Summary
Изотахофореза (ИТП) является надежным электрокинетического разделения и концентрирования техники с приложениями от токсинов обнаружения пробоподготовки. Мы рассматриваем физические принципы ИТП и методологию применения этого метода на два конкретных приложений например: разделения и обнаружения малых молекул и очистки нуклеиновых кислот из Клеточный лизат культуры.
Protocol
1. Физика ИТП
ITP является резкое подвижной границе между ионами, как заряд. Этот метод может быть выполнена с анионными или катионными образцы, но мы портной это введение в анионной ИТП и обратите внимание на те же принципы применимы к катионным ИТП. Мы выбираем LE и TE буфера, что LE ионы имеют более высокую величину эффективной электрофоретической подвижности. Эффективная электрофоретической подвижности, μ = U / E, является коэффициент пропорциональности между приложенным электрическим полем, Е и скорости дрейфа ионов, U 13. Мы устанавливаем диффузного взаимодействия между LE и TE и применять электрическое поле, направленное от высокого проводимости LE зоны с низкой проводимостью TE зоне. Система быстро устанавливается сильный градиент электрического поля на границе ИТП, в связи с неоднородной проводимостью профиля. По его название (от греческого "ISOS" означает "равно", "takhos" означает "скорость"), Т. Л. и ионов путешествия в то же самое, равномерное верости, в результате неоднородном электрическом поле и сохранение текущего (это так называемые "ITP состояние", см. рисунок 1).
Интерфейс ИТП в самозатачивающиеся: LE ионы диффундируют в опыте TE зоны сильного восстановления потока и вернуться к ведущей зоной (и наоборот для ионов ТЕ в зону LE). Пример ионов сосредоточиться на этой границе, если их эффективная подвижность в ТЕ зоне выше, чем у Т. совместно ионов, и если их эффективная подвижность в LE зоне меньше, чем у LE со-ионов (см. рисунок 1). Самозатачивающиеся и фокусирующих свойств ИТП вклад в надежность этой техники и сделать ITP относительно нечувствительны к нарушениям интерфейс (например, из-за давления управляемых потоков или изменений в геометрии, такие как сокращение, расширение, и повороты).
В пиковом режиме ИТП (см. рис 2а и видео 1-2), концентрация образца ионав любое время значительно ниже, чем LE и TE концентрации ионов и, следовательно, способствовать пренебрежимо местных проводимости. Распределение образцов ионов определяется самозатачивающиеся интерфейс между соседними зонами (здесь TE и LE) и значение образца эффективная подвижность относительно этих зон 14. Несколько образцов ионов сосредоточена в пределах одной узкой области, интерфейс ITP как в значительной степени перекрывающихся пиков. Интерфейс и ширины пиков, а также связанных с ними факторов концентрирования, масштаб обратно с приложенным тока (см. эксперименты на рисунке 2б) 14.
При достаточно высокой начальной концентрации образца и достаточно времени накопления, образец ионов достигает порогового значения концентрации. Для полностью ионизованной видов, эта величина определяется функцией Кольрауша регулирования (КРФ) 15. Для слабых электролитов, она определяется Alberty и Jovin функций. 16,17 в платорежиме, как показано на рисунке 3, Видео 3, образец ионов разделения и очистки в зонах локально равномерная и постоянная концентрация в порядке, определяемом их эффективной мобильности. Очень разбавленным ионы могут по-прежнему сосредоточены в пиковом режиме между плато зоны. В ИТП, образцы ионы могут быть введены в конечном инъекции между TE и LE (см. Рисунок 3) или поочередно смешиваются с ТЕ-и / или LE (см. Рисунок 2). Речь идет о смешивании в ТЕ зону "полубесконечной" инъекции, которые могут быть использованы для накопления ионов анализируемого непрерывно. Непрерывное накопление образцов повышает чувствительность и в пике и анализы плато режиме. Тем не менее, конечный инъекции чаще в режиме плато. Это, вероятно, из-за высокой начальной концентрации аналита в полубесконечной инъекции могут существенно увеличить проводимость TE и нижней фокусировки ставки. Кроме того, полное очищение невозможно в полубесконечной инъекции (так как Ремамодули конечной концентрации TE).
