Summary
Das Moxi Z Miniatur automatisierte Zelle Zähler ist ein neuartiges Instrument, das die Coulter-Prinzip kombiniert mit der patentierten Dünnschicht-Sensor-Technologie und einer proprietären Software-Algorithmus, um Sizing durchführen und das Zählen von einem breiten Größenbereich der Partikel sowie auf die allgemeine Gesundheit der monodispersen bestimmen Säugerzellkulturen. Dieses Protokoll beschreibt die Verwendung dieses Instruments zum Zählen und Überwachung des Gesundheitszustands der Zellkulturen.
Protocol
1. Vorbereitung der Proben
- Verdünnen der Zellsuspension mit ORFLO Verdünnungsmittel oder einem geeigneten Verdünnungsmittel, so daß die Zellkonzentration im Arbeitsbereich des Instruments (3.000 bis 500.000 Zellen / ml für den Typ M-Kassette, oder 3.000 bis 2.500.000 Zellen / ml für Typ S-Kassette) ist.
- Eine Verdünnung von 1:5 bis 1:20 (Typ M-Kassette) oder ohne Verdünnung bis 1:5 Verdünnung (Typ S-Kassette) ist für die meisten Säugetier-Zelllinien empfohlen, aber die entsprechende Verdünnung wird nach Zelltyp und Aussaatdichte abhängen. Das Volumen für eine genaue Zählung erforderlich ist ungefähr 75 ul.
2. Die Proben laufen
- Drehen Sie das Moxi Z durch Drücken der Power-Taste und die Home-Bildschirm wird angezeigt.
- Drücken Sie das Tablett ab und legen Sie eine Kassette in das Moxi Z. Die Pipette 75μL Probe ... wird angezeigt.
- Pipettieren Sie 75 &mgr; l Probe in die Einfüllöffnung der Kassette (blaues Ovalbeschriftet 1 oder 2, je nachdem, welcher Ende der Kassette wurde in das Gerät eingesetzt). Dies sind die Einweg-Kassetten, die für 2 Tests verwendet werden können. Hinweis: Setzen Sie die Pipettenspitze direkt in den Laden gut bei ~ 45 °-Winkel, so dass die Spitze unter der vorderen Lippe der gut gefangen wird. Beim Dosieren, ist es wichtig, dass das Vakuum nicht "weiterkommen" der Abgabe der Flüssigkeit wie Lufteinschlüsse verursachen könnten, um die Kassette geben. Es wird empfohlen, eine kleine Kugel (die Größe der Eintrag well) flüssiger Form über die auch während der Abgabe haben.
- Zum Zählen meisten Säugetierzellen, berühren Sie den Bildschirm irgendwo zu beginnen. Für die Zählung sehr kleiner Teilchen (4 bis 8 um mittlere Durchmesser für Typ M und um 08.03 durchschnittlichen Durchmesser für Typ S), kann die Moxi Z in Small Particle-Modus ausgeführt werden. Hinweis: die Kassette Typ wird in der schwarzen Leiste am oberen Rand des Bildschirms angezeigt. In diesem Modus setzt Moxi Z den Durchmesser Skala auf 2 bis 10 um als Standard und führt die Anzahl usingen optimierten Parameter für den Nachweis von kleinen Zellen. Drücken Sie die TOUCH HIER Small Particle Mode-Taste (schwarzes Quadrat), um den Test zu starten und laufen in diesem Modus.
- Das Moxi Z beginnen Sie den Test und die Zellzahl Ergebnisse werden in ca. 8 Sekunden (Typ M-Kassette) oder 15 Sekunden (Typ S-Kassette) abgeschlossen.
- Die Curve Fitting und MVI Berechnungen beginnen automatisch und erfordert nur ein paar zusätzliche Sekunden. Wenn ein geeigneter Sitz gefunden wird, werden die Ergebnisse dann automatisch auf dem Bildschirm angezeigt werden.
- Um den Standard-Gating Erwerb Modus vorzunehmen, drücken Sie die Kurvenanpassung Graf-Taste, um in Gating-Modus umzuschalten.
