Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Использование животных Модель Сепсис для оценки Роман травяной терапии

Published: April 11, 2012 doi: 10.3791/3926

Summary

Сепсис относится к синдрома системного воспалительного ответа в результате микробной инфекции, и могут быть смоделированы с помощью хирургической техникой слепой кишки называется перевязка и прокол (CLP). Здесь мы опишем метод использовать CLP-индуцированной животной модели для скрининга лекарственных трав для терапевтических агентов.

Abstract

Сепсис относится к синдрома системного воспалительного ответа в результате микробной инфекции. Это было обычно моделируются на животных несколько методов, в том числе вливания экзогенного бактериального токсина (эндотоксемии) или бактерии (бактериемия), а также хирургическое перфорация слепой от слепой кишки перевязки и пункции (CLP) 1-3. CLP позволяет бактериям и разлива фекальных загрязнений в брюшную полость, имитируя человеческий клинической болезни перфорированный аппендицит или дивертикулит. Тяжесть сепсиса, как это отражено в возможной смертности, можно контролировать хирургическим путем изменения размера иглы для прокола слепой кишки 2. У животных, CLP вызывает подобное, двухфазный гемодинамики сердечно-сосудистой системы, метаболических и иммунологических реакций, как наблюдалось в течение клинического течения сепсиса человека 3. Таким образом, модель CLP считается одним из наиболее клинически значимых моделей для экспериментального сепсиса 1-3. </ P>

Различные модели животных были использованы для выяснения сложных механизмов, лежащих в основе патогенеза экспериментального сепсиса. Смертельным следствием сепсиса связано отчасти с чрезмерным накоплением ранних цитокинов (таких как ФНО, ИЛ-1 и ИФН-γ) 4-6 и поздно провоспалительных медиаторов (например, HMGB1) 7. По сравнению с ранними провоспалительных цитокинов, в конце действия посредники имеют более широкое терапевтическое окно для клинического применения. Например, задержка администрации HMGB1-нейтрализующих антител начинается через 24 часа после CLP-прежнему спасли мышей от летальность 8,9, создание HMGB1 в конце посредником летальный сепсис. Открытие HMGB1 в конце действия посредника инициировал новое поле исследований для развития сепсиса терапии с использованием традиционной китайской травяной медицины. В этой статье мы опишем процедуру CLP-индуцированной сепсисом, и его использование при проверке лекарственных трав для HMGB1-планирование лечения.

Protocol

1. Создание животной модели сепсиса

  1. Мыши наркоз с кетамином (75 мг / кг, внутримышечно, мкм) и ксилазина (10 мг / кг, внутримышечно), и помещается в положении лежа.
  2. Зафиксируйте ноги мышь с лентой для обеспечения устойчивого положения.
  3. Очистите живот с 3 переменного скрабы из бетадин или другими дезинфицирующими кожи и алкоголя. Затем сделать 15 мм средней линии разреза, чтобы разоблачить слепой кишки.
  4. Перевязывать слепой кишки с 4-0 шва шелком примерно 5,0 мм от кончика слепой кишки, а затем прокол перевязанной слепой кишки пень раз с 22-иглу, чтобы экструзии стула.
  5. Слепой немедленно заменен обратно в нормальное внутрибрюшное положение.
  6. Закройте разреза в два слоя, сначала закрыв мускулатуры живота с рассасывающиеся швы, а затем закрыть рану кожи или клипов нерассасывающиеся швов.
  7. Реанимацию мышь с 0,5 мл физиологического раствора и одного этоготаковой имипенема (0,5 мг / мышь, подкожно) сразу же после завершения операции.
  8. Вернуться мышь обратно в чистую клетку со свободным доступом к пище и воде.
  9. В разное время CLP сообщение пункты, растительный экстракт или компонент вводят внутрибрюшинно.
  10. Животное выживания контролируется в течение более двух недель. Умирающий животных выставке трудности стоять, предсмертное дыхание, сильная мышечная атрофия и неконтролируемые кровотечения следует усыплять от передозировки вдыхание двуокиси углерода.
  11. Важно отметить, что циркулирующие уровни цитокинов являются важными параметрами, в этих исследованиях. Различные обезболивающие было показано, что влияет на высвобождение цитокинов и деятельности, и, следовательно, были намеренно избегал в послеоперационном периоде.

2. Подготовка Растительные экстракты

  1. Извлечение травы в горячей воде (85 ° C) в течение 1-4 часов (1 час на листьях, и 4 часа на корни).
  2. Центрифуга с водой такluble фракции (3300 г, 20 мин, 4 ° C) для удаления нерастворимых частиц.
  3. Фильтрат фракции супернатанта через 0,2 мкм фильтр.
  4. Ясно водорастворимой фракции фильтрата затем фракционировали ультрафильтрацией использованием Centriprep YM-10 центробежный фильтр (не каталог. 4305, Millipore).
  5. Результатом низкой (<10 кДа) и высоких (> 10 кДа) молекулярного веса (MWF) проверяются на HMGB1 ингибиторов деятельности с использованием макрофагов культур.
  6. Внутрибрюшинное администрации HMGB1 ингибирующих растительный экстракт или компонентов на 24 часа после CLP, чтобы оценить их терапевтическую эффективность.

3. Выделение макрофагов перитонеального

  1. Тиогликолята бульон (4%, 2,0 мл) вводят внутрибрюшинно в нормальных мышей.
  2. Первичная макрофагов собирают на 3 дня, как описано выше 10.
  3. Макрофаги предварительно культивировали в DMEM среде (Gibco BRL, Grand Island, NY) с добавлением 10% эмбриональной телячьей сыворотки (FBS), 2 ммоль / л глутамина, и 1% пенициллина.
  4. Приверженец макрофагов мягко промывают и культивируют в, бессывороточной OPTI-я среда MEM два часа до начала стимуляции бактериального эндотоксина (липополисахарида, ЛПС, E.coli 0111: В4, Sigma-Aldrich).
  5. В 16 часов после стимуляции LPS, уровни HMGB1 в культуральной среде определяется западных промокательной анализ 11.
  6. Относительная интенсивность группа была количественно с помощью образа NIH 1,59 программное обеспечение для определения уровня HMGB1 со ссылкой на стандартные кривые, созданные с очищенной HMGB1.

4. Представитель Результаты

1. CLP вызывает системного и местного воспаления.

В течение нескольких часов операции CLP, животные проявляют клинические признаки сепсиса, которые включают пилоэрекции, вялость, сбившись, и снижение потребления пищи и воды. Животные развивается тяжелый перитонит с последовательной системнойинфекции обычно умирают в течение 48 - 96 часов. Тем не менее, даже по возрасту, полу, и генетический фон подобранные животные могут реагировать на CLP хирургии в различимы образом, в ходе экспериментального сепсиса. Например, в 48 часов после CLP, а некоторые животные, возможно, подошел к умирающим государством (как показано на рис 1), другие могут оставаться без умирающего государства.

Справочники циркулирующих цитокинов выявлены значительные различия в уровнях ряда цитокинов (например, IL-6, КС, MIP-2, и sTNFR1) между мышами в умирающую и не умирающего государства (рис. 1) 12. Примечательно, что эти медиаторы воспаления были классифицированы в качестве суррогатных маркеров сепсиса, потому что их уровень циркулирующих служат надежными предикторами летального исхода в экспериментальных или клинических 12-14 сепсис 15. Кроме того, CLP также индуцируется местный выпуск различных про-и противовоспалительных цитокинов и хемокинов. Например, на48 часов после CLP, значительное количество цитокинов (например, IL-6) и хемокинов (KC и MIP-2) все еще ​​можно измерять не только системно в крови, но и на местном уровне в перитонеальной жидкости лаважа (рис. 2).

2. Скрининг на HMGB1 ингибирующих растительный экстракт или компонентов.

Использование макрофагов культур, мы смогли оценить возможности различных растительных экстрактов и компонентов для ингибирования эндотоксин-индуцированный выброс HMGB1 (рис. 3). В свете их потенциала в подавлении выпуск HMGB1, мы дополнительно изучить их эффективность при сепсисе животных моделях. Учитывая поздний и длительной кинетики HMGB1 накопления в экспериментальном сепсисе 8, первая доза HMGB1 ингибиторов было дано 24 часа после начала сепсиса - момент времени, когда мышей разработаны четкие признаки сепсиса, включая сонливость, понос и пилоэрекции. Как показано на рисунке 4, задерживается и повторного введения основной зеленый чай сomponent, эпигаллокатехин-3-галлат (EGCG), начиная с 24 часов после начала сепсиса, значительно спасли мышей от смертельных сепсис 12. Даже когда в устной форме, EGCG, еще спасли мышей от смертельных сепсиса, значительно повышая выживаемость животных ставки с 16% до 44% 16. Было бы важно для определения комбинационной терапии с несколько травяных компонентов можно добиться значительного улучшения защиты на животных моделях сепсиса. Взятые вместе, эти экспериментальные данные подтверждены наш подход к экрану новых терапевтических агентов с помощью животной модели CLP-индуцированной сепсисом.