2. Устройства очистки и подготовка
Для анализов, представленных в этом протоколе мы используем изотропно мокрого травления (примерно D-образного сечения) стекло микрожидкостных чипов с многоканальной конструкции (см. рисунок 1). Следующие очистки и подготовки протокола оптимизирован для боросиликатного и плавленый кварц каналов, но также может быть использован со стеклом / PDMS чипов. Выполнить эту процедуру очистки до экспериментов для обеспечения запуска к запуску повторяемости и успешного применения динамического покрытия необходимо, чтобы подавить электроосмотического потока (EOF). Пропуск этого протокола может привести к сильной дисперсии интерфейс ITP 14.
- Для обеззараживания канала, заполните Север, Восток, Юг и резервуаров с 10-20 мкл 10% гипохлоритом натрия и применение вакуума на Западе водохранилище в течение 2 мин. Если вы используете стандартный суппорт чип кэдди, вакуум может эффективно применяться просто attachinг широком конце 200 мкл (нефильтрованное) пипетки с чипом резервуар и соединяющие вакуумную линию на 2 мм внутреннего диаметра трубы.
- Очистка водоемов и промыть канал (как в шаге 1) с 1 М гидроксида натрия в течение 2 мин. Это мягко вытравливает стенок канала, что дает чистый боросиликатного поверхность, чтобы помочь установить единые свойства поверхности.
- Пустые водоемов и чистой деионизированной воды (DI), затем смойте канала LE для ~ 2 мин. В течение этого периода свойств поверхности и динамическое равновесие покрытий внутри канала.
3. Флуорофора фокусировки в пиковом режиме ИТП
- Подготовить 1 мл LE, состоящий из 100 мМ HCl, 200 мМ трис, и 1% PVP.
- Подготовить 1 мл TE, состоящий из 100 HEPES мм и 200 мм трис. Комбинат 90 мкл ТЕ с 10 мкл 1 мкМ Alexa Fluor 488 (AF488).
- После промывки LE, как описано в Части 2, пустой резервуар Запада и чистить несколько раз в DI илидер разбавить любой LE остается в резервуаре. Заполните резервуар с 20 мкл ТЕ содержащие AF488.
- Поместите положительного электрода в резервуаре Востока и земли (отрицательный) электрод на Западе водохранилища и нанести 2 мкА (постоянный ток). Образец пик будут мигрировать с постоянной скоростью с запада водохранилище на восток водохранилища (см. Рисунок 1), а напряжение между этими резервуарами будет увеличиваться по мере меньшей проводимостью TE заполняет канал.
4. Добыча и очистка нуклеиновых кислот из культурных E. палочки
Возможность выборочного сосредоточиться ионных делает ИТП идеальная техника для биологической подготовки образца. Мы очищаем нуклеиновых кислот из необработанных лизат ячейки, выбрав задней аниона с эффективной величиной подвижности ниже целевой нуклеиновой кислоты, но выше, чем со-ионных ингибиторов ПЦР (например, анионных моющих средств, белки, органические растворители, даже если они присутствуют в приветGH концентрации). Катионный ПЦР ингибиторов (например, щелочных металлов и катионных белков и моющих средств) мигрировать в противоположном направлении, и поэтому они также остались позади. ИТП извлекает и фокусируется целевой нуклеиновой кислоты из образца резервуар, оставляя медленнее ПЦР ингибиторов вид сзади (рис. 4).
- Получить образец или культуры E. кишечной клетки, а плотность превышает 10 8 КОЕ / мл.
- Передача 1 мл клеточной культуры в безопасной блокировки трубки микроцентрифужных и гранул путем центрифугирования при 4000g в течение 6 мин.
- Повторно приостановить гранул в 80 мкл РНКазы без воды и добавить 10 мкл лизирующего агента, состоящего из 10 мМ tricine, 10 мМ бис-трис, 2 мМ ЭДТА, 0,1% Triton-X и 5 мг / мл лизоцима. Тщательно перемешать и выдержать в течение 5 минут. при комнатной температуре (лизировать протокол адаптирован из Берковичи соавт. 11).
- Добавить 10 мкл 1 М раствора гидроксида натрия, чтобы поднять лизат рН до ~ 12.5. Осторожно привод пипеткой вверх и внизРешение становится ясно, в какой момент лизиса завершена.
- Комбинат 10 мкл лизата с 90 мкл 50 мМ tricine и 100 мМ бис-трис. Это решение теперь может быть использован в качестве TE.
- Подготовить 1 мл LE, состоящий из 500 мМ бис-трис, 250 мМ HCl, 1% PVP, и 1X SYBR Green II. Заполните микрофлюидных чип LE, как указано в ч. 3 ст.
- Для того чтобы извлечь очищенных нуклеиновых кислот для офф-чипа после анализа ИТП, заменить содержимое Востока резервуар с ПЦР-совместимый LE содержащей 50 мМ бис-трис, 25 мМ HCl и 0,1% PVP. Применить 1000 В между Востоком и Западом скважин, чтобы начать эксперимент. В настоящее время между этими резервуарами будет уменьшаться.
- В конце эксперимента образец элюируется в резервуар LE. Одновременно с этим элюирования, текущее время против этой системы, как правило выходит на плато значение (так как сопротивление в настоящее время преобладают ионы TE равномерно распределены в канале). Аккуратно перемешайте водохранилищеСодержание повторным пипетирования и извлечь 5 мкл объема для анализа количественного RT-PCR.
5. Разделение аминокислот с катионными режиме плато ИТП и без фокусировки трассирующие (NFT) для визуализации
ИТП может быть использовано для разделения и сосредоточиться малых ионов в прилегающих плато и обнаружить между TE и LE. Это позволяет обнаружения и идентификации на основе физико-химических свойств, таких как местные проводимости, УФ-поглощения, измерения температуры или показателя преломления. Здесь мы показываем, без фокусировки трассирующие (NFT), где анализ люминесцентные, со-ионных добавляется в LE. Это люминесцентные вид не фокус, но его концентрация адаптируется к местным электрическим полем, и тем самым дает возможность визуализации очищенных зон плато (см. Рисунок 5).
- Подготовить 1 мл LE, состоящий из 100 мМ этаноламина, 200 мм tricine и 1% PVP, и 100 мкМ катионных 6G родамина флуорофора. <LI> Подготовка 1 мл TE, состоящий из 20 мМ трис, 40 мМ tricine. Подготовка образцов путем смешивания 90 мкл ТЕ с 10 мкл каждого из 50 мМ аргинина и 50 мМ лизина.
- Внесите 20 мкл LE на Западе и Северо водоемов и образцы на востоке водохранилище. Применение вакуума при водохранилища Южно течение 1 мин.
- Промойте Востока и с DI и заменить TE (TE без образца).
- Применение 500 В между Востоком и Западом водоемов.
6. Представитель Результаты
Мы покажем, isotachopherograms пик экспериментов в режиме Рисунок 2б и нуклеиновых кислот экспериментов добычи на рисунке 4. В пик экспериментов режима с флуоресцентным репортер (например, AF488, SYBR Green II), общая интенсивность флуоресценции может быть интегрирована и по сравнению с калибровочной кривой для получения количественной информации, концентрация 12. Кроме того, в экспериментах нуклеиновых кислот добычи, проба позволила элюировать в тОн LE водохранилища и извлеченные с помощью пипетки для анализа количественного RT-PCR. 10,12 Покажем isotachopherograms плато режиме разделения аминокислот кислоты на рисунке 5. Интенсивность флуоресценции (по отношению к LE и TE зоны интенсивности) может быть использована для идентификации зон, а зона шириной позволяют количественный.
