Summary
我们提出了一个表达的蛋白质阵列微流控方法。该装置由反应室的数以千计的由微机械阀控制。的微流体装置相配合以印刷的微阵列的基因库。然后，这些基因的转录和翻译的片上，所得的蛋白质阵列中准备实验使用。
Abstract
迅速增长的领域，如系统生物学，需要制定和实施新技术，使大型系统的高吞吐量和高精确度的测量。 ，微流体承诺履行这些要求的，如片上进行高通量筛选实验，当中包括生物化学，生物物理学，和基于细胞的检测1。微流体设备的初期以来，这一领域的显着发展，领导发展的微流体大规模集成2,3。该技术允许用邮资大小的足迹（ 图1）在单个设备上集成的成千上万的微机械阀。我们已经开发出一种高通量微流体平台， 在体外表达的蛋白质阵列（ 图2）PING（蛋白质相互作用网络发生器）产生。这些阵列可以作为一个模板，为许多实验如蛋白质-蛋白质4 5，蛋白质-RNA或蛋白质-DNA 6相互作用。
该装置由成千上万的反应室，单独使用微阵列编程。对齐的微流体设备方案这些印刷的微阵列，每个腔室与一个单一的点，此外，生成使用标准的微阵列斑点技术的微阵列消除潜在的污染或交叉反应性也非常模块化的，允许的蛋白质7，DNA 8，小分子的排列，甚至胶体悬浮液。微流体生物科学的潜在影响是显著的。已经许多微流控芯片为基础的检测提供了新的见解，对生物系统的结构和功能，和微流控芯片领域将继续影响生物。
Protocol
1。设备制造
- 购买DTPA-D SU-8个控制模具和模具SPR220-7流从斯坦福大学的微流体铸造厂（ www.stanford.edu /组/晶圆代工 ）。
- 三甲基氯硅烷（TMCS）蒸汽和10分钟，以促进弹性体释放后的烘烤步骤9公开的硅氧烷模具。
- 基于有机硅弹性体和固化剂（拌匀）在两个不同的比率5:1和20:1的控制和流量模具，分别准备的混合物。的不同比率的多个层进行适当的接合是必要的。
- 倒入5:1 PDMS控制层（约5毫米高）。德加的控制层和烤30分钟，在80°C。旋涂（劳雷尔美国）的20:1的PDMS混合物在2600转，60秒的流动层上，然后在80℃下烘烤30分钟。旋涂机速度优化的阀门致动器的压力为15 psi。更快的纺丝将导致在一个更薄的层具有较低的活化压力和反之亦然。我们所使用的器件有一个限制在控制和25磅10 psi的流中，从基板的剥离，可能会发生上述。
- 从模具中分离控制层。一定要慢慢做，并注意不要削皮SU8模式。然后切围绕其周边的设备和打孔访问控制渠道。
- 对齐的流量和手动控制层的立体镜。开始“通过对准的左上角;按钮阀（控制层）必须是在该反应室（流动层）的中间。接下来，第一行对齐，轻轻地释放控制层的行由行。确保所有的按钮阀是在反应室的中间的地址和输入阀跨越在正确的位置上的流路。本地该过程可重复，直到所有的行都被对齐。最后，释放任何紧张在的PDMS BŸ提升小心翼翼地从边和角。不要提太多或可能发生错位。
- 的温度下烤2小时，在80℃下
- 剪切的周边周围的设备和剥离两个层器件（芯片），从流模具。打孔访问的流路（ 图1）。
2。 DNA排列和装置对准
- 生产合成基因的PCR装配。合成基因组成，T7启动子，核糖体结合位点（RBS），ORF与两个表位标签（每端各一个），和T7终止子4。该基因可以具有不同的长度从100 bp的最多，至少，5,000 bp的。
- 准备的合成基因组阵：制备聚的乙烯glycole（1.25％），D-海藻糖二水合物（125毫克/毫升）的混合物，和分配2微升每反应到384孔板。此解决方案将减少10对齐过程中的DNA不可逆地结合到玻璃上，以及用于可视化。 合成的基因转移到384孔板。一般DNA的浓度范围可以从10纳克/微升100纳克/微升的最终浓度。添加蒸馏水2 O至终体积为20微升（依赖于微阵列和针型）。
- 现货环氧树脂涂层的玻璃基板，使用微阵列上的一系列的合成基因。我们使用微网610（生物机器人技术），SMT-S75硅胶引脚的（并行合成，USA）。联系印刷的DNA，与这些特定的标签，与直径约100μm的玻璃表面上的斑点中的结果。约100个点，每个引脚的负载是足够的。确保对应于所使用的特定的移动设备的列和行间距。我们所使用的装置，包含16列和40行，分别由320微米，680微米的间距。