- An diesem Punkt kann die Kassette aus dem Gerät entfernt werden.
3. Verwalten von Daten
- Wenn AutoMode Skalierung ausgeschaltet ist, werden die Ergebnisse zunächst für eine Kurvenanpassung Zählung auf einer Skala von 2-34 Durchmesser um (Typ M-Kassette) oder 2-26 μ angezeigtm (Typ S-Kassette). Wenn Automode Skalierung ist, dann wird die Moxi Z automatisch in die Skala der horizontalen Achse (x-Achse) auf den Bereich, der der Breite der Kurvenanpassung Bevölkerung am nächsten ist und gleichzeitig alle Kurvenanpassung Daten angezeigt werden.
- Wenn AutoMode Skalierung ausgeschaltet ist, um manuell die Ergebnisse mit einer höheren Auflösung, berühren Sie das Symbol um 26.02 (Typ M) oder das Symbol um 18.02 (Typ S). Hinweis: Die Kassette Typ wird in dem blauen Feld oben links auf dem Bildschirm angezeigt. Dies wird empfohlen, beim Zählen kleinere Zellen oder Partikel, sowohl die Kurvenanpassung Fähigkeiten sowie die Fähigkeit des Benutzers, um visuell zu unterscheiden Nuancen der Daten zu verbessern.
- Bei Erhöhung des horizontalen Auflösung, wird die Schaltfläche Skalierung dynamisch anpassen, um für das Radfahren zwischen den zur Verfügung stehenden x-Achse Skala reicht erlauben: 2-34, 2-26, 2-18 und 2-10 um für den Typ M-Kassette; oder 2 -26, 18.02, 10.02 und um für die Type S-Kassette. Diese Funktion ist nur AvailaZweidrahtleitung unmittelbar nach einer Zellzahl.
- Zählen Sie Informationen (Zellen / ml) für die Kurve-fit oder gated Region ist in einem schwarzen Kasten unter der linken Seite des Histogramms angezeigt. Mittlere Zellgröße beruhen in dem schwarzen Kasten unter der rechten Seite des Histogramms angezeigt.
- Der MVI-Wert ist ein blaues Feld oben rechts im Histogramm angezeigt. Wenn der Test in kleinen Partikel-Modus ausgeführt wurde, wird die MVI keine Anwendung und wird als "MVI = SPM" angezeigt werden. Zusätzlich, wenn die Konzentration der Zellen außerhalb des MVI Betriebsbereich, eine Botschaft der "MVI = Out of Range" wird angezeigt.
- Um das aktuelle Histogramm speichern, berühren Sie die Fertig-Symbol. Dieser speichert die Daten mit dem Namen "Test XXX" wobei XXX die entsprechenden Prüfnummer.
- Um manuell Tor des Histogramms, berühren, um die Kurve Fit Zählergebnisse Taste umzuschalten. Damit ist die Standard-Gating Erfassungsmodus. Dann schieben Sie die blau-Gating-Marker, die Tore gesetzt, oder tippen Sie the Pfeile links und rechts (diese erscheint nach Berühren der blau-Gating-Marker) für feine Tor Anpassungen werden nur die Zellen zwischen den Markierungen werden gezählt. Das Histogramm vertikale Skala wird automatisch basierend auf der Kurve-fit Bevölkerung Amplitude skaliert. Um diese vertikale Skala einstellen, streichen Sie den Bildschirm nach oben oder unten in der Histogramm-Region.
- Berühren Sie die Gated Graf Ergebnisse, um die Anzeige zu Kurvenanpassung Modus zurückzukehren und Kurvenanpassung Modus den Standard-Erfassungsmodus.
- Dann drücken Sie die Fertig-Symbol, um die Ergebnisse zu speichern und zum Startbildschirm zurück. Um die Ergebnisse zu löschen, drücken Sie auf das Symbol Löschen jederzeit dauerhaft zu löschen, die Ergebnisse des Tests.
4. Analyse von bereits erfassten Daten
- Um einen gespeicherten Test zu öffnen, drücken Sie die Histogramm-Symbol auf dem Home-Bildschirm.