Рисунок 1. Изотахофореза (ИТП) является электрокинетический метод, используемый в микрофлюидных приложений для чувствительного обнаружения и разделения ионов. ITP предлагает разделения, селективной фокусировка, и концентрирование возможности. Кроме того, он очень прочен и нечувствительным к физической нарушения из-за его самозатачивающиеся природы. Пример ионы выборочно сосредоточены между ведущим (LE) и конечные электролита (TE) и проходят через микроканальных при постоянной скорости определяется скоростью из ведущих ионов в зоне LE. Пример ионовфокус, если их эффективного электрофоретической подвижности, заключенные в эффективной подвижности LE и TE ионов. Схема эксперимента изображена модель ИТП, где образец непрерывно фокусируется между LE и TE зон.
Рисунок 2. Разбавить внимание образца ионами в "пиковый режим" ITP. а) два различных разбавленных (в образце с << LE) видов фокус в пиковом режиме на границе образуется между LE и TE зон. Исключительно LE и TE определения электрического поля, как образец вида не внести значительный вклад в ток. Пример ионов смешиваются с TE (в полубесконечной инъекций) и сосредоточиться вместе примерно гауссовское пика на границе ИТП. Фокусировка критерий (как показано неравенство) относится к сильно ионизированной видов. б) Эксперименты показывает Alexa Fluor 488 (AF488) сосредоточены в пиковом режиме для ряда течений прикладной (см. также Vидеологических 1). Ширина образца пика обратно пропорциональна току (для незначительной адвективного дисперсии за счет электроосмотического потока) 14. Самозатачивающиеся интерфейс устойчив к дисперсии из-за давления управляемых потоков (см. видео 2).
Рисунок 3. Пример ионов при достаточно высокой концентрации внимания на "плато режим" и управлять локальной проводимости. Как правило, мы представить образцы ионов в конечном инъекции между TE и LE. В этой модальности, выборка отдельных ионов и порядка в соответствии с их эффективным электрофоретической подвижности (см. видео 3). Для сильно ионизированный видов, TE и плато зоны концентрации определяется функцией Кольрауша регулирования (КРФ, инвариантное множество первоначально LE зоны). Разбавленных ионов-прежнему сосредоточена в пиковом режиме между плато зоны брекетинг их эффективной мобильности. Фокусировка сriterion (показано, как неравенство) относится к сильно ионизированной видов.
Рисунок 4. Лизата подготовки и нуклеиновых кислот с пиком ИТП режиме. Нуклеиновые кислоты, извлеченные из E. палочки использованием культуры клеток лизоцимом-щелочного лизиса помощь и очищали с помощью селективного электрофоретической фокусировка через ИТП. TE смешивается с лизат (коричневый) содержит целевой нуклеиновой кислоты (зеленые), белки, и потенциальных ингибиторов ПЦР химии. Правильный выбор и заднего ведущих ионов позволяет селективного фокусировки целевой нуклеиновой кислоты, оставляя позади ПЦР ингибиторов. Всего нуклеиновой кислоты ИТП пик часто берет на себя неидеальной формы, как показано здесь на вставке изображений. В качестве демонстрации этого анализа, мы извлекли общего нуклеиновой кислоты из грам-отрицательных бактерий, кишечная палочка (лизируются с раствором гидроксида натрия в одиночку), очищенный НС лизат использования ИТП, собранныеизвлеченный генетический материал, и проводится QRT-PCR анализа для проверки успешной очистки 16S рРНК (красный) и 16S рДНК (зеленый) от бактериальной культуры. Отрицательный контроль порога циклов 16S рРНК (синий) и 16S рДНК (желтый) были каждый более 30 циклов. Мы провели QRT-ПЦР, используя мощности SYBR Green РНК-на-C T 1-Step Kit от Applied Biosystems 150 нМ вперед (5'-CGGATTGGAGTCTGCAACTCG) и обратный (5'-CACAAAGTGGTAAG CGCCCTC) праймеров, при рекомендуемой теплового режима езды на велосипеде.