5. Представитель Результаты

Рисунок 1
Рисунок 1. Циркулирующие уровни суррогатных маркеров значительно выше в септик животные приближаются умирающего государства. BALB / C мышей подвергали сепсис от CLP и контроль за развитием признаков болезни. Впоздней стадии сепсиса (52 часов после CLP), кровь была собрана от 3 нормальных мышей (-CLP), 3 септический мышей приближается к умирающим государством, и 3-септических мышей в не умирающий государства. Сыворотку объединения из каждой группы, а также анализировали на цитокиновой профиль антител массивов. Обратите внимание на резкое различие в относительных уровней ряда суррогатных маркеров между различными группами. Взято из DOI: 10.1371/journal.pone.0001153.g006 с разрешение от издателя.

Рисунок 2
Рисунок 2. Выявление местных и системных цитокинов и хемокинов в 48 часов после CLP. BALB / C мышей подвергали сепсис по CLP и крови или перитонеальной жидкости были собраны в 48 часов после CLP. Относительный уровень ряда цитокинов и хемокинов в пробах сыворотки или перитонеального лаважа жидкости были измерены массивов цитокинов антитела, и выражается в условных единицах (а.е.). В качестве контроля, крови и перитонеальной жидкости SAmples были получены от нормальных здоровых животных (-CLP) без лапаротомии.

Рисунок 3
Рисунок 3. Травяные компоненты дозозависимо ингибирует эндотоксин-индуцированное HMGB1 выпуска в первичных культурах макрофагов. Первичная перитонеальных макрофагов стимулировали LPS в отсутствии или наличии растительных компонентов (например, EGCG, 15 мкм). В 16 часов после стимуляции LPS, уровни HMGB1 в культуральной среде определяли западных промокательной анализа. Взято из DOI: 10.1371/journal.pone.0001153.g006 с разрешение от издателя.

Рисунок 4
Рисунок 4. Травяные компоненты спасли мышей от смертельных сепсиса. BALB / C мышей подвергали смертельной сепсис от CLP, а также травяные компоненты (EGCG) вводили внутрибрюшинно в +24, +48, +72 часов после начала сепсиса.мальные выживание следили в течение двух недель. Kaplan-Meier метод был использован для сравнения различий в уровне смертности между группами. * Р <0,05 в сравнении с физиологическим раствором. Взято из DOI: 10.1371/journal.pone.0001153.g006 с разрешение от издателя.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

В лаборатории несколько животных моделях сепсиса были использованы для понимания патогенеза сепсиса, для того, чтобы развивать потенциал терапии романа. Их клиническое значение остается предметом дискуссий до успешного воплощения в исследованиях на животных в клинической практике для сепсиса. Несмотря на то, нейтрализующих антител против ранних цитокинов (например, фактор некроза опухоли) были защитные на животных моделях бактериемия / 17,18 эндотоксемии, они на самом деле ухудшает выживание в животной модели сепсис 19. Кроме того, большинство анти-ФНО агенты не смогли показать эффективность в клинических испытаниях при сепсисе 20-22. Этот отказ отражает частично от сложности основные патогенетические механизмы развития сепсиса 23,24. Кроме того, он также может быть связано с подводных камней в выборе: 1) возможно терапевтических целей или наркотиков; 2) оптимальные дозы и сроки наркотиков, и 3) без реальных клинических меры результата (например, смертность) 25. Недавнее открытие HMGB1 таргетирования растительный экстракт и / компонентов, в том числе Danggui 26, Зеленый чай, 12,16, 27 и Danshen обеспечил успешные примеры доклинических расследование использования животных моделях сепсиса. Дальнейшие исследования в этой области будет пролить свет на молекулярные каскады, лежащие в основе регулирования врожденного иммунного ответа, и дать ключи для развития терапии различных воспалительных заболеваний. При первом создании CLP в вашей лаборатории, следует предпринять усилия для выполнения операции процедуру максимально быстро и точно, как можно обеспечить воспроизводимость результатов, особенно при использовании большого количества (30-40) мышей для сравнения выживаемости между несколькими экспериментальными группами эксперимента. Использование пролонгированного действия анестетиков (например, кетамин и ксилазина) позволяет завершить CLP хирургическое вмешательство на большое количество мышей в относительно короткие сроки, а тем временем помочьустранить возможные отклонения дозы часто происходит при использовании летучих анестетиков. Выживаемость и системное накопление цитокинов можно рассматривать как признаки успешного выполнения процедуры CLP.