- Ikonen für bis zu neun gespeicherten Histogramme werden auf dem Bildschirm angezeigt werden.Drücken Sie auf das entsprechende Symbol für den Test von Interesse oder drücken Sie die Page Up oder Page Down Symbole, um weitere Testergebnisse anzuzeigen.
- Jedes Histogramm wird entweder in der Curve Fit Count-Modus oder Gated Count-Modus geöffnet werden, je nachdem, wie es gespeichert wurde. In Gated Count-Modus können Gating Marker positioniert, indem jede Markierung blau-Gating unabhängig Wünsche offen. Auto-Tor durch Berühren Sie auf die gewünschte Spitze. Berühren Sie, um zwischen dem Grafen und Gated Curve Fit Graf Modi zu wechseln.
- Drücken Sie die Zoom-und Unzoom Symbole, um die vertikale Skalierung des Histogramms einstellen. Die vertikale Skala kann auch durch vertikal einen Finger über das Display nach oben (zu erhöhen) oder unten (leiser) direkt geändert werden.
- Drücken Sie die Löschen-Symbol dauerhaft zu löschen, die Ergebnisse des Tests.
- Drücken Sie die Fertig-Symbol, umschließen Sie die Testergebnisse und kehren Sie zum Startbildschirm zurück. (Hinweis: Zoom-Ansicht nicht gespeichert werden.)
5. Übertragen von Daten an einen PC
- Daten können auf einen PC mit der Orflo Moxichart Anwendung oder über USB-Transfer, indem Sie das Moxi Z USB-Kabel an einen PC oder Mac übertragen werden. Für Bluetooth-Übertragung (MoxiChart), zuerst die Bluetooth-ID des Geräts, indem Sie die Bluetooth-Symbol auf dem Home-Bildschirm des Moxi Z-Einheit.
- Auf dem Computer, öffnen Sie die MoxiChart Anwendung und klicken Sie auf das Bluetooth-Symbol in der oberen rechten Ecke. Dann wählen Sie das Gerät, das mit dem Bluetooth-ID des Moxi Z entspricht, und wählen Sie einen Zielordner für die hochgeladenen Dateien.
- Moxichart wird automatisch übertragen Sie alle Dateien in das angegebene Verzeichnis über die Bluetooth-Verbindung.
- Dateien per Bluetooth (MoxiChart) oder USB übertragen kann geöffnet werden und Analysedirekt mit der Anwendung MoxiChart zed oder, weil sie formatiert sind. csv-Dateien, können sie direkt in Microsoft Excel oder andere Programme Datenanalyse werden für zusätzlich / custom Analyse eröffnet.
6. Repräsentative Ergebnisse
Um die Präzision und Genauigkeit des Moxi Z beurteilen, Grafen von HEK-293 Zellen, HeLa-Zellen, CHO-K1-, Hefe-, Jurkat E6-1-Zellen, PC12-Zellen, und Bead-Suspensionen mit Konzentrationen im Bereich von 0-500,000 Zellen präzise kalibriert / ml (Typ M Kassette) und 0-2-2.5e 6 Zellen / ml (Typ S-Kassette) wurden gezählt und verglichen mit einem Coulter Z2 und die Moxi Z. Alle Säugerzellen wurden von der American Type Culture Collection (ATCC) erhalten und kultiviert wie zuvor beschrieben, 11.07. Kurz gesagt, wurden Zellen in Suspension in 75 mm 2 Gewebekulturflaschen mit Kern Medien RPMI 1640 (Jurkat E6-1-, PC12), MEM (HEK-293-, HeLa-Zellen) oder F12K (CHO-K1-Zellen) kultiviert. Alle Medien wurden ergänzt mit10% fötalem Rinderserum und 100 U penicillin/100 ug Streptomycin. Die Flaschen wurden in einem Inkubator bei 37 ° C mit 5% CO 2 gehalten. Die Zellen wurden alle 3 Tage passagiert. Hefezellen (X5, C. albicans, Vin 13) gespendet wurden und sofort verwendet, wie zur Verfügung gestellt. Erstmuster Konzentrationen von ~ 500.000 Zellen / ml für den Typ M-Kassette Daten und ~ 2-2.5e 6 Zellen / ml für die Type S-Kassette wurden unter Verwendung des Coulter Z2. Nachfolgende