Рисунок 5. Без фокусировки трассирующие (NFT) анализ для разделения и обнаружения немеченого аминокислот. а) Схема NFT анализа. Конечный введения образца ионов вводится в канал Востоке. Мы смешиваем LE с трассирующей катионных флуорофора эффективной мобильности ниже, чем ионы TE (μ трассирующими <μ TE). ФлуорофораГоворят, выступать в качестве "underspeeding трассирующими". Как флуорофора electromigrates от LE на зоны в настоящее время занимают плато образца и TE, он испытывает более высокую электрического поля и, следовательно, увеличения его концентрации. Это изменение в концентрации создает шаги в isotachopherogram. б) Разделение двух аминокислот, аргинин и лизин, используя NFT анализа с родамина 6G, как underspeeding флуоресцентных индикаторов. Небольшой пик между TE и аргинин является общим в ITP, не очень хорошо понимают, и здесь не мешает обнаружения или количественного плато.
Справочная Фильм 1. Щелкните здесь для просмотра дополнительных кино .
Справочная Фильм 2. Щелкните здесь для просмотра дополнительных кино .
Справочная Фильм 3. Щелкните здесь для просмотра дополнительных кино .
Discussion
ИТП методы, представленные здесь, позволяют быстро, чувствительный и надежный обнаружения и обработки ионных молекул. Основной проблемой при использовании ИТП является правильный выбор LE и TE буфера. В ИТП анионные, мы обычно выбирают хлорида в качестве ведущей анионов, потому что это сильная кислота с высокой абсолютной мобильности и, следовательно, имеет очень прогнозируемыми свойствами. Таким образом, выбор буфера в анионной ИТП, как правило, сводится к выбору надлежащего TE и противоионов. Для селективного фокусировки экспериментов, Т. выбор имеет решающее значение для исключения загрязнения ионами. В случаях, когда загрязнения нет, ниже TE эффективной мобильности приводит к ускорению скорости фокусировки. Мы рекомендуем использовать следующие, относительно хорошо себя анионный TE ионов: МЧС, MOPS, HEPES, tricine. Выбор противоиона влияет как на рН системы и TE эффективной мобильности. Общие противоионов являются трис (рКа 8,1) и бис-трис (рКа 6,4). Для анализов требуется выше или ниже рН, мы рекомендуем пиридина (рКа 5,25) иэтаноламина (рКа 9,5), соответственно. В таблицах 1 и 2, для анионных и катионных ИТП, соответственно, мы суммируем несколько полезных примеров буфера. Мы HCl как анионные ION LE и натрия в качестве катионного LE ионов, и мы предполагаем, 100 мМ ионной силы буфера LE.
Читатель заметит, что сила ионного буфера в наших протоколов (и в таблицах 1-2) всегда больше или равно 10 мм. Хотя в теории физики ИТФ применяется в ионной силы ниже, чем 10 мм, природные загрязнители (например, углекислоты от реакции между водой и углекислого газа в атмосфере) около 1 мм уровне часто ограничивают практическое использование низкой ионной силы.
Отметим, что механизм передачи сигнала не ограничивается анализы, представленные в этом протоколе. Как уже говорилось вкратце в части 5, в режиме плато очищенной зоны могут быть обнаружены с помощью изменений в локальной проводимости, УФ absorbance, температуры или показателя преломления. В нашей группе, мы разработали метод, который использует флуоресцентные амфолитов носитель для чувствительного обнаружения и идентификации неизвестных аналитов. 5 В пик экспериментов режиме зондами могут быть использованы для обозначения сосредоточены аналитов. В одном примере, мы используем молекулярную маяки - олигонуклеотидных зондов, которые светятся при гибридизации их последовательности-мишени - для выявления ДНК мишени или молекулы РНК с высокой специфичностью 11,18.
