Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Biology

依赖的PDZ-CFTR的大分子信号复合物的体外分析

Published: August 13, 2012 doi: 10.3791/4091

Summary

囊性纤维化跨膜电导调节器(CFTR),上皮细胞的氯离子通道,已与多种蛋白质相互作用和调节重要的细胞过程的CFTR序序介导的相互作用,其中已经有据可查。这个协议描述我们开发组装的PDZ-依赖的CFTR大分子信号复合物的方法

Abstract

囊性纤维化跨膜电导调节器(CFTR),主要位于上皮细胞的顶膜的氯离子通道,起着至关重要的作用,在跨上流体稳态1-3。 CFTR基因有牵连的两个主要疾病:囊性纤维化(CF)4第5分泌性腹泻。在CF的CFTR氯离子通道的功能活动,合成或降低。这种疾病会影响美国的约1 6 2500白种人。过度CFTR的活动也被牵连毒素诱导的分泌性腹泻(如霍乱毒素和热稳定大肠杆菌肠毒素)刺激cAMP或cGMP生产在肠道内的7例。

越来越多的证据表明CFTR和其他蛋白质的数目越来越多,包括运输,离子通道,受体,激酶,磷酸酶,信号之间的物理和功能相互作用的存在ING分子和细胞骨架的元素,CFTR和其结合蛋白之间相互作用已被证明要严格调节在体外体内8-19 CFTR介导的跨膜离子转运。在这个协议中,我们只注重方法,援助在CFTR的羧基末端,它拥有一个蛋白质结合基序之间的相互作用的研究[简称为PSD95/Dlg1/ZO-1(序)序],和PDZ结构域所指的脚手架蛋白,其中包含一个特定的绑定模块组。到目前为止,几个不同的PDZ骨架蛋白已绑定到CFTR的羧基末端与各种亲缘关系,如NHERF1,NHERF2,PDZK1,PDZK2,CAL(CFTR的相关配体),Shank2,把握20-27。内CFTR的PDZ结构图案是公认的PDZ骨架蛋白是在过去四年在C端(即1477-DTRL-1480在人类的CFTR)20个氨基酸。有趣的是,CFTR的,可以绑定多个PDZ结构域都NHERFs和PDZK1,尽管有不同的亲和力22。这方面的CFTR的具有约束力的多价已被证明是功能性的意义,这表明,PDZ结构骨架蛋白可能促进CFTR的形成大分子信号为特定/选择性和高效率的信号复合物在细胞16-18。

已开发多个生化分析研究,CFTR涉及蛋白质的相互作用,如免疫共沉淀,下拉法,成对结合法,比色法成对结合实验,和复杂的大分子组装检测16-19,28,29 。在这里,我们重点对1的PDZ基序依赖CFTR含大分子体外 ,这是我们的实验室研究蛋白质或域的域的相互作用,涉及的CFTR 16-19,28,29广泛用于复杂装配的详细程序。