- 下的立体镜，手动对齐的基因芯片的微流体装置。 DNA斑点应该是在中间的DNA室。通过定位点b的第一行开始的对准的DNA室elow第一行。然后，其余的行线完成整个设备的微调。一旦对准阵列应小心，以减轻任何应力，通过在PDMS本地提起。如果有紧张留在PDMS债券的芯片。
- 最后，债券的载玻片上培养过夜的热板上的移动设备以在80℃下
3。启动与激活设备
- 从计算机上使用LabVIEW驱动的阀门控制层。 LabVIEW的脚本控制了一系列的电磁微阀通过一个电子控制盒（购斯坦福大学微流体铸造）。的电磁阀歧管被连接到压缩空气，控制成在设备上的控制阀的空气流量和压力。
- 将设备连接到的电磁阀歧管，使用柔性塑料管，内部直径为0.02“（聚乙烯）和不锈钢引脚（新英国小管公司）。
- 填充管与DDW和插入销插入的控制层的访问孔。确保每个管被连接到其对应的控制信道。
- 在计算机上运行的LabVIEW应用程序启动控制渠道。我们通过从LabVIEW脚本启动阀，适用于空气压力，这反过来将水推到PDMS控制通道。设置的空气压力至5磅。建议填写的“三明治”的地址阀，以识别有缺陷的设备的控制通道之间的跨会谈。交叉会谈的情况下，控制线的“三明治”的致动将导致到颈部或按钮控制线的致动。这是类似于一个短的电气电路中。与串扰的装置是有缺陷的，不能使用。
- 后，所有的控制通道和阀充满DDW，阀门底漆和意图DY封锁下他们的流动渠道。增加空气压力至15 psi。通过一组的通/断开关连接到个别的电磁阀，控制阀启动从一个LabVIEW程序。每个开关控制一个特定的控制线，通过其相应的电磁阀。开启的开关按钮（在脚本中），将应用于相应的管中的空气压力。的空气压力将推动DDW的控制线中，并会导致在膨胀的微流体阀，阻断的通道下面。关闭控制阀，将释放的空气压力，并随后释放的各流路的阻塞。
- ，以确保所有的阀门都打开，连接管的一个流输入和流量在4-5磅的装置的空气进入。这将释放任何粘性从载玻片上的阀门。
- 最后，该设备是底漆并准备就绪。关闭所有的输入和颈部的阀门，开始表面化学。
- 为了便利的蛋白阵列的表面上的自组装体，并防止非特异性吸附的微流体装置内，表面化学改性：
- 要流过组件，通过该装置，一个新的管连接到一个设备中的流动通道与所需的解决方案。手动歧管的自由侧管连接，并打开空气压力流（5 psi）的。
- 加载加入40μl生物素标记的BSA（1微克/微升）在一个新的管和流量约一半，通过该装置的20分钟，波塞将绑定到的环氧树脂表面。
- 使用的Hepes（50毫摩尔）洗涤未反应的基板彼此之间的不同的表面化学步骤。
- 流25的微升Strepavidin（0.5微克/微升），生物素化的牛血清白蛋白的顶部的20分钟。
- 洗净用Hepes 5分钟。
- 关闭“按钮”的阀和流的其余部分的生物素化的牛血清白蛋白（作为所记述床段），钝化的表面周围的按钮。
- 洗净用Hepes 5分钟。
- 释放的“按钮”阀和流量30μl的五-生物素（0.16微克/微升），20分钟。的抗体将结合到暴露strepavidin;具体创建一个抗His-标签阵列的“按钮”下的面积。
5。蛋白表达
- 在设备上使用兔网织红细胞的快速转录和翻译反应，表达的蛋白质。创建一个数组，在设备上的斑点合成的基因蛋白表达的蛋白质使用。例如，一个这样的用途的蛋白质结合的屏幕。
- 打开'脖子'阀门和流量兔网织红细胞快速加上转录和翻译反应，通过设备到DNA室。下一步，关闭阀“三明治”，并从环境中每个基因的分离。孵育的移动设备在30℃的热板上进行2.5小时细胞表达PR的oteins从DNA室扩散到反应室自发性（脖子阀是打开的）和绑定下的“按钮”阀，通过其C-末端标记的蛋白质固定的抗-His抗体。
- 贴上标签的蛋白质与C-myc基因Cy3标记抗体。的抗体将绑定到其对应表位位于蛋白质的N-末端。
- 确定蛋白质的表达水平与微阵列扫描仪（LS重装上阵，Tecan公司），使用532 nm激光和575 nm发射过滤器。
6。代表性的成果
1。设备制造
根据我们的实验需要的图形设计由AutoCAD创建的设备。该设计的透明薄膜上印刷由一个高分辨率的图像设定部。作为这种透明的光掩模接触光刻。一个表面微机械加工技术，在硅片上的图案刻在T确定用于创建3-D的模板他口罩使用。
硅胶模具铸造制作的有机硅弹性体，聚二甲基硅氧烷（PDMS，SYLGARD 184，道康宁，美国）（ 图1）的微流体装置。每个装置由两个对齐的PDMS层时，流程和控制层。该模具首先接触的三甲基氯硅烷（TMCS，Aldrich公司）蒸汽和10分钟，以促进弹性体释放后的烘烤步骤。基于硅氧烷的弹性体和固化剂的混合物，在两个不同的比为5:1和20:1的控制和流量模具，分别制备。控制层进行脱气并在80℃下烘烤30分钟最初是将流层旋涂（劳雷尔美国）在2600转，60秒，并在80℃下进行30分钟烘烤。控制层分离的模具和冲压控制信道接入孔。接着，对齐的流动层和控制层下立体镜手动和烘烤2小时，在80℃。 2层的移动设备被剥离fROM的流动冲压模具流道检修孔。
2。设备描述
的装置容量的范围可以从500至10,000单位的细胞（ 图2）。该装置由两个层，流层（灰色）和控制层（彩色）。控制层含有多种具有不同功能的阀。的流动层中，每一个单元电池，是由一个DNA和一个反应室，和由三种类型的微机械阀控制;'脖子'，“按钮”，和“三明治”（ 图2A）。有斑点的“合成基因'存放的DNA内室的被阻止从反应室由'脖子'阀（绿色）。套印和机械清洗的表面在反应室中的结合蛋白的是，所执行的“按钮”阀（蓝色）。的“三明治”的阀使每个反应发生在其自己的单元电池（红色）。地址阀门可以分割设备8个独立的部分，differeNT状况分析。另外，控制层含有的输入阀，使选择到的流层中的流体的流动。在的PDMS控制渠道与DDW。当被致动的阀的压力的增加（15 psi）的结果在扩大的PDMS。在其中的膜是足够薄的地方（即控制和流线的交叉），这是足以完全阻断的流线。平均单元电池的高度为10微米，平均单位晶胞体积是小于1，NL。
3。蛋白的表达及检测
蛋白的表达在设备上，利用兔网织红细胞迅速偶联转录和翻译反应（Promega）中。表达的蛋白质在准备有约束力的屏幕中使用的蛋白质（ 图3）的阵列。表达式组合（12.5微升）被加载到该设备，然后涌入的DNA室开放的'脖子'阀门。接下来，“三明治”阀门关闭离开从它的相邻小区和该装置分离的各单元电池在30℃下温育2.5小时的热板上表达的蛋白通过基因室扩散到反应室，在那里它们的C-末端His标记能够结合的抗-His抗体（Qiagen公司制）下的“按钮”阀的蛋白质固定到表面本地化。蛋白与C-myc的Cy3标记（Sigma公司），这势必其对应表位位于蛋白质的N-末端，并贴上标记。蛋白表达水平与微阵列扫描仪（LS重装上阵，Tecan公司），使用532 nm激光和575 nm过滤器。由此产生的蛋白质阵列由不同的蛋白表达水平。一般，约20％的基因库不表达可检测水平。与蛋白质大小无明显相关性，观察3。背景水平进行了测定室，没有发现与DNA。因此，从相应的蛋白质室的信号是由于是n瓦兹或的标记的抗体的非特异性吸附。
图1。芯片制造。（A）模具处理与TMCS蒸汽10分钟。 （B）PDMS浇铸控制和流量硅模具上。 （C）的两个控制和流量模具，在80℃下进行30分钟烘烤。 （D）的控制层的模具去皮，切成一定尺寸和控制进气口被冲。 （E）在控制层对准立视镜下的流层，然后烘烤在80℃下2小时。以平行的PDMS装置制造，一系列的合成基因的microarrayed到环氧树脂涂层玻璃基板（CEL）。 （F）的设备，然后对准捕获的“合成基因”的DNA微阵列内的DNA室。
图2。的照片 （A） 的PING设备。设备的注意事项，ST的两个对齐的PDMS层（控制和流量）。流量层含有的并行DNA和反应室（灰色）由微机械阀（“按钮”，“夹心”，“颈缩”），控制层中的控制。 （B）的层的印刷的微阵列，该方案各DNA室与一个单一的点对齐。这消除了任何潜在的污染。
图3。荧光的蛋白阵列创建与微流控芯片图像印刷点的基因表达的蛋白质内的设备（在DNA腔）被拉低到表面（下面的“按钮”的阀，在反应室中），通过各自的C-末端他的标签。使用C-myc蛋白N-端标签和特异性荧光抗体检测蛋白的表达。不同的信号强度显示不同的蛋白表达水平。联合国斑室作为对照的背景乐“竞争”。
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Discussion
在本文中，我们提出了一个方法代高通量的蛋白质阵列使用微流体平台。上述排列生成是基于微阵列打印的DNA模板， 在体外蛋白质表达的微流体装置内的DNA。
我们的新型微流体平台有几个重要的优点，比目前使用的方法，这使得它有前途和蛋白质组学工具。的一个优点是与膜结合蛋白， 在体外蛋白质合成使用哺乳动物的网织红细胞裂解物在微粒体膜11的存在提供了“自然就好”膜蛋白所需的条件。此外，微流体允许在非常低量的蛋白质的表达和蛋白质纯化是没有必要的。这在传统的方法是最常见的瓶颈。事实上，进一步优化的蛋白质，可以通过以下来实现匹配的在体外大公升溶胞产物的蛋白质，例如E.大肠杆菌裂解液细菌的蛋白质。
微流控允许蛋白的表达量非常低。在我们的具体的例子室容积为1 NL。有两个好处低卷。最明显的一个是降低消耗的试剂和工作能力与稀有材料（即膜蛋白）。另一个显着的优点是，集中的表面上的蛋白质与抗体在这样一个小的体积，使我们能够实现相对高浓度的蛋白质相互作用分析，这将增加检测灵敏度。
该按钮阀具有双重作用。首先，它们用于形成图案下的按钮，在每个腔室的抗体。这允许我们拉下的蛋白质仅根据“按钮，而其余的腔室被钝化。其次，按钮允许机械洗涤和捕获的蛋白质通过位移一定体积的液体下驱动。这种清洗和俘获的平台，增加了整体的灵敏度，可检测出微弱而暂时分子间的相互作用。
最后，微流器件可以很容易地进行自动化，能够使许多平行测量。从而节省了成本，以及随着时间的。我们估计，蛋白质实验，使用PING的费用是约2美分蛋白质，与目前的设备，每个设备的4至10,000实验。这一估算包括制造和材料。因此中，PING具有的潜力，是一种强大的工具一般与特定的优势，如膜蛋白的蛋白质阵列。
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Disclosures
没有利益冲突的声明。
Acknowledgments
这项工作得到了玛丽·居里国际重返社会补助金。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| PDMS- SYLGARD 184 | Dow Corning USA | ESSEX-DC | |
| Chlorotrimethylsilane (TMCS | Sigma-Aldrich | C72854 | |
| Epoxy coated glass substrates | CEL Associates USA | VEPO-25C | |
| Poly ethylene glycole (PEG) | Sigma-Aldrich | 81260 | |
| D-trehalose dihydrate | Sigma-Aldrich | T9531 | |
| Biotinylated-BSA | Pierce, Thermo Scientific | PIR-29130 | |
| Neutravidin | Pierce, Thermo Scientific | 31050 | |
| penta-His-biotin | Qiagen | 34440 | |
| Hepes |  Biological Industries |
03-025-1B | |
| TNT-T7 | Promega Corp. | L5540 | |
| C-myc Cy3 antibody | Sigma-Aldrich | ||
| Control box | Stanford Microfluidics Foundry | ||
| Mold | Stanford Microfluidics Foundry | ||
| Pin | New England Small Tubes Corporation | ||
| Tygon microbore tubing | Tygon | S-54-HL | |
| Microarrayer | Bio Robotics | MicroGrid 610 | |
| Silicone pins | Parallel Synthesis | SMT-S75 |
References
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