Хотя ITP является относительно устойчивым к дисперсии в результате давления управляемых потоков и EOF, чрезмерное EOF может привести к стагнации интерфейс ITP, где средняя скорость EOF становится равной скорости ИТП 14. Такие сильные обрыв особенно в условиях высоких значениях рН и низкой ионной силы. По этой причине, мы рекомендуем использовать буфер с рН 8 или ниже, и с ионной силой порядка 100 мм, если удобно. По нашему опыту, ПВПНаиболее эффективным покрытием для подавления EOF в боросиликатного чипов. Однако, поскольку его просеивание свойства, ПВП, может не подходить для некоторых приложений, таких как фокусировка геномной ДНК. В экспериментах, заметим, что добавление ПВП может значительно снизить геномной ДНК абсолютной мобильности (до точки, где это не фокус). В этих случаях силанольных покрытия, такие как Sigmacote в связке с поверхностно-активных веществ (например, тритон X-100) также могут быть эффективными в снижении EOF 10.
TE анион (рКа 1) | ||||
Буферизация противоиона (рКа +1) | MES (6.10) | MOPS (7.20) | HEPES (7.50) | tricine (8.15) |
этаноламина (9.50) | 21,41 | 20,40 | 17,38 | 22,85 |
трис (8,08) | 21,00 | 19,23 </ TD> | 15,84 | 17,56 |
бис-трис (6.40) | 18,22 | 10,41 | 7,30 | 5,23 |
пиридина (5.18) | 1,01 | 3,72 | 2,42 | 1,48 |
Таблица 1. Эффективная величина подвижности (× 10 -9 м 2 / В / с), скорректированной чистой зоне аналита в анионной ИТП, где LE составляет 100 мм HCl и 200 мм буферизации противоионов.
TE катионов (рКа +1) | ||||
Буферизация противоиона (рКа 1) | этаноламина (9.50) | трис (8,08) | бис-трис (6.40) | пиридина (5.18) |
MES (6.10) | 35,57 | 21,96 | 16,39 | 10,45 |
МиссуриPS (7.20) | 35,47 | 20,92 | 9,76 | 3,93 |
HEPES (7.50) | 35,35 | 19,97 | 7,77 | 2,88 |
Tricine (8.15) | 34,77 | 16,72 | 4,50 | 1,44 |
Таблица 2. Эффективная величина подвижности (× 10 -9 м 2 / В / с), скорректированной чистой зоне аналита в катионной ИТП, где LE 100 натрия мм и 200 мм буферизации противоионов.
Disclosures
Нам нечего раскрывать.
Acknowledgments
Мы выражаем глубокую признательность финансирование DARPA спонсируемых Micro / Nano Fluidics Основы Focus (MF3) Центр по контракту номер N66001-10-1-4003, и от DARPA грант N660001-09-C-2082.
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Distilled water | GIBCO, by Life Technologies | 10977 | RNase/DNase free |
Clorox Ultra | Clorox | 02489CT | |
sodium hydroxide (NaOH) | Mallinckrodt Baker Inc. | 7708 | |
hydrochloric acid (HCl) | EMD Millipore | HX0603-4 | |
Trizma base (tris) | Sigma-Aldrich | T6066 | |
polyvinylpyrrolidone (PVP) | Polysciences, Inc. | 06067 | MW 1,000,000 |
HEPES | Sigma-Aldrich | H-4034 | |
Alexa Fluor 488 carboxylic acid | Invitrogen | A20000 | |
tricine | Sigma-Aldrich | T-9784 | |
bis-tris | Sigma-Aldrich | B4429 | |
EDTA | GIBCO, by Life Technologies | AM9260G | |
Triton-X 100 | Sigma-Aldrich | X100 | |
lysozyme | Sigma-Aldrich | L6876 | |
SYBR Green II | Invitrogen | S7564 | |
ethanolamine | Sigma-Aldrich | 411000 | |
Rhodamine 6G | Acros Organics | CAS 989-38-8 | |
L-Amino Acids | Sigma-Aldrich | LAA21 | |
Power SYBR Green RNA-to-CT 1-Step Kit | Applied Biosystems | 4389986 | |
PCR primers | Integrated DNA Technologies | ||
Borosilicate microfluidic chip | Caliper Life Sciences | NS12A | Supplied with or without plastic caddy |
Vacuum pump | Gast Manufacturing, Inc. | DOA-P104-AA | |
Sourcemeter | Keithley | 2410 | Constant current and constant voltage operation modes |
Inverted epifluorescent microscope | Olympus Corporation | IX70 | Use mercury lamp (Olympus) or LED (Thorlabs) for illumination |
Filter cube | Omega Engineering, Inc. | XF115-2 | Excitation/emission: blue/green |
Safe-lock microcentrifuge tubes | Eppendorf | 022363204 | 1.5mL capacity |
Centrifuge | Eppendorf | 5417C | |
Table 3. Specific reagents and equipment. |
References
- Jung, B., Bharadwaj, R., Santiago, J. G. On-chip millionfold sample stacking using transient isotachophoresis. Anal. Chem. 78 (7), 2319-2319 (2006).