Protocol

1。标记细菌中的重组融合蛋白表达和纯化

  1. 放大定义CFTR的一览表2,MRP2,MRP4,β2受体,和NHERFs(全长或PDZ1过或PDZ2域地区的C-尾(最后50-100个氨基酸,包含在C-末端的PDZ结构图案) )通过PCR方法。
  2. PCR产物克隆到pGEX4T-1载体(如GST-NHERFs的,GST-MRP4 CT),GST融合蛋白的MBP融合蛋白的质粒pMAL-C2载体(如的MBP-β2受体的CT,MBP-CFTR的CT ),pET30-S融合蛋白(如他 - S-CFTR的CT,他的S-PDZK1)。
  3. 变换在蛋白酶缺陷E.大肠杆菌菌株(大肠杆菌BL21-DE3),以减少可能出现的重组蛋白的降解。
  4. 在37℃培养过夜增长在卢里亚Bertani培养基含有适当的抗生素(如氨苄青霉素或卡那霉素)(pH值7.0)。在1:10稀释过夜培养,另2小时增长在37°C。在杜奇与0.5-1米M为接下来的4小时在30℃经IPTG在8000离心沉淀细胞×G为10分钟,在4°C。
  5. 蔗糖缓冲液裂解细胞(含50 M M的Tris-HCl,pH值8.0,1 M M 1 M M的EDTA,PMSF,10%的蔗糖)溶菌酶(1毫克/毫升),0.2%的Triton X-100和蛋白酶抑制剂。从1升文化起源的细胞沉淀用20毫升。
  6. 在4°C,在30分钟摇床混合
  7. 自旋为30分钟,在4°C,在20000×G收集上清。
  8. 到上层清液,加入1毫升以下的树脂/琼脂糖珠(50%蔗糖缓冲泥浆):
    • GST融合蛋白谷胱甘肽琼脂糖珠。
    • 爪珠-S的融合蛋白。
    • MBP融合蛋白的直链淀粉树脂。
  9. 组合为4小时,在4°Ç在摇床。
  10. 洗珠重新悬浮在1X PBS(15毫升),混合2公里N,纺纱800×2分钟,弃去上清Ğ。六次重复此步骤。
  11. 从珠,通过各自的洗脱缓冲液(2毫升,每1毫升珠洗脱缓冲液)洗脱蛋白质。
    • GST融合蛋白的洗脱缓冲:25 M M的Tris-HCl(pH值8.0),140 M M氯化钠和20 M M谷胱甘肽。
    • 他的融合蛋白的洗脱缓冲液:20 M M的Tris-HCl(pH值8.0)M氯化钠,500米和200米M咪唑。
    • MBP融合蛋白的洗脱缓冲液:20 M M的Tris-HCl(pH值8.0),200米M氯化钠,1 M M M M的EDTA,1数码地面电视,和10 M M麦芽糖。
  12. 透析1X PBS对2大号洗脱蛋白质在4°C间(以避免可能的蛋白质降解)。改变PBS每4小时的四倍。蛋白作为小等分1 Centricon滤波器(截止10,000兆瓦,Millipore公司)和存储集中在-80°C。
  13. DET貂皮Bradford法蛋白浓度。评估通过SDS-PAGE使用BSA作为标准蛋白质量。如果蛋白质的完整性是不能令人满意的,如二次净化凝胶过滤或离子交换程序可以使用。 (例如,我们用一个G-75琼脂糖凝胶柱进一步纯化GST融合蛋白)。

2。细胞培养和细胞裂解液的制备

  1. 文化幼仓鼠肾细胞(BHK),稳定过表达的CFTR WT和的CFTR his10或BHK细胞,瞬时过表达旗一览表2-WT或旗一览表2ΔSTL,Madin 4197犬肾(MDCK细胞细胞),稳定过表达MRP2的鹰的最低限度的基本培养基(MEM)的5%CO 2含10%小牛血清,青霉素/链霉素聚苯乙烯瓶在37°C间。
  2. 文化人类胚胎肾293细胞(HEK293细胞),稳定过表达的CFTR WT的CFTR his10的在杜尔贝科“的改良Eagle培养基(DMEM培养基)在37°C 5%的CO 2与10%小牛血清和青霉素/链霉素聚苯乙烯瓶补充。
  3. 裂解细胞裂解液(PBS - 0.2%TRITON-X-100的补充含有M M phenylmethylsulphonyl氟化物,1微克/毫升抑肽酶,1微克/毫升亮肽素,1微克/毫升胃蛋白酶抑制剂,蛋白酶抑制剂的混合物);使用500μL裂解液,每60毫米培养皿,1000μL裂解液,每100毫米的培养皿。
  4. 20分钟摇滚细胞裂解液在4°C,并删除15分钟在16000×g下离心的不溶性物质,在4°C。确定由Bradford法蛋白浓度。

(3) 在体外一个CFTR含的高分子复合体大会(CFTR的PDZK1-MRP4)