CLP модель широко используется у грызунов из-за очевидного преимущества в низкой стоимости, простоте хирургическое вмешательство, а также обширные патологические, иммунологических, физиологических характеристик. Тем не менее, существует ряд ограничений мыши CLP модель 1-3. Например, как и все модели на животных, виды неравенства свидетельствует тот факт, что перевязка слепой кишки без прокола может быть смертельным в человека, но не у мышей. Кроме того, из-за небольших размеров мыши и обезвоживания после CLP, часто бывает трудно получить серийные образцы крови для измерения цитокинов. Эти недостатки могут быть частично преодолены путем создания моделей CLP в более крупных животных 2,3,27,28. Кроме того, важно отметить, что смертность ипрогресс перитонита у грызунов во многом определяется количеством стула экструзии, которые пострадали от датчика иглы используются для прокола слепой кишки, количество проколов, общий объем перевязанной слепой кишки и вязкости стул 2, 3. Кроме того, дозы и частота приема антибиотиков на ранней стадии CLP также может повлиять на уровень смертности. Наконец, животного происхождения и жилищные условия, также могут способствовать дисперсии смертности.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

AES и HW являются со-изобретателями патентных заявок, связанных с HMGB1 ингибиторов (tanshinones) как потенциальные терапевтические агенты для сепсиса.

Acknowledgments

Эта работа была поддержана грантами от Национального института здравоохранения, Национальный институт общей медицинских наук (R01GM063075) и Национального центра дополнительной и альтернативной медицины (R01AT05076).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Betadine Purdue Products L.P. 25655-41-8
imipenem Merck & Co., Inc. 9882821
Ketamine HCl Hospira Inc. RL-0065
Xylazine Lloyd, Inc. 4821
Autoclip BD Biosciences 427631
4-0 silk suture Roboz Surgical Instruments Co. SUT-15-2
Surflo I.V. Catheter Terumo Medical Corp. SR*OX2419CA
RayBio mouse cytokine antibody array RayBiotech, Inc. AAM-CYT-3
Thioglycollate BD Biosciences 211716

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Wichterman, K. A., Baue, A. E., Chaudry, I. H. Sepsis and septic shock--a review of laboratory models and a proposal. J. Surg. Res. 29, 189-201 (1980).
  2. Baker, C. C., Chaudry, I. H., Gaines, H. O., Baue, A. E. Evaluation of factors affecting mortality rate after sepsis in a murine cecal ligation and puncture model. Surgery. 94, 331-335 (1983).
  3. Hubbard, W. J. Cecal ligation and puncture. Shock. 24, Suppl . 1. 52-57 (2005).
  4. Akira, S., Takeda, K. Toll-like receptor signalling. Nat. Rev. Immunol. 4, 499-511 (2004).
  5. Baggiolini, M., Loetscher, P. Chemokines in inflammation and immunity. Immunol. Today. 21, 418-420 (2000).
  6. Balkwill, F. Cytokines--soluble factors in immune responses. Curr. Opin. Immunol. 1, 241-249 (1988).
  7. Wang, H. HMG-1 as a late mediator of endotoxin lethality in mice. Science. 285, 248-251 (1999).
  8. Yang, H. Reversing established sepsis with antagonists of endogenous high-mobility group box 1. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101, 296-301 (2004).
  9. Qin, S. Role of HMGB1 in apoptosis-mediated sepsis lethality. J. Exp. Med. 203, 1637-1642 (2006).
  10. Ray, A., Dittel, B. N. Isolation of Mouse Peritoneal Cavity Cells. J. Vis. Exp. (35), e1488 (2010).
  11. Rendon-Mitchell, B. IFN-gamma Induces High Mobility Group Box 1 Protein Release Partly Through a TNF-Dependent Mechanism. J. Immunol. 170, 3890-3897 (2003).
  12. Li, W. A Major Ingredient of Green Tea Rescues Mice from Lethal Sepsis Partly by Inhibiting HMGB1. PLoS ONE. 2, e1153 (2007).
  13. Osuchowski, M. F., Welch, K., Siddiqui, J., Remick, D. G. Circulating cytokine/inhibitor profiles reshape the understanding of the SIRS/CARS continuum in sepsis and predict mortality. J. Immunol. 177, 1967-1974 (2006).
  14. Heuer, J. G. Evaluation of protein C and other biomarkers as predictors of mortality in a rat cecal ligation and puncture model of sepsis. Crit. Care. Med. 32, 1570-1578 (2004).
  15. Bozza, F. A. Cytokine profiles as markers of disease severity in sepsis: a multiplex analysis. Crit. Care. 11, R49 (2007).
  16. Li, W. EGCG stimulates autophagy and reduces cytoplasmic HMGB1 levels in endotoxin-stimulated macrophages. Biochem. Pharmacol. 81, 1152-1163 (2011).
  17. Beutler, B., Milsark, I. W., Cerami, A. C. Passive immunization against cachectin/tumor necrosis factor protects mice from lethal effect of endotoxin. Science. 229, 869-871 (1985).
  18. Tracey, K. J. Anti-cachectin/TNF monoclonal antibodies prevent septic shock during lethal bacteraemia. Nature. 330, 662-664 (1987).
  19. Eskandari, M. K. Anti-tumor necrosis factor antibody therapy fails to prevent lethality after cecal ligation and puncture or endotoxemia. J. Immunol. 148, 2724-2730 (1992).
  20. Ziegler, E. J. Treatment of gram-negative bacteremia and septic shock with HA-1A human monoclonal antibody against endotoxin. A randomized, double-blind, placebo-controlled trial. The HA-1A Sepsis Study Group. N. Engl. J. Med. 324, 429-436 (1991).
  21. Ziegler, E. J. Treatment of gram-negative bacteremia and shock with human antiserum to a mutant Escherichia coli. N. Engl. J. Med. 307, 1225-1230 (1982).
  22. Abraham, E. Efficacy and safety of monoclonal antibody to human tumor necrosis factor alpha in patients with sepsis syndrome. A randomized, controlled, double-blind, multicenter clinical trial. TNF-alpha MAb Sepsis Study Group. JAMA. 273, 934-941 (1995).
  23. Cohen, J. Adjunctive therapy in sepsis: a critical analysis of the clinical trial programme. Br. Med. Bull. 55, 212-225 (1999).
  24. Dellinger, R. P. Surviving Sepsis Campaign: international guidelines for management of severe sepsis and septic shock: 2008. Crit. Care Med. 36, 296-327 (2008).
  25. Wang, H., Zhu, S., Zhou, R., Li, W., Sama, A. E. Therapeutic potential of HMGB1-targeting agents in sepsis. Expert. Rev. Mol. Med. 10, e32 (2008).
  26. Wang, H. The aqueous extract of a popular herbal nutrient supplement, Angelica sinensis, protects mice against lethal endotoxemia and sepsis. J. Nutr. 136, 360-365 (2006).
  27. Li, W. A cardiovascular drug rescues mice from lethal sepsis by selectively attenuating a late-acting proinflammatory mediator, high mobility group box 1. J. Immunol. 178, 3856-3864 (2007).
  28. Fukuyama, M. Mixed bacterial infection model of sepsis in rabbits and its application to evaluate superantigen-adsorbing device. Blood Purif. 23, 119-127 (2005).

Tags

Медицина выпуск 62 травяной терапии врожденные иммунные клетки цитокины HMGB1 экспериментальной животной модели сепсиса слепой кишки перевязки и прокол
Использование животных Модель Сепсис для оценки Роман травяной терапии
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Li, W., Zhu, S., Zhang, Y., Li, J.,More

Li, W., Zhu, S., Zhang, Y., Li, J., Sama, A. E., Wang, P., Wang, H. Use of Animal Model of Sepsis to Evaluate Novel Herbal Therapies. J. Vis. Exp. (62), e3926, doi:10.3791/3926 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter