA yalnız | 0/3 | - | - |
| MBP-CFA | OVA'ya CFA | 0/3 | - | - |
| MBP-CFA | MBP-CFA | 3/3 | 4.0 (4.0) | 7.7 (7-9) |
Antijenik meydan Tablo II. Özgünlük. Alıcı fareler priming antijeni yanı sıra diğer alakasız antijenleri ile itiraz edildi. Sadece priming antijen şiddetli hastalık indüklenen. OVA: tavuk ovalbumin. Av., Ortalama.
| Antijenik uyarımı sonrası Klinik EAE | |||
| Mücadelesi antijen dozları (mg / fare) | İnsidans | Av. Hastalığın derecesi (Aralık) | Av. başlangıç günde (Aralık) |
| 200 | 4/4 | 3.75 (3-4) | 8.25 (7-9) |
| 100 | 4/4 | 3.67 (3-4) | 7.5 (7-8) |
| 50 | 4/4 | 3.25 (3-4) | 8.25 (7-10) |
| 25 | 4/4 | 3.0 (3.0) | 8.25 (8-9) |
| 10 | 4/4 | 3.0 (3.0) | 8.76 (8-9) |
| 5 | 4/4 | 2.5 (2-3) | 9.75 (9-10) |
| 1 | 2/4 | 1.0 (1.0) | |
| 0 | 0/4 | - | - |
Tablo III. Mücadelesi antijen dozları hastalığın oluşumunda gereklidir. Alıcı farelere meydan kullanılan MBP çeşitli konsantrasyonlarda test edildi. Av., Ortalama.
| Antijenik uyarımı sonrası Klinik EAE | ||||
| Mücadelesi antijen | Challenge Gün | İnsidans | Av. Hastalık notu (Aralık) | Av. Başlangıçlı Günü (Aralık) |
| MBP-CFA | 5 | 3/4 | 1.33 (1-2) | 9.67 (9-10) |
| MBP-CFA | 10 4/4 | 3.0 (3.0) | 8.25 (7-9) | |
| MBP-CFA | 15 | 4/4 | 3.75 (3-4) | 7.25 (7-8) |
| MBP-CFA | 25 | 4/4 | 4.0 (4.0) | 8.0 (7-9) |
| MBP-CFA | 35 | 4/4 | 3.5 (3-4) | 7.5 (7-8) |
| MBP-CFA | 60 | 4/4 | 3.75 (3-4) | 9.0 (8-10) |
| -------------------------- | ||||
| MBP-CFA | 343 | 3/3 | 3.0 (3.0) | 10.33 (10-11) |
| MBP-CFA | 445 | 3/3 | 3.0 (3.0) | 7.0 (7.0) |
Antijenik meydan Tablo IV. Kinetiği. Alıcı fareler benimsemeye çeşitli zaman noktada görevde itiraz edildiive hücre transferi. Av., Ortalama.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Farelerde EAE çalışmaları genellikle neuroantigens, miyelin bazik protein (MBP), proteolipid protein (HUA) ya da miyelin oligodendrosit protein (MOG) kullanmaktadır. Daha önceki çalışmalarda çoğunlukla MBP kullanılır. PLP SJL farelerden güçlü ve tutarlı yanıtları uyarır. B6 fareler bu antijeni ile hastalığın oluşumunda duyarlı olması nedeniyle Daha yakın zamanlarda, MOG kullanılan ortak neuroantigen olduğunu. Gen hedeflenen fare suşlarının çoğu B6 genetik birikimine vardır. İlginçtir, B6 fareler MOG indüksiyon EAE duyarlı olup, MBP ile hastalığın oluşumunda dayanıklıdır.
Çok hastalığın mekanizmaları indüksiyon, düzenleyici T hücreleri 5-7 tarafından sitokin üretimi ve geri kazanım aracılı etkileri üzerinde merkezlenmiş EAE mekanizmaları durulaştırmada önceki çaba. Tanınmış EAE dirençli fare diğer taraftan hastalığın indüksiyon, subvert nasıl, yaygın olarak incelenmiştir değildi. Bu u nicel zorluğu nedeni olabilirnresponsiveness. Arnon 8 1981 yılında ilk siklofosfamid ile B6 fareleri tedavi MBP ile uyarılan EAE duyarlı bu farelerin hale gösterdi. Diğerleri anti-gama interferon ile tedavi ayrıca başarıyla B6 ve BALB / c fareleri 9,10 hastalığa neden olduğu görülmüştür. Bu çalışmalar, tüm non-antijen spesifik hedef belirteçler olduğu not edilmelidir. Öte yandan, burada tarif edilen protokol EAE direnci farklı bir yönü üzerinde odaklanmaktadır. İşte meydan kullanılan sadece spesifik antijen EAE yanıtsızlık aşmak ve hastalık indüksiyon sağlar yapabilirsiniz. Bu protokol, adoptif astarlanmış donör T hücrelerinin transferi ve antijenik meydan okuma fazı olan duyarlılığı (Tablo I) ile EAE direnci faz iki kapsar. Deneyler EAE direnci yanı sıra bu yanıtsızlık tersine faktörleri korumak iç faktörler incelemek için dizayn edilebilir. Başlangıçta, aşı ne zaman EAE dirençli farelerden otoimmün yanıtları takabileceklerdir olduğu gösterilmiştirMBP 4 ile. Daha sonra, encephalitogenic T hücreleri bu farelerin 2 yaşamış olduğu gösterilmiştir. Bazı yeni çalışmalar 11,12 düzenleyici T hücrelerinin rolü (Tregs) ima, duyarlı dayanıklı gelen farelerin dönüştürülen önce farelerin aşılama proteolipid protein (HUA), anti-CD25 antikoru olan B10.S farelerin tedavinin gösterdi EAE direnci korumak. Bununla birlikte, bu C57BL / 6 fare benzer şekilde muamele edilmiş ve MBP 13 ile immünize edilir bir durum değildir. Farelerin en tepkisiz kalır. Böylece, EAE direnci çok faktörlü olabilir. Bu C57BL durumunda / MBP yanıt 6 fare, timus seçimi çevrede MBP-reaktif T hücrelerinin çok düşük frekanslar olduğu gibi en MBP-reaktif T hücreleri silinmiş, olduğu kabul edilmektedir. Bu aşağıda eşiği düşük frekanslı MBP ile bağışıklama cevap mümkün değildir fareler hale getirecektir. Meydan dozu, bilinmeyen mekanizmalar aracılığıyla, frekans sorunu ve m üstesinden yapabiliyorount otoimmün bir yanıt. Mümkün mekanizmalarının ileri incelemeler Tregs tarafından inhibe etmek encephalitogenic duyarlılığını etkileme antijenik meydan sırasında, IL-6 12 rolü de içerecektir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Hiçbir finansal açıklamaları.
Acknowledgments
Ulusal Sağlık Enstitüleri hibeler (R01 NS37253 ve N01 NS055167) ve Ulusal Multipl Skleroz Derneği (RG 3288-A6) tarafından kısmen desteklenmektedir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Guinea pig spinal cords |  Rockland Immunochemicals |
GP-T065 | frozen |
| Freund’s Adjuvant, complete H37Ra | Difco Laboratories | 231131 | |
| Multifit interchange-able syringe | BD Biosciences |
512133 | |
| RPMI 1640 | Mediatech, Inc. |
10-040-CM | |
| OVA | Sigma-Aldrich |
A5503 | |
| Mice | Jackson Laboratory | B6 mice: 0000664 | Bar Harbor, Maine |
References
- Swanborg, R. H. Experimental allergic encephalomyelitis. Methods in Enzymology. Sabato, G. D. 162, Academic Press. New York, NY. 413-421 (1988).
- Shaw, M. K., Kim, C., Hao, H. W., Chen, F., Tse, H. Y. Induction of myelin basic protein-specific experimental autoimmune encephalomyelitis in C57BL/6 mice: Mapping of T cell epitopes and T cell Vb gene segment usage. J. Neuroscience Research. 45, 690-699 (1996).
- McCarron, R., McFarlin, D. E. Adoptively transferred experimental autoimmune encephalomyelitis in SJL/J, PL/J, and (SJL/J x PL/J)F1 mice. Influence of I-A haplotypes on encephalitogenic epitope of myelin basic protein. J. Immunol. 141, 1143-1149 (1988).
- Shaw, M. K., Kim, C., Ho, K. -L., Lisak, R. P., Tse, H. Y. A combination of adoptive transfer and antigenic challenge induces consistent murine experimental autoimmune encephalomyelitis in C57BL/6 mice and other reputed resistant strains. J. Neuroimmunol. 39, 139-150 (1993).
- Krishnamoorthy, G., Saxena, A., Mars, L. T., Domingues, H. S., Mentele, R., Ben-Nun, A., Lassmann, H., Dornmair, K., Kurschus, F. C., Liblau, R. S., Wekerle, H. Myelin-specific T cells also recognize neuronal autoantigen in a transgenic mouse model of multiple sclerosis. Nat. Med. 15, 626-632 (2009).
- Anderson, A. C., Reddy, J., Nazareno, R., Sobel, R. A., Nicholson, L. B., Kuchroo, V. K. IL-10 plays an important role in the homeostatic regulation of the autoreactive reperteroire in naïve mice. J. Immunol. 173, 828-834 (2004).
- Anderton, S. M. Treg and T-effector cells in autoimmune CNS inflammation: a delicate balance easily disturbed. Eur. J. Immunol. 40, 332-334 (2010).
- Arnon, R. Experimental allergic encephalomyelitis - susceptibility and suppression. Immunol. Rev. 55, 5 (1981).
- Billiau, A., Heremans, H., Vandekerckhove, F., Dijkmans, R., Sobis, H., Meulepas, E., Carton, H. Enhancement of experimental allergic encephalomyelitis in mice by antibodies against IFN-g. J. Immunol. 140, 1506-1510 (1988).
- Arbomson-Leeman, S., Alexander, J., Bronson, R., Corroll, J., Southwood, S., Dorf, M. Experimental autoimmune encephalomyelitis-resistant mice have highly encephalitogenic myelin basic protein (MBP)-specific T cell clones that recognize a MBP peptide with high affinity for MHC class II. J. Immunol. 154, 388-398 (1995).
- Reddy, J., Illes, Z., Zhang, X., Encinas, J., Nicholson, L., Sobel, R. A., Wucherpfennig, K. W., Kuchroo, V. K. Myelin proteolipid protein-specific CD4+CD25+ regulatory cells mediate genetic resistance to experimental autoimmune encephalomyelitis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 15434-15439 (2004).
- Korn, T., Reddy, J., Gao, W., Bettelli, E., Awasthi, A., Petersen, T. R., Backstrom, B. T. Myelin- specific regulatory T cells accumulate in the CNS but fail to control autoimmune inflammation. Nature Med. 13, 423-431 (2007).
- Shaw, M. K., Li, J., Ho, P. P., Hao, H., Lisak, R. P., Tse, H. Y. Induction of myelin basic protein-specific adoptive experimental autoimmune encephalomyelitis in C57BL/6 mice. Longevity of donor T cells and lack of disease relapses. Neuroimmunology Research Focus. Broglie, P. V. , Nova Science Publisher. New York. 175-191 (2007).