- Jung, B., Zhu, Y., Santiago, J. G. Detection of 100 am fluorophores using a high-sensitivity on-chip CE system and transient isotachophoresis. Anal. Chem. 79 (1), 345-345 (2007).
- Everaerts, F. M., Beckers, J. L., Verheggen, T. P. E. M. Isotachophoresis: Theory, instrumentation, and applications. Elsevier Science & Technology. , (1976).
- Khurana, T. K., Santiago, J. G. Preconcentration, separation, and indirect detection of nonfluorescent analytes using fluorescent mobility markers. Anal. Chem. 80 (1), 279-279 (2008).
- Bercovici, M., Kaigala, G. V., Backhouse, C. J., Santiago, J. G. Fluorescent carrier ampholytes assay for portable, label-free detection of chemical toxins in tap water. Anal. Chem. 82 (5), 1858-1858 (2010).
- Bercovici, M., Kaigala, G. V., Santiago, J. G. Method for analyte identification using isotachophoresis and a fluorescent carrier ampholyte assay. Anal. Chem. 82 (5), 2134-2134 (2010).
- Kaigala, G. V. Miniaturized system for isotachophoresis assays. Lab Chip. 10 (17), 2242-2242 (2010).
- Chambers, R. D., Santiago, J. G. Imaging and quantification of isotachophoresis zones using nonfocusing fluorescent tracers. Anal. Chem. 81 (8), 3022-3022 (2009).
- Schoch, R. B., Ronaghi, M., Santiago, J. G. Rapid and selective extraction, isolation, preconcentration, and quantitation of small RNAs from cell lysate using on-chip isotachophoresis. Lab Chip. 9 (15), 2145-2145 (2009).
- Persat, A., Marshall, L. A., Santiago, J. G. Purification of nucleic acids from whole blood using isotachophoresis. Anal. Chem. 81 (22), 9507-9507 (2009).
- Bercovici, M. Rapid detection of urinary tract infections using isotachophoresis and molecular beacons. Anal. Chem. 83 (11), 4110-4110 (2011).
- Marshall, L. A., Santiago, J. G. Extraction of DNA from malaria-infected erythrocytes using isotachophoresis. Anal. Chem. 83 (24), 9715-9715 (2011).
- Persat, A., Chambers, R. D., Santiago, J. G. Basic principles of electrolyte chemistry for microfluidic electrokinetics. Part I: Acid-base equilibria and pH buffers. Lab Chip. 9 (17), 2437-2437 (2009).
- Garcia-Schwarz, G., Bercovici, M., Marshall, L. A., Santiago, J. G. Sample dispersion in isotachophoresis. J. Fluid Mech. 1 (1), 1-1 (2011).
- Kohlrausch, F. Über concentrations-verschiebungen durch electrolyse im inneren von lÖsungen und lÖsungsgemischen. Ann. Phys. 298 (10), 209-209 (1897).
- Alberty, R. A. Moving boundary systems formed by weak electrolytes. Theory of simple systems formed by weak acids and bases. J. Am. Chem. Soc. 72 (6), 2361-2361 (1950).
- Jovin, T. M. Multiphasic zone electrophoresis. I. Steady-state moving-boundary systems formed by different electrolyte combinations. Biochem. 12 (5), 871-871 (1973).
- Persat, A., Santiago, J. G. MicroRNA profiling by simultaneous selective isotachophoresis and hybridization with molecular beacons. Anal. Chem. , (2011).