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Immunology and Infection

細胞内細菌性病原体を持つゼブラフィッシュ胚の感染

Published: March 15, 2012 doi: 10.3791/3781

Summary

透明なゼブラフィッシュの胚は、次のような視覚化するための有用なモデルのホストと自然免疫細胞と細胞内細菌性病原体との間の機能的研究の相互作用を、証明している

Abstract

ゼブラフィッシュ( ゼブラフィッシュ )の胚がますます宿主-病原体相互作用の1の脊椎動物の自然免疫系の機能を研究するためのモデルとして使用されています。自然免疫系の主要な細胞型、マクロファージおよび好中球は、免疫応答に必要とされるリンパ球の成熟の前に胚発生の最初の日の間に開発しています。胚の大量入手のしやすさ、外部の開発のために、アクセシビリティ、胚および幼虫の光透過性、遺伝的なツール、トランスジェニックレポーターラインの大規模な変異体リソースやコレクションの広い範囲は、すべてのゼブラフィッシュの汎用性を追加モデル。 サルモネラ血清型Typhimuriumの(ネズミチフス菌)結核marinumは、マクロファージに細胞内に存在することができ、頻繁にゼブラフィッシュ胚における宿主-病原体相互作用を研究するために使用されます。これら二つの感染過程細菌の病原体は、比較することは興味深いものですので、S.ネズミチフス菌感染症は、M.、一方、1日以内の急性および致命的であるmarinum感染症は慢性的であり、幼虫2、3までイメージングすることができます。胚( 図1)に細菌の微小注射部位の感染が急速に全身になるか、最初にローカライズされたままかどうかを決定します。急速な全身感染症が直接後部血島で、またはキュビエ、トランク血管系に心を接続する卵黄嚢の広い流通チャネルのダクトを介して尾静脈を介して血液循環にマイクロ注入細菌によって確立することができます。 1 DPFで、この段階で胚がphagocyticallyアクティブマクロファージを持っていますが、好中球はまだ血島に注入し、成熟していない場合が好ましい。 2月3日DPFにおける注射のために、胚は、機能(ミエロペルオキシダーゼ産)好中球を開発しているときは、キュビエのダクトはtとして好ましい彼は、注射部位。ローカル感染症に対する骨髄細胞の指示への移行を検討するため、細菌は、尾の筋肉、耳胞、あるいは後脳室4から6に注入することができます。さらに、脊索、骨髄系細胞に正常にアクセスできないように見える構造は、局所感染、7〜非常に敏感です。ハイスループットアプリケーションのための有用な代替手段は受精後の最初の8時間以内に胚の卵黄への菌の注射である。蛍光マクロファージや好中球と蛍光細菌およびトランスジェニックゼブラフィッシュラインを組み合わせることにより、宿主 - 病原体相互作用のマルチカラーイメージングのための理想的な状況を作成します。このビデオの記事はSでゼブラフィッシュ胚の静脈内投与と局所感染の詳細なプロトコルを記述します。 ネズミチフス菌またはM. marinum細菌と自然免疫系の細胞との相互作用のその後の蛍光イメージングのために。

Protocol

1。注射針を準備します。

  1. 、エア圧力:400マイクロピペットプラー装置(サッター·インスツルメンツ、長い先端のために次の設定で/ブラウンP-97フレーミングを使用してホウケイ酸ガラスマイクロキャピラリー注射針(ハーバード装置、300038、1ミリメートルOD×0.78ミリメートルID)を準備熱610、プル40、速度50、時間30、短い先端のために次の設定で:空気圧500、熱510、プル100;速度200;時間60)。
  2. 5月10日μmの先端開口直径を得るために微細なピンセットで針の先端を折ります。それはシャープな先端をもたらすためにmicrogrinder(ナリシゲ社、EG-400)角度45°のベベル針の先端開口部をすることをお勧めします。これは、表皮層を穿刺促進するため、鈍針より小さい組織の損傷をより再現性の注射になります。長い先端針は尾静脈(ステップ5)とキュヴィエのダクト(ステップ6.1)注射と短い針先端のために好ましい他の注入プロトコル(手順6.2から6.6)のために好ましい。

2。 S.を準備するネズミチフス菌接種

  1. S.外板LB寒天プレート上に-80℃のグリセロールストックからネズミチフス菌 (蛍光発現ベクターを選択するために適切な抗生物質)と37℃で一晩インキュベート℃、
  2. 個々の蛍光陽性コロニーをピックアップし、滅菌リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で所望の濃度(プロトコル5および6を参照)に再懸濁し、必要に応じて0.085パーセント(v / v)を含むフェノールレッド(Sigma-Aldrich社)は、可視化を支援する注入プロセス。直接注入​​のために新鮮な懸濁液を使用するか、またはグリセロールストックを準備します。グリセロールストックを調製するために、細菌の所望の濃度でたて注入株式をスピンダウンし、PBS中の滅菌20%(v / v)グリセロール(Sigma-Aldrich)を半分の起動ボリュームにペレットを再懸濁することにより株式を集中しています。 -8でグリセロールストックを保管する0℃必要に応じて0.17パーセントフェノールレッドを含有する滅菌PBSで注射前にグリセロールストック1:1(v / v)を、希釈します。
  3. 渦凝集を避けるためにも、細菌懸濁液を。
  4. microloaderチップ(エッペンドルフ、5242956.003)を使用して、マイクロキャピラリー針に接種をロードします。
  5. S.の比較的大きなサイズのためにネズミチフス菌とその鮮やかなDS-RED蛍光pGMDs3発現ベクター3(リクエストに応じて利用できる菌株)を使用して、個々の細菌細胞は容易に注入量を設定するために、蛍光実体顕微鏡でカウントすることができます。この目的のために、寒天プレート上でPBSのドロップに1 NLを注入する蛍光バクテリアをカウントし、所望の細菌の用量(好ましくは1〜2 nLの間に注入量を維持する)を取得するために必要な注入量を計算します。 Sで胚を注入する選択したルート(プロトコル5および6を参照)を介して

3。準備する

  1. M.を保つmarinum株は10%、オレイン酸-アルブミン-デキストロース-カタラーゼ(OADC、BD社)を添加したディフコミドル7H10寒天培地(BD社)、0.5%グリセロール上に成長し、適切な抗生物質で蛍光の発現ベクター(利用可能な菌株を選択するためにリクエスト9)に応じますので、新鮮な在庫が常にあります。
  2. M.のコロニーを選択marinumと10%(ADC、BDと会社)アルブミン-デキストロース-カタラーゼおよび0.05%ツイーン80(Sigma-Aldrich)を、適 ​​切な抗生物質を補充しディフコミドル7H9ブロス(BD社)でそれを再懸濁します。 600nmにおける光学密度(OD)が0.2であることを確認 - 0.3と28.5で、それが静的に一晩成長させ℃、 Mの世代時間marinumは、ひずみに応じて変化する、約4-6時間です。
  3. 注射の日には再び600 nmでのODを測定します。 1 OD600が約10 8 Mに対応していmarinum / mLの(これは使用菌株に応じて異なる場合がありますので、特定の株の成長曲線に基づいている必要があります)。
  4. 彼らは、滅菌PBSで3回遠心分離し、それらを洗浄することにより対数増殖期(OD600が1.00を超えることはできません)にあるときに細菌を収穫。
  5. 、PBS中の細菌懸濁液を再びOD600を測定し、スピンダウンし、PBSや均一性を向上させPBS(w / v)の2%のポリビニルピロリドン(PVP40)で所望の濃度(プロトコル5および6を参照)に細菌を懸濁する細菌懸濁液の。フェノールレッド(Sigma-Aldrich社)を注入プロセスの可視化を支援するために0.085パーセントの濃度に添加することができる。直接注入​​のために新鮮な懸濁液を使用するか、またはグリセロールストックを準備します。グリセロールストックを調製するために細菌の所望の濃度でたて注入株式をスピンダウンし、PBS中の滅菌20%グリセロールで半分から始まるボリュームでペレットを再懸濁することにより株式を集中しています。グリセリンを保存する-80エロール株式℃、必要に応じて4パーセントPVP40および/または0.17パーセントフェノールレッドを含有する滅菌PBS中のグリセロールストック1:1(v / v)を、希釈します。

4。注射用のゼブラフィッシュ胚を準備する

  1. ゼブラフィッシュの繁殖ペアを設定し、別のビデオ第10条に示されているように胚を収集します。卵の水で満たされたペトリ皿(60μg/ mLの海の塩;約60胚/ dish)に胚を維持し、28.5℃でインキュベートC.
  2. 必要であれば胚はメラニン化を防ぐために、約12 HPFである場合、卵水に0.003パーセントN-フェニルチオ尿素(PTU、Sigma-Aldrich社)を追加します。
  3. 約24時間後に受精(HPF)、dechorionate細かいピンセット(ファイン科学ツール(株)、デュモン第5鉗子で胚 - イノックス生物学。
  4. 卵水で、プラスチック表面に付着したから胚を防ぐために底部に1%アガロースの層で埋めシャーレに胚を保持します。
  5. 3バッファ200μg/ mLので胚を麻酔-アミノ安息香酸(Tricaine、Sigma-Aldrich)を注射する前に約10分。

5。一日齢の胚に細菌の静脈注射

  1. 目、ストレート尾部に色素沈着が始まり、心が目にだけ腹に位置決めされ、一貫性のある血液循環をチェックして、28 HPF 11で胚をステージングします。
  2. 胚の麻酔は、ステップ4.5を参照してください。
  3. microloaderチップを用いて細菌の接種で針をロードします。
  4. スタンドに接続されているマイクロマニピュレーター(サッターインストゥルメント、MM-33)(ワールド·精密機器、M10L磁気スタンド)にロードされた針をマウントし、ステレオ顕微鏡(ライカM50、アクロマート1xの目的0,15 NA、透過光ベースの下に配置TL ST)。 0.2秒と15 HPA(エッペンドルフ、Femtojet)への補償圧力噴射時間を設定します。針の正しい注入量を得るために700と900 hPaの間に射出圧力を調整する使用されます。顕微鏡スライド上または眼のスケールバーの助けを借りて、所望の直径に一致するようにドロップサイズを調整します。サイズ決定のためにドロップは、顕微鏡スライド上にミネラルオイルを注入することができ、またはサイズが針先に掛かってドロップを残し、空気、中に注入することによって推定することができます。 1 NLの滴の半径は0.062ミリメートル(R 3 V = 4/3π)である。
  5. 前の注入への正しい位置(すなわち約45℃で注入プレート面に対して角度)にロードされた針とマイクロマニピュレータを設定してのみ注入する前後に移動します。
  6. 麻酔胚は表面張力が注射時の場所に胚を保持することができ、削除されますフラット、1%アガロース注入プレートと過剰な卵水にピペットされています。胚を整列するために毛のループツール( 図2)を使用します 。オリエントinsertiのための好ましい位置に胚を配置する注射時に手で注入プレートngの彼らの尾が針の先端に向かって指していると針、すなわち。
  7. 直接泌尿生殖器の開口部( 図1A)、針の先端とピアス周皮に尾静脈に近い上に針の先端を配置し、細菌の所望の投与量を注入し、我々は、CAを使用しています。 S. 250 CFU DS-RED発現ベクターpGMDs3、およびCAを含む野生型(WT)株SL1027、。 M. 120 CFU marinum株Mma20。注入された細菌懸濁液は、心臓に向かって尾静脈を介して血流に従います。注射は、直接パルス2の後に血管系の拡大ボリュームをチェックして正しく実行された場合は監視します。用量反応実験では、2月3日連続注射は、針を抽出することなく行うことができます。
  8. 頻繁に実験時の注入量は変わらないことを確認してください。実験を通して注射の一貫性の制御を提供するために、DROを注入直接およそ30周年胚注射後の細菌の増殖培地上に滅菌したPBSのドロップに細菌のp。このドロップアウトプレートと注入量のコロニー形成単位(cfu)を決定するためにインキュベーションした後の細菌のコロニーをカウントします。
  9. 個々の蛍光S.を観察する蛍光顕微鏡(プロトコル7)を使用ネズミチフス菌細胞に直接注入した後に血流内を循環し、適切に注入されていない胚を破棄します。個々の蛍光M. marinum菌を直接注射した後、ステレオ、蛍光顕微鏡で観察することはできませんが、感染した細胞の蛍光凝集体は2日後の感染数(dpi)によって見えるように、時間の経過とともに大きくなる必 ​​要があります。

6。感染症の代替ルート

  1. キュビエの注入管:尾静脈注射用としてフラット1%アガロース注入プレート(5.6を参照)麻酔胚(2-3 DPF)のラインアップ。オリエント注入すなわち斜め下に、針を挿入するための好ましい位置に胚を配置する注射時の手によるイオンプレートキュビエのダクト( 図1B)胚の背側から針先に接近することができるように45°の角度。ダクトは、卵黄嚢の上に広げることから始まり、100から200細菌(1-3 NL)に注入する場所にだけ背キュビエのダクトの出発点に針を挿入します。ダクト内のボリュームは、パルスの後に直接展開され、卵黄嚢が破裂されていない場合、注射は正しいです。尾静脈注射(5.7を参照)として、複数の連続した​​注射は、針を抽出することなく行うことができます。
  2. 後脳室注入:胚を針の先端に向かって彼らの背側に配置されているような平らな1%アガロース注入プレートの麻酔胚のラインアップ(32 HPF)。 neuroeに触れずに前方の位置から後脳の心室に針を挿入します。pithelium( 図1C)と20から100細菌(0.5-1 NL)に注入します。別のビデオ第13条に示されているように手順を練習するために、蛍光色素(例えば、テキサスレッドデキストランなど)を使用します。
  3. 尾の筋肉注射:尾静脈注射用としての地位麻酔胚(1-2 DPF)(5.6参照)。注入プレート面に対して約65°の角度にロードされた針とマイクロマニピュレータを調整します。脊索や血管への損傷を引き起こすことなく、泌尿生殖器の開口部( 図1D)上記の筋肉に50 CFU - 20を含む細菌懸濁液を(0.5-1 NL)注入します。
  4. 耳胞の注入:尾静脈注射用としての地位麻酔胚(2-3 DPF)(5.6参照)。注入プレート面に対して約65°の角度にロードされた針とマイクロマニピュレータを調整します。低押すだけで、耳胞( 図1E)に約20の細菌を(0.5 NL)注入局所的な組織の破壊を避けるために、るものをいい、ラベルにより表示。
  5. 脊索注射:胚が彼らの尾は針の先端から離れて指すように配置されているような平らな1%アガロース注入プレートの麻酔胚のラインアップ(1-2 DPF)。脊索( 図1F)に尾の筋肉組織を介して針を挿入し、約20から50の細菌を(最大0.5 NL)注入します。脊索の破裂を避けるためにあまりにも多くのボリュームを挿入しないように注意してください。
  6. 卵黄注入:チャネル型で作られた長方形またはV字型のチャンネルを1%アガロース注入プレート上に16から1000細胞期の胚を含む位置の卵で12またはオンラインhttp://zfin.org/zf_info/zfbook/chapt5 / 5.1.html 。ピアースは卵黄( 図1G)の中心部に絨毛膜を介して針と(1-2 NL)20から40の細菌を注入します。細菌懸濁液2%PVP40キャリア溶液の使用(手順3.5を参照)胚に早期に細菌の拡散を防止することが重要です。

7。感染のステレオイメージング

  1. Tricaine(4.5を参照)を含む卵の水で覆われた1%アガロース階層ペトリ皿の中で感染した胚を麻酔。
  2. 髪のループツール( 図2)蛍光実体顕微鏡下イメージングのための正しい位置に胚を合わせます。水泳膀胱が膨張する前に(1-5 DPF)、胚は側面図のイメージングを可能にし、その両側に平らにします。
  3. 側面図と異なる位置が必要な場合は、1.5%メチルセルロースに胚をマウントします。髪のループツール( 図2)を使用して必要な位置に胚を操作します。
  4. イメージングの後に卵水に胚を戻します。

8。感染の共焦点イメージング

  1. ガラス底の低融点アガロース(ロンザ社は、卵水に1.5%(W / V))のドロップを配置倒立共焦点顕微鏡が使用されている場合はWillCo皿(WillCoウェルズ、GWSt-5040)、または単一のキャビティうつ病スライド(寒天サイエンティフィック、L4090)の直立共焦点顕微鏡が使用されている場合。
  2. 卵水の限られた量のアガロースドロップに麻酔をかけた胚を配置し、髪のループツール( 図2)の位置に胚を操作します。倒立顕微鏡を使用している場合、それは興味のある胚の領域がイメージング皿のグラスボトムに対して平坦であることが重要である。正立顕微鏡は、水浸または長距離乾燥した目標と組み合わせて使用​​することができ、胚は、関心のある領域は、可能な限り客観的に近いとなるように配置する必要があります。
  3. アガロースTricaine(4.5を参照してください)​​を含む卵水にアガロースドロップを固めると水没しましょう​​。正立顕微鏡を使用している場合は、うつ病キャビティ(気泡を形成することはできません)の上にガラスのカバースリップを置きます。
  4. 順番にインフルエンザを取得するクマリンと透過画像。
  5. 慎重に微細なピンセットを用いて胚からアガロースを削除し、それがさらなる実験のために必要な場合は、卵水に戻す胚を配置します。

9。代表的な結果

マクロファージによる貪食急速に1 DPFの結果では胚の血島にネズミチフス菌またはマイコバクテリウムmarinum注射。 MPEG1遺伝子 、最近よく確立されたマクロファージマーカーcsf1r(FMS)との共局在やMPX(MPO)LYZ 4、14と好中球マーカーと重ならない、胚性マクロファージの忠実なマーカーとして同定されている。細菌貪食のライブイメージングのための我々は、MPEG1プロモーターは、マクロファージ14に蛍光タンパク質の発現を駆動するトランスジェニック系統を使用していました。これらのトランスジェニックラインのいずれかMPEG1プロモーターfを持っているGFP遺伝子を直接使用したり、MPEG1プロモーターは遺伝子に融合したGAL4認識配列(UAS、上流配列を活性化する)2番目の遺伝子を活性化する酵母GAL4転写因子の発現を駆動する2成分系を採用しています。血島注入(プロトコル5; 図1A)は、ときに正しく実行され、細菌はすぐに血液循環を通って流れると、胚全体に広がるでしょう。比較的大きな、明るい蛍光灯DS-REDラベルS.の普及ネズミチフス菌は、多くの細菌は蛍光マクロファージ( 図3B-C)によって貪食されている2 HPIショーでステレオ蛍光顕微鏡( 図3A)と、共焦点イメージングと直接撮像することができます。野生型S.のようにわずか25 CFUの注入ネズミチフス 、致死的な感染症になりながら、病原性の細菌と同様の用量このようなRAの列車は、胚の免疫システム3でクリアすることができます。 250 CFUの注入量は、Sに転写応答を決定するために使用されたゼブラフィッシュ胚とネズミチフス菌感染症強力な炎症誘発性遺伝子発現応答の15の誘導を示した。対照的に、Mの静脈注射marinum菌は、強力な炎症誘発性応答を誘発しますが、感染したマクロファージが結核2の特徴である肉芽腫の初期段階として考えられているタイトな凝集体を形成する持続感染につながることはありません。 dpiはmCherry標識M.の細胞内増殖を示しています。5時gl22 14行目:Tgのような肉芽腫のような集合体(EGFP MPEG1)の共焦点イメージング緑色蛍光マクロファージ( 図3D-E)内側marinum菌

OT感染症の彼女のルートは、さまざまな目的のために有用である。細菌は、マクロファージを欠いている区画は32 HPF( 図1C)において、後脳の脳室に注入することができます。 20から100 mCherry標識M.の注入このコンパートメントにmarinum菌は、細菌( 図4A)を貪食マクロファージによって急速な浸透につながります。生得的な免疫細胞の指示への移行を検討するもう1つの方法は、尾筋( 図1D)に細菌の注入です。しかし、尾の筋肉注射は、それ自体によって白血球のいくつかの魅力を引き出すことが組織の損傷の原因となります。注意深く耳胞( 図1E)に少量の(0.5-1 NL)に注入したときにそのような創傷応答を回避することができます。 i114 16行目、S.の約20 CFUの注入:Tgを(EGFP MPX)を使用して、ここに示すように耳胞にネズミチフス菌は、3 HPIでの好中球の魅力につながる( 図4E)で観察されていない状態。白血球浸潤に耐性があるように見える脊索は、Mの成長のための寛大なコンパートメントです。他の組織7に注入されたときに強く減衰さmarinum変異体、( 図4F)。 M.の最後に、初期の注入胚の卵黄にmarinumは、全身感染を達成するための代替方法を提供します。我々は、一般的に16細胞期( 図1G)の周りに、これらの注射を実行しますが、卵黄に細菌注射も(1000細胞期まで)後の段階で行うことができ、またはそれ以前のバージョン(1〜8細胞期)の共同注射morpholinos 8。 20から40 CFU、Mの投与量の以下の卵黄注射marinum菌は、従来の時に観察されたものと同様の胚組織およびフォーム肉芽腫のような凝集体を数日間にわたって広がる静脈内注入法8;( 図4G)。卵黄注入法は、S.には適していませんネズミチフス菌は、感染症、卵黄の急速な成長が早期に致死性を引き起こすため。 M.ための卵黄の感染方法それは注射ロボット8を使用して自動化することができますので、marinum感染症は、高スループットアプリケーションのために有用であろう。

図1
図1。ゼブラフィッシュ胚で全身または局所の感染を確立するために使用される注入法の概要について説明します。(AB)の急速な全身感染を確立するための静脈注射が1 DPF()またはキュビエのダクトで後部に血島で尾静脈内に実行されます。 2から3 DPF(B)。 (CE)マクロファージと好中球走化性を研究するための局所注射は、1 DPF(C)で後脳の脳室に実行されます。、1-2 DPF(D)または2〜3 DPF(E)で耳胞における尾筋。 (F)食細胞に明らかにアクセスできない感染を作成するための注射は1-2 DPFで脊索に実行されます。 (G)注射は、M.として成長の遅い細菌を早期に全身感染を作成するmarinumは 16から1000の細胞の段階で卵黄に行うことができます。すべての画像はライカDFC420カメラ(ライカ10446307 0.8倍)に接続されたライカM165C、PLANAPO 1.0Xで撮影したものです。

図2
図2。髪のループツール 。人間の髪の毛の部分は、パスツールピペットの開口部にループとして挿入され、スーパー接着剤、またはティップ-EXのある場所に固定されている。これは、静かに壊れやすいゼブラフィッシュの胚を操作するための便利なツールを提供しています。

図3
図3。の静脈注射赤色蛍光ネズミチフス菌およびマイコバクテリウムmarinum。DS-RED-標識されたS.ネズミチフス菌 SL1027細菌(AC)とmCherry標識M. s1999t(AC)またはTgが(MPEG1:EGFP)28gl22(DE)ゼブラフィッシュの胚:TG(楓UAS-E1B)gl24:marinum Mma20細菌(DE)は、Tgの血島(GAL4-VP16 MPEG1)に注入したHPF。 S.の普及を示す(A)ステレオ蛍光と明視野オーバーレイイメージ2 HPI(ライカDFC420CカメラとライカMZ16FA顕微鏡)での血液循環のネズミチフス菌 。赤いS.を示す(BC)共焦点Z-スタック投影ネズミチフス菌は、2 HPI(ライカTCS SPE、HCX APO対物レンズ40×0.8 NA)にある緑色のマクロファージによって貪食。まだ外である細菌も観察することができます。 Mを含む肉芽腫のような集合体を示す(D)焦点Z-スタック投影5解像度(ライカTCS SPE、HCX APO 40倍でmarinum Mma20感染および非感染マクロファージ0.8 NA)。赤の緑とバクテリアのマクロファージ。細胞内M.、個々のマクロファージの(E)共焦点Z-スタック投影(緑) marinum菌 (赤)。白い四角形でDに示されている領域は、高倍率の対物レンズ(ライカTCS SPE、HCX PL APO 63x 1.2 NA)で撮像された。スケールバー:20μmである。

図4
図4。ゼブラフィッシュ胚の感染の代替ルート(A)mCherry標識M. marinum Mma20細菌は、32 HPFにおける後脳室に注入した。蛍光と5 HPI(ライカTCS SPE、HCX PL FLUO TAR 40.0x 0.7 NA)でマクロファージによって貪食mCherry標識細菌を示す透過オーバーレイイメージ。 (B)S.ネズミチフス菌は 1 DPFで尾の筋肉に注入した。注射部位(白丸)の骨髄細胞の魅力は、fによって3 HPIで示されている(C)、in situハイブリダイゼーション4 luorescent uninjected胚でこの形態サイトには骨髄細胞は、通常ありません一方。胚はこの段階で成熟した好中球を含んでいませんが、骨髄細胞の2つの集団を区別することができ、好中球マーカーMPX(緑)(ライカTCS SPE、HC PL FLUOTAR 10.0xを表現するマクロファージマーカーmfap4(赤)と1を表現する1 0.3 NA)。細菌の蛍光in situハイブリダイゼーションの手順の後に失われています。 (D)DS-RED-標識されたS. 2 DPFでi114ゼブラフィッシュ:ネズミチフス菌、Tgの耳胞(EGFP MPX)に注入した。ステレオ蛍光と明視野のオーバーレイイメージMPXことを示している:EGFP:TG(MPXの耳胞へのPBS(E)に対し、制御インジェクション、EGFP標識した好中球細胞を3 HPIに感染した耳胞(点線の楕円)に魅了されてい)i114 ゼブラフィッシュは、感染していない耳のVEに好中球の引力が表示されませんsicle(点線の楕円)(ライカDFC420CカメラとライカMZ16FA)。 (F)M. mCherry標識弱毒E11 eccCb1 :: TN変異株17 marinum菌は1 DPFで脊索に注入した。脊索内の増殖は5解像度(DC500カメラでライカMZ16FA顕微鏡)で撮影されました。 (G)M. mCherry標識血液やリンパ管の内皮細胞にGFPを発現ライン:marinum E11菌はTgが(EGFP fli1a)の16細胞期のゼブラフィッシュ胚の卵黄に注入した。尾部領域における感染細胞の肉芽腫のような凝集体の形成は5解像度(; 8から画像ライカDFC420CカメラでライカMZ16FA顕微鏡)で観察されています。

Discussion

この資料に記載されている感染方法は、頻繁に自然免疫遺伝子や細菌の病原性遺伝子1の機能を研究するために使用されています。静脈内マイクロインジェクション法(プロトコル5および6.1)は、そのような研究のために最も頻繁に使用されています。後部血島で尾静脈には、1日齢の胚の静脈注射のための最も便利な場所です。尾静脈は後の段階で浸透することはより困難になるにつれ、我々は2-3 DPFにおける胚の静脈内注射部位としてキュビエ管を好む。すべてのケースでは、CFUカウントのためのメッキ注入接種によってチェックされるべき細菌の一貫した数字との胚を注入することが重要です。次の側面は、再現性の注射を達成するために考慮する必要があります。第一に、高品質のガラスマイクロキャピラリー注射針を持っていることが不可欠である。針先が大きすぎる場合は、インジェクションは発生する出血のために十分な大きさの穿刺孔を作成します。注入された細菌は、血液循環の外に流れます。第二に、細菌が血液循環に直接注入する必要があります。針の先端が卵黄嚢の拡張子への注入液のスプレッド静脈内またはそうでない場合であれば、胚は実験から破棄しなければなりません。第三に、Mを注入するためのキャリアとしてPVP40を使用して、 marinumはガラス針に沈んでから細菌を防ぐことに役立ちます。 PVP40は、注射の期間中、より再現性の接種の結果、懸濁液の均質性を向上させます。 PVP40もS.ために使用することができる大きいサイズや細菌の明るい蛍光が実験中に注射接種上のビジュアルコントロールを許可しているので、 ネズミチフス菌の注射が、ここではそれほど重要ではありません。注射を実施するための我々は、フェノールレッド染料(1%v / v)の、または1μmの異なる色(Invitrogen社製)で利用可能な蛍光球の使用をお勧めします。技術が習得されれば、約30 minutを取るESは、アガロースプレート上胚を合わせ、細菌の注入量を調整するために必要な時間を含めて、50から100の胚を注入する。

血島(プロトコル5)に、またはキュビエ(プロトコル6.1)のダクトに静脈内注射が最も一般的に使用されていますが、このビデオ資料に記載されている感染症の代替ルートは、(プロトコル6.2、6.3、マクロファージおよび好中球走化性の研究に有用であることが分かった、および6.4)、弱毒菌株(プロトコル6.5)の成長を研究するために、高スループットアプリケーションのためのゼブラフィッシュ感染モデル(プロトコル6.6)4-8を適応させる。に記載のマイクロインジェクション法もウイルス18、19、真菌の胞子14、20または原生動物の寄生虫(マリアForlenza、私信)の注射のために適用することができます。このビデオ資料に記載されている注射の手続きに便利な付加はzebrに細菌の皮下注射のために最近では説明した手順です。afish胚21。この手順は、組織の表面に効率的に巻き込む細菌に見つかっていたが好中球による細菌の貪食を研究するために適用され、マクロファージとは対照的に、血液中にまたは液体で満たされた体腔への注入時に細菌を貪食することが事実上できませんでした。皮下注射の胚については、このビデオ資料に記載されている尾の筋肉注射の場合と同様に配置されていますが、針が体節を介して細菌を注入するだけで皮膚の下に挿入されます。

マイクロインジェクションは、本質的に感染の人工的なルートであることを考慮することが重要です。しかし、初期の胚は、細菌性病原体に対する外部被曝に対して高い耐性があります。実際には、胚を細菌懸濁液に浸されている液浸アッセイは、我々の手22の再現性はありません。いくつかの胚は、浸漬に感染するかもしれませんが、我々は、死亡率や急行に大きな変化を観察しているこのようなアッセイの個々の胚の間に炎症性マーカー遺伝子のイオン。この資料に記載されているマイクロインジェクション方法は再現性の感染症を達成し、宿主生来の免疫細胞と細菌の相互作用を研究するのに特に有用である。個々の胚で細菌感染を定量化するための効率的なアプローチは、カスタムメイド、専用の画素の定量化ソフトウエア17、23に感染した胚の蛍光画像を分析することです。このアプローチは、感染した胚のめっき後のCFUカウントの結果とよく相関することが示されている。同様に、胚当たりの白血球数の相対的変化は、トランスジェニック白血球フルオロフォアレポーターラインのデジタル画像解析によって定量化されていますが、このアプローチでは感染24〜ホスト白血球産生の反応を定量化するにも適切でしょう。

宿主自然免疫遺伝子の機能について説明し、感染モデルを組み合わせることにより、 生体内で効率的に調べることができますモルホリノノックダウンした。 Morpholinosは、特定のRNAを標的とし、このジャーナル10、25の他のビデオの記事に示されているように、1細胞期のゼブラフィッシュ胚に注入する遺伝子産物の発現を軽減する合成アンチセンスオリゴヌクレオチドである。モルホリノノックダウンの研究では、比較するすべての胚グループは、細菌注射の前に正しく上演されていることを非常に重要である。胚は時間の経過とともにますます有能になる発展途上の免疫システムを持っているので、これは特に重要です。

ゼブラフィッシュ胚では、主要な先天性免疫のサブセット、マクロファージおよび好中球を区別するために現在利用可能ないくつかのトランスジェニックレポーターラインがあります。 MPXLYZプロモーター好中球レポーターライン16、26、27を生成するために使用されており、csf1r(FMS)MPEG1プロモーターは、マクロファージの記者14、28を生成するために使用されました。一方、CSF1R(FMS)は、さらにMPEG1発現がマクロファージで排他的ですが、xanthophoresで表されます。このビデオの記事で示したように、最近開発されたMPEG1レポーターラインはマクロファージによるイメージング細菌貪食のために非常に便利です。

Disclosures

著者らは、開示することは何もありません。

Acknowledgments

著者は、有益な議論のために魚の世話のために、図4、ウルリケNehrdichとデービー·デ·ウィット内の画像、および他のラボメンバーのチャオ崔、フロア·デ·コート氏、エスターのストゥープとラルフ·カルバリョに感謝します。この作品は、経済や教育·文化·科学省のオランダ省、欧州委員会第7次フレームワークプロジェクトZF-HEALTH(健康F4-2010から242048)、欧州マリー·キュリーのスマートミックス·プログラムでサポートされています初期研修ネットワークFishForPharma(PITN-GA-2011から289209)、およびオーストラリアNHMRC(637394)で。オーストラリアの再生医学研究所は、ビクトリア州政府とオーストラリア政府からの補助金によってサポートされています。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Phenol Red Sigma-Aldrich P0290
Glycerol Sigma-Aldrich 228210
Difco Middlebrook 7H10 agar BD Biosciences 262710
BBL Middlebrook OADC Enrichment BD Biosciences 211886
Difco Middlebrook 7H9 Broth BD Biosciences 271310
BBL Middlebrook ADC Enrichment BD Biosciences 211887
Tween 80 Sigma-Aldrich P1754
Polyvinylpyrrolidone (PVP40) Calbiochem 529504
N-Phenylthiourea (PTU) Sigma-Aldrich P7629
Ethyl 3-aminobenzoate methanesulfonate salt (Tricaine) Sigma-Aldrich A5040
Methyl cellulose Sigma-Aldrich M0387
SeaPlaque Agarose (low melting point agarose) Lonza Inc. 50100
FluoSpheres (1.0 μm, red fluorescent (580/605)) Invitrogen F8821
FluoSpheres (1.0 μm, yellow-green fluorescent (505/515)) Invitrogen F8823

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References

  1. Meijer, A. H., Spaink, H. P. Host-pathogen interactions made transparent with the zebrafish model. Curr. Drug Targets. 12, 1000-1017 (2011).
  2. Davis, J. M. Real-time visualization of mycobacterium-macrophage interactions leading to initiation of granuloma formation in zebrafish embryos. Immunity. 17, 693-702 (2002).
  3. vander Sar, A. M. Zebrafish embryos as a model host for the real time analysis of Salmonella typhimurium infections. Cell Microbiol. 5, 601-611 (2003).
  4. Zakrzewska, A. Macrophage-specific gene functions in Spi1-directed innate immunity. Blood. 116, 1-11 (2010).
  5. Le Guyader, D. Origins and unconventional behavior of neutrophils in developing zebrafish. Blood. 111, 132-141 (2008).
  6. Herbomel, P., Thisse, B., Thisse, C. Ontogeny and behaviour of early macrophages in the zebrafish embryo. Development. 126, 3735-3745 (1999).
  7. Alibaud, L. A Mycobacterium marinum TesA mutant defective for major cell wall-associated lipids is highly attenuated in Dictyostelium discoideum and zebrafish embryos. Mol. Microbiol. 80, 919-934 (2011).
  8. Carvalho, R. A high-throughput screen for tuberculosis progression. PLoS One. 6, 16779-16779 (2011).
  9. van der Sar, A. M., Spaink, H. P., Zakrzewska, A., Bitter, W., Meijer, A. H. Specificity of the zebrafish host transcriptome response to acute and chronic mycobacterial infection and the role of innate and adaptive immune components. Mol. Immunol. 46, 2317-2332 (2009).
  10. Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function. J. Vis. Exp. (25), e1115-e1115 (2009).
  11. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Dev. Dyn. 203, 253-310 (1995).
  12. Westerfield, M. The Zebrafish Book. A Guide for the Laboratory Use of Zebrafish (Brachydanio rerio). , The University of Oregon Press. Eugene. (1993).
  13. Gutzman, J. H., Sive, H. Zebrafish Brain Ventricle Injection. J. Vis. Exp. (26), e1218-e1218 (2009).
  14. Ellett, F., Pase, L., Hayman, J. W., Andrianopoulos, A., Lieschke, G. J. mpeg1 promoter transgenes direct macrophage-lineage expression in zebrafish. Blood. 117, 49-56 (2011).
  15. Stockhammer, O. W., Zakrzewska, A., Hegedus, Z., Spaink, H. P., Meijer, A. H. Transcriptome profiling and functional analyses of the zebrafish embryonic innate immune response to Salmonella infection. J. Immunol. 182, 5641-5653 (2009).
  16. Renshaw, S. A. A transgenic zebrafish model of neutrophilic inflammation. Blood. 108, 3976-3978 (2006).
  17. Stoop, E. J. Zebrafish embryo screen for mycobacterial genes involved in the initiation of granuloma formation reveals a newly identified ESX-1 component. Dis. Model Mech. 4, 526-536 (2011).
  18. Levraud, J. P. Identification of the zebrafish IFN receptor: implications for the origin of the vertebrate IFN system. Journal of Immunology. 178, 4385-4394 (2007).
  19. Levraud, J. P., Colucci-Guyon, E., Redd, M. J., Lutfalla, G., Herbomel, P. In vivo analysis of zebrafish innate immunity. Methods Mol. Biol. 415, 337-363 (2008).
  20. Brothers, K. M., Newman, Z. R., Wheeler, R. T. Live imaging of disseminated candidiasis in zebrafish reveals role of phagocyte oxidase in limiting filamentous growth. Eukaryot. Cell. 10, 932-944 (2011).
  21. Colucci-Guyon, E., Tinevez, J. Y., Renshaw, S. A., Herbomel, P. Strategies of professional phagocytes in vivo: unlike macrophages, neutrophils engulf only surface-associated microbes. J. Cell Sci. 124, 3053-3059 (2011).
  22. van Soest, J. J. Comparison of static immersion and intravenous injection systems for exposure of zebrafish embryos to the natural pathogen Edwardsiella tarda. BMC Immunology. 12, 58-58 (2011).
  23. Adams, K. N. Drug tolerance in replicating mycobacteria mediated by a macrophage-induced efflux mechanism. Cell. 145, 39-53 (2011).
  24. Ellett, F. L., Lieschke, G. J. Computational quantification of fluorescent leukocyte numbers in zebrafish embryos. Methods in Enzymology. , (2011).
  25. Yuan, S., Sun, Z. Microinjection of mRNA and Morpholino Antisense Oligonucleotides in Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (27), e1113-e1113 (2009).
  26. Mathias, J. R. Resolution of inflammation by retrograde chemotaxis of neutrophils in transgenic zebrafish. J. Leukoc. Biol. 80, 1281-1288 (2006).
  27. Hall, C., Flores, M. V., Storm, T., Crosier, K., Crosier, P. The zebrafish lysozyme C promoter drives myeloid-specific expression in transgenic fish. BMC Dev. Biol. 7, 42-42 (2007).
  28. Gray, C. Simultaneous intravital imaging of macrophage and neutrophil behaviour during inflammation using a novel transgenic zebrafish. Thromb. Haemost. 105, 811-819 (2011).

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免疫学、問題61、ゼブラフィッシュ胚、先天性免疫、マクロファージ、感染症、サルモネラ属、マイコバクテリウム、マイクロインジェクション、蛍光イメージング、
細胞内細菌性病原体を持つゼブラフィッシュ胚の感染
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Benard, E. L., van der Sar, A. M.,More

Benard, E. L., van der Sar, A. M., Ellett, F., Lieschke, G. J., Spaink, H. P., Meijer, A. H. Infection of Zebrafish Embryos with Intracellular Bacterial Pathogens. J. Vis. Exp. (61), e3781, doi:10.3791/3781 (2012).

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