  1. 到200μL裂解缓冲液(PBS - 0.2%的Triton-X的100蛋白酶抑制剂),添加20μg纯化GST-MRP4-C终端50 AA(CT50)融合蛋白。
  2. 加入S-PDZK1融合蛋白纯化的各种款项(0-40微克)。
  3. 上旋转22°1-2 C H搅拌机混合的两种蛋白质。
  4. 加入20微升谷胱甘肽珠(50%浆料)的蛋白质混合物,继续拌匀,另1小时。这一步也被称为成对结合。
  5. 在此期间,准备HEK293细胞裂解过度旗,CFTR(WT)如上所述,在第2步)。
  6. 裂解液洗两次复杂。旋转800×G为每洗1分钟,小心吸出上清后,每洗。谨慎使用不吸在底部的珠子。
  7. 添加上述准备HEK293细胞裂解珠,轻轻混合为3小时(或隔夜)在4°C。
  8. 洗珠广泛裂解液三个步骤3.6)倍。
  9. 洗脱的蛋白质使用30μL的样品缓冲液(5×):0.6米的Tris-HCl(pH值6.8),50%的甘油,2%的SDS,0.1%溴酚蓝;含5%β-巯基乙醇。
  10. 孵育在37°C间水浴10-15分钟,和自旋为5000×30秒Ğ沉淀珠。
  11. 加载到4-15%凝胶洗脱液。
  12. 运行约30-40分钟的SDS-PAGE。
  13. 蛋白条带转移到PVDF膜,为1.5小时。
  14. 座中的TBS-吐温膜含有5%非脂乳。
  15. 酝酿的初级抗体(如抗CFTR的抗体,R1104)膜在4°C间,过夜。
  16. 膜用TBS-吐温洗5分钟,六次。
  17. 在22°C孵育45分钟二次抗体(如羊抗鼠HRP标记的第二抗体)膜
  18. 膜用TBS-吐温洗5分钟,六次。
  19. 通过的ECL蛋白带可视化。
  20. 代表性的数据, 如图1所示。
jove_title“> 4代表结果。

如图1所示的CFTR含大分子信号在体外组装的复杂的例子。 MRP4的C-末端50个氨基酸(MRP4-CT50),,PDZK1,全长度的CFTR( 图1, 底部 )之间形成一个大分子复合物。形成复合物剂量依赖性增加,越来越多的中介蛋白质,PDZK1( 图1, 底部 )18。

图1
图1图示( 顶部 )的大分子复杂的检测。大分子复合物在体外检测与三种蛋白质在剂量依赖性( 底部 )18(GST-MRP4-CT50,他- S-PDZK1,旗CFTRwt)。

NHERF1-β2 AR(见14) CFTR的NHERF2-LPA的2(注释15) CFTR的PDZ蛋白MRP的2(注释17) CFTR的PDZK1-MRP4(注释16)
亲和力珠 直链淀粉树脂 S - 蛋白琼脂糖直链淀粉树脂谷胱甘肽琼脂糖
纯化的蛋白质-1 MBP的β-2受体的CT - S-CFTR的CT MBP-CFTR的CT GST-MRP4 CT
纯化的蛋白质-2 GST-NHERF1 GST-NHERF2的的GST-PDZ蛋白 - S-PDZK1
纯化蛋白3(或细胞裂解) CFTR基因-WT的CFTR his10的的 (染BHK的HEK细胞裂解) 旗-LPA的2-WT或旗一览表2ΔSTL(染BHK细胞裂解物) MRP2的(MDCK细胞裂解) 纯化旗的CFTR WT或的CFTR his10(或细胞裂解物)
抗体 抗-CFTR的IgG 反旗酶的抗-MRP2的IgG 反旗酶的

表1总结各种CFTR的含大分子复合物在体外组装。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

在这个协议中,我们展示了一个方法, 在体外装配,检测包含使用纯化蛋白(或蛋白质碎片)和/或细胞裂解大分子信号复合物的CFTR报告以前16-19,29,30。为了达到最佳效果临界点以下,在筹备过程中,需要特别注意:

  • 重要的是,洗脱缓冲液的pH值调整到8.0后加入还原型谷胱甘肽的纯化GST融合蛋白,如步骤1)中所述时。此外还原型谷胱甘肽后,pH值可低到3.0。如果PH值未调整之前洗脱,洗脱效率大大降低。
  • 当蛋白质被洗脱从珠,他们需要马上进行透析,否则,纯化的蛋白可能的解决方案来。如果蛋白透析后洗脱过程是不正确的可能,不洗脱的蛋白质和离开他们与日é琼脂糖/珠。
  • 这是强烈建议不要煮的CFTR含大分子免疫印迹CFTR的聚集是一个共同的问题编写的复杂样品。相反,样品应加热10-15分钟,在凝胶前装在37°C。
  • 对于具有低亲和力相互作用的蛋白复合物,免疫可以使用的SuperSignal西飞秒(或Pico)的最大灵敏度基板(皮尔斯),以增加信号的可视化。

这里展示的技术检测生化定义CFTR含大专蛋白复合物,提供了方便,重现性好。有多种方法在体外 CFTR的大分子复合物组装表1概述。

  • 为了取得令人瞩目的成果,应尽量组装两种方式,即我)的复杂的CFTR - 支架蛋白的PDZ(S) - 第三蛋白;二)第三蛋白 - PDZ结构支架蛋白(S) - CFTR的。
  • 为了要证明的PDZ结构的大分子复杂的形成图案的依赖,CFTR的,his10(CFTR,his10包含的C-末端的尾巴10他的残留物;这种蛋白质有1内部的PDZ基序和可以不绑定NHERFs 29),与他们的蛋白质突变或删除(如β2 AR-L413A; LPA的2-ΔSTL的;等)的PDZ图案,以及复杂的大分子检测,可并行使用。
  • 而不是使用整个裂解细胞,还含有许多其他组件,可以使用步骤3.7纯化的蛋白(如第三蛋白))(如的MRP4-PDZK1 CFTR的大会,我们也用纯化标志的CFTR; 18号)。这提供了一个纯粹的三蛋白复合物的令人信服的结果,因为只有3纯化的蛋白质在整个装配系统中。

然而,检测的CFTR大分子复杂的使用体外提纯编辑蛋白质(蛋白质碎片)或CFTR的过度或相互作用的蛋白质从细胞裂解物并不表明大分子信号复合物是否存在于细胞内源性明示这些相互作​​用的蛋白。为了解决这个问题,可以进行免疫共沉淀评估内源性的,如呼吸道上皮细胞的细胞16 CFTR的复合物和肠上皮细胞17,18。此外,质谱分析和二维凝胶电泳29可以识别CFTR的未知约束力的合作伙伴。然而,这超出了本协议的范围,以证明这些技术。

此外, 在体内的相互作用蛋白质的亚细胞定位也可能会影响分子间的相互作用。例如,MRP4已表示在心尖和基底膜,而CFTR的主要是本地化的顶膜,虽然他们已被撤销monstrated物理和功能上互相交流,通过PDZ结构脚手架蛋白质PDZK1 18。此外,重组蛋白的过度表达,因为在目前的协议,可能影响其亚细胞定位,从而使互动,否则将不会发生。也应解释数据和推算结果时,考虑到这些可能性。

虽然目前协议的程序集中组装的PDZ-依赖的CFTR含有的大分子复合物,该协议还具有潜在的应用,在装配非CFTR基因参与的多蛋白复合物(或者PDZ结构依赖或独立)。最近一段时间,使用这种大分子组装检测,我们已经证明,趋化因子受体CXCR2的身体构成其下游效应PLCβ通过NHERF1 2介导的中性粒细胞的蛋白复合物,和本CXCR2的大分子复杂功能扰乱复杂的(通过使用外源性CXCR2的多肽),显着减轻中性粒细胞功能的相关性为31。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