theoretische Konzentrationen wurden durch serielle Verdünnungen mit physiologischer Puffer (Isoton II oder Hanks Balanced Salt Solution) vorbereitet. Bei jeder Konzentration wurden identische Proben von beiden Systemen gemessen und gegen einander. Wie in 2 ersichtlich ist, gab es eine starke lineare Korrelation (Typ M r 2> 0,9886, Typ S r 2> 0,9781) zwischen den Zählungen für alle Proben. Die Konzentrationen wurden auch zu erwarten / theoretische Zellkonzentrationen sowohl mit dem Moxi Z und der Z2 verglichen (
Um die Genauigkeit zu bestimmen, wurden HEK-293 und HeLa-Zellzahlen unter Verwendung des Coulter Z2, Z Moxi und eines Hämocytometers. Der mittlere Variationskoeffizient (CV, n = 19) der Zellzahlen unter Verwendung des Moxi Z (Typ M-Kassette), Coulter Z2 und eine Zählkammer wurden berechnet mit Lebenslauf von 5 separate Zählungen in den 200.000-300.000 Zellen / ml-Bereich gemessen wird. Die geringe durchschnittliche CV (4) des Moxi Z ist vergleichbar mit der Z2 und steht stellvertretend für die hohe Genauigkeit nur erreichbar mit einem Coulter-basierten Zähltechnologien.
Genauigkeit der Abmessungen des Moxi Z Instrument wurde als nächstes untersucht durch die Messung der erworbenen präzisionskalibriert Polystyrol-Kügelchen. Mittleren Teilchengröße Messungen (n = 5) von Moxi Z wurden gegen Hersteller berichtet Größen aufgetragen. Wie ersichtlich in Abbildung 5, die Moxi Z Messungen konsistent aufeinander abgestimmt die Hersteller Werte mit einem hohen lineare Korrelation (r 2 = 0,9989).
Jenseits von Größe und Anzahl der Informationen, bietet Moxi Z ein Reagenz-freie, allgemeine Beurteilung der Säugetier-Zellkultur Gesundheit mit einem gemeldeten Moxi Viability Index (MVI) Wert. Dieser Index wird aus einem Verhältnis der Anzahl der Zellen in der Population von Interesse mit Bezug auf die gesamten Partikel zählt erzeugt. Um die MVI Messmöglichkeiten zu demonstrieren, wurden MVI Lesungen (Typ M-Kassette) auf Standard-Handbuch und durchflusszytometrische Live / Dead-Messtechnik verglichen. Die Populationen der Toten (<10% lebensfähig) HEK-293-und HeLa-Zellen wurden über Nacht durch Inkubation von lebenden Zellen in einem Nährmedium-frei, Natriumfluorid enthält Verdünnungsmittel (Isoton II, Beckman Coulter) bei 37 ° C erstellt Kontrollierte theoretische Lebensfähigkeit wurden durch Mischen ratiometrisch bekannten Konzentrationen von lebenden und toten Zellen hergestellt. Res.eratung Lösungen wurden für die Lebensfähigkeit Ebenen in zweifacher Ausfertigung mit beiden Hämozytometer Zählungen und Messungen Durchflusszytometer analysiert. Hämocytometer Messungen wurden unter Verwendung eines traditionellen 50/50 Mischung von 0,1% Trypan Blau Lösung und Zellen. Durchflusszytometrie-Messungen wurden unter Verwendung eines Guave PCA-Zytometer (Merck) unter Verwendung des Viacount Reagens und die Hersteller-Protokoll spezifiziert (Merck). Wie in Abbildung 6 dargestellt, waren die Pearson-Korrelationskoeffizient Werte (r 2) "der linearen Anpassung der MVI Daten zu analogen Hämozytometer Lebensfähigkeit Prozentsätze für" HEK-Zellen und HeLa-Zellen r 2 = 0,9937 und r 2 = 0,9728, beziehungsweise. Diese Ergebnisse zeigen, dass dieser Ansatz Kultur Gesundheitsinformationen bietet in einem breiten Spektrum von Zellvitalitäten, die den Vergleich zu den Live / Dead-Messungen mit einem Durchflusszytometer oder Hämozytometer.
Tabellen und Abbildungen (Von Dittami et al, 2011.) 15:
Abbildung 1. Dünnschicht-Coulter-Zählung: Elektrischer Strom wird durch die Zelle Sensing Zone der Dünnschicht-Kassette weitergegeben. Wie Zellen einzelne Datei fließen durch die CSZ, werden die momentanen Erhöhungen der Spannung durch die Moxi Z. gemessen
Abbildung 2. Moxi Z zählt sind vergleichbar mit Coulter Z2 zählt. Gleiche gilt der Zelle und Kügelchen Suspensionen wurden unter Verwendung sowohl eines Coulter Z2 und die Moxi Z. gemittelt Zählwerte (n = 3-4) der Moxi Z zählt wurden in Bezug auf die gezeichneten Coulter Z2 entsprechenden Zählungen und R 2-Werte der linearen Anpassung bestimmt. A) Typ M-Kassette - Konzentrationsbereich von 0 - 500.000 Zellen / ml. B) Typ S-Kassette - Konzentrationsbereich von 0 - 2-2.5e 6 / ml.Error Balken zeigen ± 1 Standardabweichung.
Abbildung 3. Moxi Z Konzentrationsmessungen vs theoretischen Zellkonzentrationen. A) Typ M-Kassette - Theoretische Konzentration Werte wurden aus Verdünnungsreihen von zunächst 500.000 Zellen / ml Probe vorbereitet B) Typ S-Kassette -. 2.5e 6 Zellen / ml Probe - Theoretische Konzentration Werte von Verdünnungsreihen eines anfänglichen 2 hergestellt. Fehlerbalken zeigen ± 1 Standardabweichung.
Abbildung 4. Variationskoeffizient für die Coulter Z2, Moxi Z (Typ M-Kassette) und Hämocytometer. Der mittlere Variationskoeffizient (CV, n = 19) von HEK-293-und HeLa-Zellzahlen für jeden Ansatz wurden mit Lebensläufen aus 5 separaten gemessen berechnet Grafen von HEK-293-und HeLa-Zellen in der 200.000 - 300.000 Zellen / ml-Bereich. Fehlerbalken zeigen ± 1 Standardabweichung.
Abbildung 5. Die Genauigkeit der Messungen mit Partikelgröße Moxi Z-Moxi Z gemessen Perlgröße (Typ M-Kassette) vs Hersteller berichtet Perlgröße. Fehlerbalken zeigen ± 1 Standardabweichung.
Abbildung 6. Kultur Health Assessment mit MVI - Vergleich von MVI-Messungen (Typ M-Kassette) und Guava PCA Viacount Rentabilität im Vergleich zu Visual, Trypan-Blau gefärbten Lebensfähigkeit zählt mit einer Zählkammer.
Discussion
Die zugrunde liegende Implementierung der Coulter-Ansatz kann extrem deterministische der Genauigkeit der Messungen. Ein kritischer Bereich ist die Korrektur der Roh-Zellzahlen für "Zufall Ereignisse" wo zwei oder mehrere Zellen gleichzeitig passieren durch die Öffnung und werden als ein einziges elektrisches Ereignis gemessen. "Der Zufall Ereignisse" dazu beitragen, Fehler, die auf einer Reihe von Faktoren wie Größe der Zellen und Grad der Clusterbildung (Davis et al 1967) 6 variiert. Als ein Ergebnis kann die erforderliche Korrektur für zufällig jeder gegebenen Probe nicht vorhergesagt werden, variiert stark zwischen den Zellen / Partikel-Typen und sogar zwischen verschiedenen Kulturen identische Zelltypen. Etablierte Theorie, erste Veröffentlichung von Coulter verankert, beinhaltet das Aufbringen einer logarithmischen Anpassung der rohen setzt auf der Anzahl der Ereignisse beobachtet und einer empirisch bestimmten, Partikel-Korrekturfaktor, Z. Während die genaue Zählungen kann richtig mit t erreicht werdenseine Korrektur Algorithmus wird in der praktischen Anwendbarkeit aufgrund der großen Variationen in z-Werte zwischen verschiedenen Zelltypen und der damit verbundenen Schwierigkeit genaue Vorhersage der Wert begrenzt. Hier, mit dem "echten" Zellzahl von der Moxi Z Kurvenanpassung in Verbindung mit dem Zusammentreffen Korrekturalgorithmus identifiziert, die Moxi Z dynamisch korrigiert Zufall auf die tatsächliche Konzentration zu erreichen. Wenn auf Ergebnisse, die mit High-End-Coulter Z2 verglichen produzierte das Moxi Z vergleichbar zählt in einem Konzentrationsbereich von 0 - 500.000 Zellen / ml (Typ M-Kassette) und 3.000, - 2-2.5e 6 Zellen / ml (Typ S-Kassette) . Darüber hinaus erzielt die Moxi Z diese Zahl mit einer Genauigkeit ähnlich niedrige Variationskoeffizienten zählt und in einer Präzision im Partikelmessung, die charakteristisch für den Goldstandard, Coulter-Technik in Zellzählung ist.
Darüber hinaus deuten die hier präsentierten Daten, dass die Moxi Z können wertvolle Informationen liefernin Bezug auf die allgemeine Gesundheit der Zellkulturen. Das Moxi Z nutzt die Kurvenanpassung Ansatz mit einer proprietären Software-Algorithmus, um diese Kultur des Gesundheitszustandes festzustellen. Morphologische Veränderungen mit dem Zelltod assoziiert, wie blebbing, auseinander zu brechen, und die Volumenproduktivität Verzerrungen (Kataoka und Tsuruo 1996 Liegler et al 1995, Sheridan et al 1981) 12-14, machen es möglich, die Moxi-Z zu impedimetrischen Unterschiede zwischen unterscheiden leben Populationen und tote Zelle / Schutt Populationen. Die MVI wird durch die Analyse der Kultur / Partikelgrößenverteilung auf die relativen Beiträge der Partikel-Ablagerungen, abgestorbene Zellen geschrumpft, und die Kurve ausgestattete Zellpopulation von Interesse zu identifizieren generiert. Der MVI-Wert spiegelt damit eine Bevölkerung Index oder ratiometrisch Maßnahme der monodispersen Population zählt in Bezug auf das gesamte Teilchen Bevölkerung Profil. Dieser Wert ist dann algorithmisch-based angepasst Bevölkerungsstatistik und empirische Beobachtungen. Because der MVI schaut auf andere Parameter als traditionelle Ansätze Färbung, ist nicht zu erwarten, diese Techniken zu spiegeln, sondern bietet eine wertvolle Alternative Blick in die Gesundheit einer Zellkultur, insbesondere im Hinblick auf den Trümmern und mikrobiellen Verunreinigungen.
Zusammenfassend ist die Moxi-Z Zellzahl-Messgerät ein ultra kleines Tischgerät, das eine präzise und reproduzierbare Tests von Zellzahl, Zellgröße und Gesundheit Zelle mit dem Coulter-Prinzip und Kurvenanpassung Software-Algorithmen mit einer patentierten Dünnschicht-Sensor-Technologie kombiniert wird, liefert . Mit dem Typ M-Kassette ist in der Lage Zählen von Partikeln im Bereich von 4 bis 25 Mikrometer im Durchmesser (dynamischer Bereich von 2 - 34 Mikrometer), in 8 Sekunden. Mit dem Typ S-Kassette ist in der Lage Zählen von Partikeln im Bereich von 3 bis 20 Mikrometer im Durchmesser (dynamischer Bereich von 2 - 26 Mikrometer), in 15 Sekunden. Außerdem führt die Moxi-Z Gesundheitszustandes ohne die Verwendung von Reagenzien. Es ist viel weniger Arbeit intensive und subjektiver als manuelles Zählen. Im Vergleich zu Standard-Coulter-Zählung, die Moxi schneller ist, deutlich kleiner, bietet mehr Informationen, benötigt deutlich weniger Wartung ist einfacher zu bedienen, und ist ein Bruchteil der Kosten.
Disclosures
Gregory M. Dittami und HE Ayliffe sind Angestellte der Orflo Technologies, dem Unternehmen, entwickelt, fertigt und vertreibt das Moxi Z. Richard D. Rabbitt bietet Teilzeit, bezahlt Beratungsexpertise zur Orflo Technologies.
Produktion und freien Zugang zu diesem Artikel wird von Orflo Technologies gesponsert.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| ORFLO Diluent |  ORFLO |
MXA006 | |
| Cassette Dispenser | ORFLO | Stores up to 25 cassettes for convenient dispensing | |
| USB Cable | ORFLO | Connects instrument to PC/Mac or power adapter | |
| Power Adapter (US and EU models only) | ORFLO | Connects USB cable to an AC outlet | |
| USB Flash Drive | ORFLO | Stores Moxi Z software and user manual | |
| Calibration Check Beads | ORFLO | ||
| Electronic Calibration Cassette | ORFLO |
Electronic cassette for verifying proper system operation and calibration |
References
- Fernyhough, M. E., Helterline, D. L., Vierck, J. L., Hill, R. A., Dodson, M. V. Coulter counter use in the enumeration of muscle and fat stem cells. Methods. Cell. Sci. 25, 221-225 (2003).
- Blades, A. N., Flavell, H. C. Observations on the use of the Coulter model D electronic cell counter in clinical haematology. J. Clin. Pathol. 16, 158-163 (1963).
- Morris, T. M. Particle Size Analysis of Beer Solids using a Coulter Counter. J. Inst. Brew. 90, 162-166 (1984).
- Marth, E. H. Electronic Somatic Cell Counting Procedure. Standard Methods for the Examination of Dairy Products. , Amer. Publ. Health Assoc., Inc. 134-140 (1978).
- Parks, L. R., Jurbergs, K. A. Number and size distribution of particles in cellulosic solutions. J. Appl. Polym. Sci. 11, 193-199 (1960).
- Davis, R. E., Green, R. E. Automatic platelet counting with the Couler particle counter. J. Clin. Pathol. 20, 777-779 (1967).
- Dittami, G. D., Rabbitt, R. D. Electrically evoking and electrochemically resolving quantal release on a microchip. Lab on a Chip. 10, 30-35 (2010).
- Nahreini, P., Hanson, A., Prasad, K. High-yield production of recombinant antibody fragments in HEK-293 cells using sodium butyrate. BioTechiques. 34, 968-972 (2003).
- Escuyer, V., Collier, R. J. Anthrax Protective Antigen Interacts with a Specific Receptor on the surface of CHO-K1 Cells. Infection and Immunity. 59, 3381-3386 (1991).
- Isaacs, R. D. Borrelia bugdorferi bind to epithelial cell proteoglycans. J. Clin. Invest. 93, 809-819 (1994).
- Saito, Y., Takahashi, K. Characterization of selenoprotein P as a selenium supply protein. Eur. J. Biochem. 269, 5746-5751 (2002).
- Kataoka, S., Tsuruo, T. Physician Education: Apoptosis. Oncologist. 1, 399-401 (1996).
- Liegler, T. J., Hyun, W., Yen, T. S., Stites, D. P. Detection and quantification of live, apoptotic, and necrotic human peripheral lymphocytes by single-laser flow cytometry. Clin. Diagn. Lab Immunol. 2, 369-376 (1995).
- Sheridan, J. W., Bishop, C. J., Simmons, R. J. Biophysical and morphological correlates of kinetic change and death in a starved human melanoma cell line. J. Cell. Sci. 49, 119-137 (1981).
- Dittami, G. M., Rabbitt, R. D., Ayliffe, H. E. ORFLO Moxi Z: Revolutionizing electronic cell count accuracy and cell viability estimates through curve fitting. Life Science Magazine, VWR International. , Forthcoming (2011).