没有利益冲突的声明。

Acknowledgments

我们的工作一直支持由美国心脏协会(大中华区东南亚联盟)开始赠款援助0765185B,艾尔莎美国帕迪基金会的研究经费,韦恩州立大学校内的启动基金和心血管研究所伊希斯倡议的奖助学金。这种方法在体外 CFTR的大分子复杂的装配最初率先博士AP那仁(田纳西大学健康科学中心)。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
pGEX4T-1 vector GE Healthcare 28-9545-49 formerly Amersham Biosciences
pMAL-C2 vector New England BioLabs
pET30 vector EMD Chemicals 69077-3 formerly Novagen
Glutathione agarose beads BD Biosciences 554780
Amylose resin New England BioLabs E8021S
Talon beads Clontech 635501
reduced glutathione BD Biosciences 554782
imidazole Fisher BP305-50
maltose Fisher BP684-500
S-protein agarose EMD Chemicals 69704-3 formerly Novagen
Anti-Flag HRP Sigma A8592
Anti-CFTR IgG Custom-made R1104 mAb recognizing CFTR epitope at a.a. 722-734
Anti-MRP2 IgG Chemicon International MAB4148 Now a part of Millipore

Table 2. Specific reagents and equipment.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Anderson, M. P. Demonstration that CFTR is a chloride channel by alteration of its anion selectivity. Science. 253, 202-205 (1991).
  2. Bear, C. E. Purification and functional reconstitution of the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator (CFTR. Cell. 68, 809-818 (1992).
  3. Quinton, P. M. Chloride impermeability in cystic fibrosis. Nature. 301, 421-422 (1983).
  4. Cheng, S. H. Defective intracellular transport and processing of CFTR is the molecular basis of most cystic fibrosis. Cell. 63, 827-834 (1990).
  5. Gabriel, S. E., Brigman, K. N., Koller, B. H., Boucher, R. C., Stutts, M. J. Cystic fibrosis heterozygote resistance to cholera toxin in the cystic fibrosis mouse model. Science. 266, 107-109 (1994).
  6. Li, C., Naren, A. P. CFTR chloride channel in the apical compartments: spatiotemporal coupling to its interacting partners. Integr. Biol (Camb). 2, 161-177 (2010).
  7. Chao, A. C. Activation of intestinal CFTR Cl- channel by heat-stable enterotoxin and guanylin via cAMP-dependent protein kinase. Embo. J. 13, 1065-1072 (1994).
  8. Gabriel, S. E., Clarke, L. L., Boucher, R. C., Stutts, M. J. CFTR and outward rectifying chloride channels are distinct proteins with a regulatory relationship. Nature. 363, 263-268 (1993).
  9. McNicholas, C. M. Sensitivity of a renal K+ channel (ROMK2) to the inhibitory sulfonylurea compound glibenclamide is enhanced by coexpression with the ATP-binding cassette transporter cystic fibrosis transmembrane regulator. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 93, 8083-8088 (1996).
  10. Schreiber, R., Nitschke, R., Greger, R., Kunzelmann, K. The cystic fibrosis transmembrane conductance regulator activates aquaporin 3 in airway epithelial cells. J. Biol. Chem. 274, 11811-11816 (1999).
  11. Shumaker, H., Amlal, H., Frizzell, R., Ulrich, C. D. 2nd, Soleimani, M. CFTR drives Na+-nHCO-3 cotransport in pancreatic duct cells: a basis for defective HCO-3 secretion in CF. Am. J. Physiol. 276, 16-25 (1999).
  12. Ahn, W. Regulatory interaction between the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator and HCO3- salvage mechanisms in model systems and the mouse pancreatic duct. J. Biol. Chem. 276, 17236-17243 (2001).
  13. Sugita, M., Yue, Y., Foskett, J. K. CFTR Cl- channel and CFTR-associated ATP channel: distinct pores regulated by common gates. Embo. J. 17, 898-908 (1998).
  14. Naren, A. P. Regulation of CFTR chloride channels by syntaxin and Munc18 isoforms. Nature. 390, 302-305 (1997).
  15. Naren, A. P. Syntaxin 1A is expressed in airway epithelial cells, where it modulates CFTR Cl(-) currents. J. Clin. Invest. 105, 377-386 (2000).
  16. Naren, A. P. A macromolecular complex of beta 2 adrenergic receptor, CFTR, and ezrin/radixin/moesin-binding phosphoprotein 50 is regulated by PKA. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100, 342-346 (1073).
  17. Li, C. Lysophosphatidic acid inhibits cholera toxin-induced secretory diarrhea through CFTR-dependent protein interactions. J. Exp. Med. 202, 975-986 (2005).
  18. Li, C. Spatiotemporal coupling of cAMP transporter to CFTR chloride channel function in the gut epithelia. Cell. 131, 940-951 (2007).
  19. Li, C., Schuetz, J. D., Naren, A. P. Tobacco carcinogen NNK transporter MRP2 regulates CFTR function in lung epithelia: implications for lung cancer. Cancer Lett. 292, 246-253 (2010).
  20. Hall, R. A. A C-terminal motif found in the beta2-adrenergic receptor, P2Y1 receptor and cystic fibrosis transmembrane conductance regulator determines binding to the Na+/H+ exchanger regulatory factor family of PDZ proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 95, 8496-8501 (1998).
  21. Short, D. B. An apical PDZ protein anchors the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator to the cytoskeleton. J. Biol. Chem. 273, 19797-19801 (1998).
  22. Wang, S., Yue, H., Derin, R. B., Guggino, W. B., Li, M. Accessory protein facilitated CFTR-CFTR interaction, a molecular mechanism to potentiate the chloride channel activity. Cell. 103, 169-179 (2000).
  23. Sun, F. E3KARP mediates the association of ezrin and protein kinase A with the cystic fibrosis transmembrane conductance regulator in airway cells. J. Biol. Chem. 275, 29539-29546 (2000).
  24. Cheng, J. A Golgi-associated PDZ domain protein modulates cystic fibrosis transmembrane regulator plasma membrane expression. J. Biol. Chem. 277, 3520-3529 (1074).
  25. Scott, R. O., Thelin, W. R., Milgram, S. L. A novel PDZ protein regulates the activity of guanylyl cyclase C, the heat-stable enterotoxin receptor. The Journal of biological chemistry. 277, 22934-22941 (1074).
  26. Lee, J. H. Dynamic regulation of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator by competitive interactions of molecular adaptors. The Journal of biological chemistry. 282, 10414-10422 (2007).
  27. Gee, H. Y., Noh, S. H., Tang, B. L., Kim, K. H., Lee, M. G. Rescue of DeltaF508-CFTR trafficking via a GRASP-dependent unconventional secretion pathway. Cell. 146, 746-760 (2011).
  28. Naren, A. P. Methods for the study of intermolecular and intramolecular interactions regulating CFTR function. Met. Molecul. Med. 70, 175-186 (2002).
  29. Li, C., Roy, K., Dandridge, K., Naren, A. P. Molecular assembly of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator in plasma membrane. The Journal of biological chemistry. 279, 24673-24684 (2004).
  30. Li, C., Naren, A. P. Analysis of CFTR Interactome in the Macromolecular Complexes. Met. Molecul. Med. 741, 255-270 (2011).
  31. Wu, Y. A chemokine receptor CXCR2 macromolecular complex regulates neutrophil functions in inflammatory diseases. J. Biol. Chem. , (2011).

Tags

66期,生物化学,分子生物学,化学,CFTR的,复杂的大分子,蛋白质相互作用,脚手架的PDZ蛋白,上皮细胞,囊肿性纤维化
依赖的PDZ-CFTR的大分子信号复合物<em>的体外</em>分析
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Wu, Y., Wang, S., Li, C. InMore

Wu, Y., Wang, S., Li, C. In Vitro Analysis of PDZ-dependent CFTR Macromolecular Signaling Complexes. J. Vis. Exp. (66), e4091, doi:10.3791/4091 (2012).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter