Summary
Los macrófagos juegan un papel central en la homeostasis y la patología en muchos tejidos. El protocolo presentado aquí se describen métodos para agotar los macrófagos
Abstract
Los macrófagos son participantes cruciales en la respuesta inmune innata a cualquier reto infeccioso o lesión, iniciando la respuesta inmune innata y la dirección de la respuesta inmune adquirida. La disfunción de macrófagos puede conducir a la incapacidad de montar una respuesta inmune adecuada y, como tal, ha sido implicado en muchos procesos patológicos, incluyendo las enfermedades inflamatorias del intestino. Los macrófagos muestran fenotipos polarizadas que se dividen en dos categorías. Macrófagos activados Clásicamente, activada por la estimulación con LPS o IFN, desempeñan un papel esencial en la respuesta a la exposición a las bacterias, mientras que los macrófagos activados alternativamente, activada por IL-4 o IL-13, participar en los residuos de barrido y la remodelación tisular y han sido implicados en la resolución fase de la inflamación. Durante una respuesta inflamatoria in vivo, los macrófagos se encuentran en medio de una mezcla compleja de la infiltración de células inmunes y puede participar por exacerbar o resolvinag inflamación. Para definir la función de los macrófagos in situ en un modelo animal completo, es necesario examinar el efecto de agotamiento de los macrófagos del entorno complejo. Para hacer preguntas sobre el papel de fenotipo de macrófagos in situ, fenotípicamente definidos los macrófagos polarizados se pueden derivar ex vivo, a partir de aspirados de médula ósea y se añade de nuevo a los ratones, con o sin el agotamiento previo de los macrófagos. En el protocolo presentado aquí clodronato liposomas que contienen, en comparación con los controles de PBS inyectados, se utilizaron para agotar los macrófagos colon durante dextrano sulfato de sodio (DSS)-colitis inducida en ratones. Además, los macrófagos polarizados se obtuvieron ex vivo y se transfiere a los ratones por inyección intravenosa. Una advertencia de este enfoque es que los liposomas que contienen clodronato agotan todos los fagocitos profesionales, incluyendo tanto las células dendríticas y los macrófagos para asegurar el efecto observado por el agotamiento de los macrófagos es específica, la reconstitución ofenotipo f por transferencia adoptiva de los macrófagos es necesario. Agotamiento macrófagos sistémica en ratones también se puede lograr por retrocruzamiento ratones sobre un fondo CD11b-DTR, que es un enfoque complementario excelente. La ventaja de clodronato contiene mediada por liposomas agotamiento es que no requiere el tiempo y los gastos implicados en ratones retrocruzamiento y que puede ser utilizado en ratones con independencia del fondo de los ratones (C57BL / 6, BALB / c, o fondo mixto ).
Protocol
1. Los macrófagos que agotan la Utilización de liposomas que contienen clodronato
- Los liposomas se almacenan a 4 ° C. Dos horas antes de la inyección, retire clodronato que contienen liposomas, los liposomas que contienen PBS o PBS estéril (inyección de control) del refrigerador para permitir que se adapte a la temperatura ambiente (18 ° C).
- Invertir los tubos que contienen liposomas 8-10 veces para asegurar una distribución uniforme antes de cargar 200 l en una jeringa de 1 ml. Colocar una aguja de calibre 26 a la parte superior de la jeringa.
- Con la mano izquierda pescuezo, el ratón debajo de las orejas que sostienen la piel lo suficiente para inmovilizar la cabeza y las extremidades.
- Al girar el ratón por lo que su cabeza es ligeramente hacia el suelo para los órganos internos se mueven lejos del sitio de inyección, que se encuentra en el cuadrante inferior derecho del abdomen.
- Haga rodar la jeringa entre las palmas de las manos e invertirlo 6 veces para distribuir uniformemente la solución de liposomas antes de la inyección. <li> Inserta la aguja en la parte inferior derecha del abdomen del ratón en un ángulo de 30-40. Inyectar 200 l de solución de liposomas o PBS.
- Durante un modelo de inflamación inducida, como la colitis inducida por DSS, inyectar ratones 4 días antes de la aparición de la inflamación experimental para garantizar el agotamiento de los macrófagos residentes y cada 2 días durante el protocolo de agotar los nuevos macrófagos infiltrantes.
- Al final del experimento, junto con los análisis experimentales planificadas, extraer tejidos desde el sitio de interés y fijar con paraformaldehído para confirmar el agotamiento del macrófago por tinción inmunohistoquímica.
2. Derivación de los macrófagos polarizados de aspirados de médula ósea
- La médula ósea de ratones de entre 8 y 12 semanas de edad proporciona el mayor rendimiento de derivados de médula ósea macrófagos. Practicar la eutanasia con el ratón, que yacía sobre la espalda, y precisar sus patas, que se extiende a sus miembros en la medida de lo posible.
- Trabajo en un recipiente estéril Hood, eliminar fémur y la tibia, cortando tanto músculo como sea posible.
- Lavar la médula de los huesos usando IMDM con FCS al 10% carga en una jeringa de 5 ml equipado con una aguja de calibre 26.
- Diluir aspirado de médula ósea a 40 ml en IMDM con 10% FCS, las células de lugar en una de 75 cm 2 frasco de cultivo de tejidos, y se incuba a 37 ° C, 5% de CO 2 durante 4 horas. Este paso quita adherentes células mesenquimales o macrófagos maduros de progenitores hematopoyéticos.
- Transferir el sobrenadante de cultivo que contiene no adherentes progenitores a un Tubo de 50 ml cónico de Falcón y centrifugar durante 5 min a 1200 rpm.
- Resuspender pellet de células en 5 ml de IMDM, 10% de FCS y contar las células nucleadas por dilución de la suspensión celular 1 en 20 en ácido acético. Este procedimiento destruye las células, incluyendo todos los glóbulos rojos y los núcleos restantes se pueden contar con un hemocitómetro.
- Resuspender las células a una concentración de 0,5 x 10 6 células / ml en medio completo; IMDM, 10% FCS, 150 mM monotioglicerol (MTG), y 10 ng / ml de cualquiera de MCSF, GM-CSF o IL-3. MCSF macrófagos derivados son clásicamente macrófagos activados, mientras que los macrófagos GM-CSF o IL-3-derivados se alternativamente activado.
- Sustituir medio a 4 días, girando hacia abajo las células no adherentes y devolverlos al matraz, y en el día 7, descartando las células no adherentes.
- Además, IFN (10 ng / ml) o IL-4 (10 ng / ml) se puede añadir a matraces que contienen MCSF células derivadas en el día 7 a los macrófagos sesgar a una. Clásicamente activado o un fenotipo alternativamente activado, respectivamente Se incuban las células durante 3 días más.
- Al día 10, se separa el medio y levante las células fuera del frasco de cultivo de tejidos utilizando la célula tampón de disociación (Gibco-BRL). Coloque 5 ml de tampón en las células durante 5 minutos a temperatura ambiente (18 ° C) y luego golpear el lado del aparato, con el talón de la palma de la mano firmemente varias veces. Asegurarse de que las células han quitado del matraz examinando el matraz bajo unmicroscopio. Pipetee resuspendieron las células en un tubo de 15 ml cónico Falcon y lavar el matraz con 10 ml adicionales de IMDM, 10% de FBS. La piscina y centrifugar las células durante 5 minutos a 300 x g.
- Contar células viables utilizando un hemocitómetro y resuspende a una concentración de 10 7 células / ml en PBS estéril pH 7,4. Los macrófagos están listos para su inyección en ratones.
- Reserva de 1,0 × 10 6 macrófagos para la evaluación del fenotipo de los macrófagos. Macrófagos activados Clásicamente estimulados con niveles altos de lipopolisacárido secretan óxido nítrico y los niveles de IL-12p70 y baja de IL-10 en comparación con los macrófagos activados alternativamente. Macrófagos activados alternativamente expresan constitutivamente YM1 y arginasa I (Argi), que puede ser detectada por inmunotransferencia.
3. Tranferring macrófagos en ratones
- Macrófagos Resuspender en PBS estéril a una concentración de 10 7 células / ml. Esto permite una eninyección intravenosa de 10 6 macrófagos en un volumen total de 100 l, que es un volumen que puede ser de forma segura y cómodamente inyecta en ratones por la vena de la cola.
- Los ratones tibia con una almohadilla térmica o una vuelta al calor durante 5-10 minutos para dilatar la vena de la cola. Controlar el ratón en todo momento en busca de signos de la hipertermia.
- Transferir el ratón a un dispositivo de retención que permite el acceso a las venas de la cola.
- Gire la cola de 90 ° para que la vena se hacia arriba. Las venas correr lateralmente a ambos lados de la cola y, o bien la vena se puede utilizar.
- Limpie el sitio de la inyección con un algodón empapado en alcohol y poco a poco, inyectar 100 l (10 6 macrófagos), utilizando una jeringa de 1 ml con una aguja de calibre 26 ó 28. Insertar la aguja con el lado cónico hacia arriba y con un ligero ángulo, casi paralela a la vena.
- Si la aguja se inserta adecuadamente sin resistencia debe ser sentida y la vena debe quedar claro después de la inyección. Si la aguja no está en elorden de cosas, la cola se hinchará. Si esto sucede, retire la aguja y vuelva a intentarlo proximal a la última tentativa, o en la vena otra. Una nueva aguja debe ser utilizado para cada inyección como la cola es dura y las agujas se embotan rápidamente durante la inyección vena de la cola.
- Después de la inyección, retire la aguja, aplique una leve presión sobre el sitio de la inyección hasta que el sangrado se detenga, y controlar el ratón de un 5 minutos adicionales para asegurarse de que el sangrado se ha detenido.
- Repetir las inyecciones macrófagos cada 4 días para asegurar un suministro continuo de los macrófagos polarizados durante el procedimiento experimental.
- Al final del experimento, junto con los análisis experimentales, extraer tejidos desde el sitio de interés y fijar con paraformaldehído o formalina para confirmar la entrega efectiva de los macrófagos polarizados por tinción inmunohistoquímica.
4. Los resultados representativos
El número y el fenotipo de macrop residentePasador valvula en cualquier tejido determinado depende del tejido que se examina y cambiará durante la infección o inflamación. De manera similar, la capacidad de los liposomas que contienen clodronato para agotar los macrófagos a partir de un tejido dependerá de la vía de administración y la entrega efectiva para el tejido diana. La inyección intraperitoneal de clodronato liposomas que contienen los resultados en una disminución en F4/80 + macrófagos en el colon de ratón durante DSS-colitis inducida evidente por tinción inmunohistoquímica para el marcador de macrófagos, F4/80 (Figura 1A). Tinción histológica también se puede utilizar para determinar las diferencias cuantitativas en número de macrófagos y fenotipo en secciones de tejido. Figura 1B muestra que un promedio de 55% de los macrófagos se agote por clodronato que contienen liposomas en comparación con ningún agotamiento detectado en dos puntos del ratón cuando los ratones son inyectados con PBS solo como un control de la inyección. Cada valor se determina contando F4/80 y Argi manchaed células positivas en cortes de tejidos de serie de 6 ratones a los 3 puntos, en 3 secciones por ratón con contar los trabajos realizados por dos individuos cegados a la condición experimental. Estos resultados demuestran que las inyecciones intraperitoneales de liposomas clodronato agotan los macrófagos de colon en ratones.
Derivación de los macrófagos de médula ósea en presencia de diferentes factores de crecimiento rendimientos macrófagos que son clásicamente activados (MCSF derivado o derivados-MCSF y se trató con IFN) o alternativamente activado (GM-CSF o IL-3-derivado o derivados y MCSF tratadas con IL-4). Lavado de médula ósea de 2 fémur y la tibia 2 de un ratón 8 semanas de edad típicamente rinde 6 x 10 7 células nucleadas por ratón y de los rendimientos 8 x 10 6 MCSF derivados de macrófagos, 10 x 10 6-GM-CSF derivados macrófagos, o 12 x 10 6 IL-3-macrófagos derivados. Figura 2A muestra el nitrito y la relación IL-12p70/IL-10 en macrófagos supernatants tratados con lipopolisacárido durante 24 horas la Figura 2B muestra un análisis típico de transferencia Western de 0,5 x 10 6 macrófagos de MCSF + / -. IL-4 condiciones derivación probaron con anticuerpos para marcadores de macrófagos activados alternativamente, Argi, YM1, o con GAPDH como un control de carga. Estos datos demuestran que derivados de médula ósea macrófagos pueden estar sesgadas a un fenotipo polarizado durante la derivación.
La transferencia efectiva de ex vivo derivadas macrófagos polarizados a un tejido depende de la vía de administración y el acceso al tejido. Durante DSS-colitis inducida, macrófagos inyecta por vía intravenosa viajar al sitio de la inflamación y macrófagos activados alternativamente reducir la severidad de la enfermedad. Figura 3A muestra el número total de los macrófagos y el número de macrófagos Argi + (alternativamente activado) contados en secciones histológicas de ratones inyectados con polarizado médula óseaDerivados de macrófagos. El impacto de la transferencia de los macrófagos polarizados a los dos puntos en la colitis inducida por DSS-se muestra el índice de actividad de la enfermedad, una puntuación de aditivo basada en la pérdida de peso, sangrado rectal, heces y consistencia disminuyó (Figura 3B). Estos resultados demuestran que ex vivo deriva, los macrófagos pueden adoptiva transferidos tráfico hacia el colon y la inflamación inducida por el impacto. Macrófagos M1 no afectan a la inflamación, mientras que los macrófagos M2 reducir significativamente índice de actividad de la enfermedad.
Figura 1. Clodronato liposomas que contienen efectivamente agotan F4/80 + y + F480 Argi + en las células de ratón en dos puntos in vivo. Una generación F2 de ratones de tipo salvaje en una mezcla de C57BL / 6 x fondo 129Sv recibieron DSS 5% durante 7 días y de propiedad intelectual inyectado con PBS (control) o liposomas que contienen clodronato (clodronato) 4 días antes de la DSS del tratamientoy en los días 0, 2, 4 y 6 durante el tratamiento DSS. (A) Los dos puntos fueron retirados, fijo, y las secciones fueron teñidas por inmunohistoquímica para macrófagos maduros (F4/80) y el marcador de macrófagos M2, Argi. (B) Cuantificación de F4/80 + y macrófagos ARGI +. Células teñidas positivamente fueron contados por dos individuos ciegos a la condición experimental de ampliación × 40 en 6 campos de 3 secciones y de ratón y de 6 ratones por grupo. * P <0,01.
Figura 2. MCSF derivados de macrófagos expresan un fenotipo clásicamente activado y MCSF derivados de macrófagos tratados con IL-4 expresar un fenotipo de macrófagos activados alternativamente. (A) De acuerdo con un fenotipo clásicamente activado, MCSF derivados de los macrófagos producen mayores niveles de óxido nítrico en respuesta a lipopolisacárido y se puede medir por el ensayo de Griess, que detecta su metabolito intermedio, el nitrito. Se also producir una mayor proporción IL-12p70/IL-10, que puede ser medida por ELISA. * P <0,01 para n = 3. (B) De acuerdo con un fenotipo alternativamente activado, MCSF derivados de macrófagos tratados con IL-4 YM1 expresan constitutivamente y Argi, que puede ser detectada por inmunotransferencia Western. Los datos son representativos de 3 experimentos independientes con resultados similares.
Figura 3. Inyectado por vía intravenosa, ex vivo derivado de los macrófagos activados alternativamente, el tráfico en el colon y reducir la inflamación intestinal. Una generación F2 de ratones de tipo salvaje en una mezcla de C57BL / 6 x 129Sv de fondo se les dio 5% del DSS en el agua de bebida durante seis días. Macrófagos M1 y M2 fueron inyectados IV en los días 0 y 4 durante el tratamiento con DSS. (A) Los dos puntos fueron retirados, fijo, y las secciones fueron teñidas por inmunohistoquímica para macrófagos maduros (F4/80) y un marcador de macrófagos M2 (Argi).La cuantificación de los macrófagos de los ratones de control de PBS inyectado (C), los ratones inyectados con los macrófagos M1 (+ M1) y los ratones inyectados con los macrófagos M2 (M2 +) fueron realizados por el recuento de células con tinción positiva con un aumento de × 40 en 6 campos de 3 secciones / ratón y de 6 ratones / grupo. Conteo se llevó a cabo por dos individuos cegados a la condición experimental. (B) Actividad de la enfermedad se controló y anotó todos los días durante el tratamiento y es una puntuación aditivo basada en la pérdida de peso, sangrado rectal, heces y la consistencia disminuye. * P <0,05 para n = 6 ratones en 2 experimentos independientes.
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Discussion
Los macrófagos son células fagocíticas que juegan un papel importante en el sistema inmunológico. Ellos son los responsables de iniciar la respuesta inmune innata y la dirección de la respuesta inmune adquirida. Típicamente, los macrófagos activados clásicamente son activados por IFN o LPS y son responsables de la eliminación de patógenos y montaje de una respuesta inflamatoria 1. A la inversa, los macrófagos activados alternativamente se activan por la IL-4 o IL-13 y jugar un papel en los desechos de barrido y remodelación de los tejidos durante la resolución de la inflamación 1. Macrófagos especializados en el intestino mantener su actividad bactericida, pero no montar una respuesta de 2 pro-inflamatorias. Esta tolerancia a la flora beneficiosa y antígenos de alimentos permite la remoción de material que infrinja la barrera epitelial sin iniciar una respuesta inmune inapropiada y potencialmente patológico 3. Función de los macrófagos aberrante del colon puede contribuira las condiciones patológicas, como enfermedades inflamatorias intestinales, síndrome del intestino irritable, cáncer colorrectal y 3-5. Fenotipo de macrófagos es dependiente del microambiente local para definir su papel en la salud o la enfermedad puede ser un reto. El protocolo descrito aquí permite el agotamiento de macrófagos a partir del complejo en el entorno in vivo. Además, para examinar el papel de fenotipo de macrófagos in situ, fenotípicamente definidos macrófagos polarizadas se pueden derivar ex vivo de aspirados de médula ósea y adoptivamente transferido a los ratones, con o sin previo agotamiento de los macrófagos.
Que contienen clodronato-liposomas promover macrófagos "suicida" y se han utilizado para agotar los macrófagos en una variedad de tejidos 6. Los macrófagos fagocitan clodronato liposomas que contienen, que son posteriormente degradadas por las fosfolipasas lisosómicas liberando el clodronato en la célula y la inducción de apoptosis 12 12. Los liposomas se deben distribuir uniformemente en solución antes de cargar en la jeringa y antes de la inyección en el ratón, independientemente de la vía de administración o tejido diana. PBS inyecciones y la inyección de PBS que contienen liposomas se requieren controla cuando agotan los macrófagos in vivo con clodronato liposomas que contienen 7. PBS que contienen liposomas parece ser un mejor control de PBS inyecciones solo. Sin embargo, es importante observar que mientras que algunos informes han utilizado con éxito PBS que contienen liposomas como un control; nosotros, y otros, han informado de que PBS que contienen liposomas pueden agotar los macrófagos en algunas condiciones experimentales 8, 9. Además, los liposomas solamente se han reportado para inhibir la fagocitosis temporalmente 10. Agotamiento macrófagos por PBS que contienen liposomas puede ser dependiente de pcapacidad de hagocytic y puede variar en función de una cepa de ratón, los antecedentes genéticos, los tejidos, y / o condición experimental. El uso de PBS que contiene liposomas como un control y su efecto sobre el agotamiento de los macrófagos en una aplicación específica debe determinarse experimentalmente. Por lo tanto, se recomienda que los liposomas tanto de PBS y PBS que contiene-se utilizaron como controles de inyección durante los experimentos iniciales.
Una consideración fundamental en el diseño de experimentos es el agotamiento de los macrófagos de la vía de administración de clodronato liposomas que contienen. Hemos abordado con éxito los macrófagos de colon en ratones utilizando la inyección intraperitoneal 8. Otros han utilizado la administración intrarrectal o intravenosa inyecciones 9, 11. Administración intrarrectal e intraperitoneal han sido reportados para agotar aproximadamente 50% de los macrófagos colon mientras que la inyección intravenosa se ha informado que agotan hasta el 90% de los macrófagos de la láminapropia 8, 9, 11. Hemos elegido para llevar a cabo por vía intraperitoneal, para entregar el clodronato liposomas que contienen, debido a la simplicidad de la técnica y por estudios similares al nuestro han utilizado con éxito esta vía de administración 7. Sin embargo, si mayores niveles de agotamiento en el colon se requieren para un experimento, la inyección intravenosa puede mejorar el agotamiento.
La vía de administración es una consideración importante para el agotamiento de los macrófagos en diferentes tejidos. Inyecciones intraperitoneales se han utilizado para agotar peritoneal, omento, nodo linfático paratímico, el hígado y los macrófagos esplénicos 12. Las inyecciones intravenosas se han utilizado para agotar los macrófagos en el hígado, el bazo y la médula ósea 12. Administración intraventricular de clodronato que contienen liposomas ha sido utilizado para agotar los macrófagos perivasculares y meníngea del cerebelo, cerebro y la médula espinal 12. Intratraquealy la administración intranasal de clodronato que contienen liposomas se han utilizado para agotar los macrófagos alveolares. Finalmente, la administración local ha sido utilizado con éxito para agotar los macrófagos testiculares y vítreo 12, 13. La eficacia de la depleción de macrófagos en un tejido diana debe ser determinado experimentalmente y validado por tinción tejidos por inmunohistoquímica (Figura 1A) o por citometría de flujo. En algunos casos puede ser necesario aumentar la tasa de agotamiento de macrófagos. Las variables que se pueden optimizar para aumentar el agotamiento incluyen cambiar la ruta de la administración de clodronato que contienen liposomas, que contienen la cantidad de clodronato-liposomas por inyección y / o la frecuencia de la inyección.
Una consideración importante en la interpretación de los datos cuando agotan los macrófagos con clodronato que contienen liposomas es que todos los fagocitos profesionales están agotadas, incluidas las células dendríticas. Para garantizar que unaefecto biológico se macrófago-dependiente, los experimentos complementarios de reconstitución se requieren. Derivación de los macrófagos de aspirados de médula ósea es una herramienta útil para los experimentos de reconstitución así como la investigación investigando función de los macrófagos. Hemos utilizado con éxito este protocolo para los estudios in vitro que exploran el papel de la vía de la PI3K en la activación de los macrófagos alternativa 14. Hay dos pasos críticos en el proceso de derivación. En primer lugar, el agotamiento de paso la adhesión es crucial para eliminar las células adherentes de aspirados de médula ósea, ya sea la contaminación de las células mesenquimales o células hematopoyéticas maduras. En segundo lugar, el fenotipo de macrófagos debe ser confirmado antes de su uso en los procedimientos experimentales. Una modificación de este protocolo es que diferentes modelos genéticos puede ser utilizado para la derivación de los macrófagos y la reconstitución, permitiendo la investigación de la función de genes específicos en el fenotipo de macrófagos y la función in vitro und in vivo. Para los experimentos de reconstitución, la inyección intravenosa es el modo más común de entrega de macrófagos, pero tanto la cantidad de células y la frecuencia de inyección puede ser optimizado para un estudio específico. Retro-orbital inyecciones pueden ser utilizados para la reconstitución y debe proporcionar resultados similares. Es de destacar que los macrófagos son reclutados a sitios de inflamación y su fenotipo puede ser cambiado en respuesta a las señales de su microambiente. Finalmente, la transferencia adoptiva puede ser suficiente para entregar los macrófagos para un tejido diana, pero el agotamiento previo de los macrófagos tisulares residentes puede ser necesaria para permitir el establecimiento de los macrófagos adoptivamente transferidos.
El protocolo presentado aquí tiene una serie de ventajas sobre los métodos existentes. Un método alternativo para agotar los macrófagos es mediante el uso de la ablación condicional ratón transgénico, CD11b-DTR 15. En este ratón, la toxina humana difteria (DT) del receptor se expresa bajo el control de Of el promotor CD11b macrófagos específico. Esto confiere sensibilidad toxina y la inyección DT provoca un descenso en los macrófagos 15. Aunque el agotamiento macrófagos porcentaje es mayor en este modelo, clodronato liposomas que contienen ofrece dos ventajas importantes. Clodronato contiene inyección de liposomas se puede utilizar para agotar los macrófagos en cualquier cepa de ratón. Los macrófagos pueden ser agotados a partir de ratones genéticamente modificados sin el tiempo y costo requerido para retrocruzamiento que se requiere para utilizar el método del ratón CD11b-DTR. Por la misma razón, los macrófagos se pueden agotar a partir de ratones en cualquier fondo, que es una consideración importante si el modelo está investigando requiere un fondo único o mixto. Del mismo modo, los experimentos de transferencia adoptiva con macrófagos in vivo, ex derivados de una línea de ratones evita cualquier problema con alorreactividad.
Los protocolos descritos aquí se puede aplicar a una variedad de preguntas de investigación. Hemos utilizado ªESE técnicas para estudiar el papel de los macrófagos en la inflamación en el colon. Clodronato que contiene liposomas mediada por el agotamiento de macrófagos y la transferencia adoptiva de los macrófagos puede ser utilizada para combatir un gran número de tejidos. Transferencia adoptiva de macrófagos puede ser utilizado para la reconstitución de los macrófagos agotados o macrófagos directos a los sitios de la inflamación en modelos genéticos o inducible de la inflamación. Este protocolo también proporciona una plataforma para el examen de los macrófagos terapias dirigidas en modelos de enfermedad en los macrófagos o su polarización están asociados con la patología.
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Disclosures
No hay conflictos de interés declarado.
Acknowledgments
Este trabajo fue apoyado por una "subvención al Servicio de la Investigación" de la enfermedad de Crohn y Colitis Foundation of Canada al LMS, que se apoya en una Asociación Canadiense de Gastroenterología / Asociación Canadiense de Investigación en Salud / enfermedad de Crohn 's and Colitis Foundation Premio de Canadá, New Investigator.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Clodronate-containing liposomes | Clodronateliposomes.org | ||
| PBS-containing liposomes | Clodronateliposomes.org | ||
| Sterile PBS pH7.4 | Invitrogen | 14190 | |
| IMDM | Invitrogen | 12440 | |
| Fetal Calf Serum (FCS) | Invitrogen | 12483 | |
| acetic acid | BDH Aristar | BDH3092-500MLP | |
| Monothioglycerol (MTG) | Sigma | 96-275 | |
| Recombinant murine MCSF | Stemcell Technologies | 02951 | |
| Recombinant murine GM-CSF | Stemcell Technologies | 02935 | |
| Recombinant murine IL-3 | Stemcell Technologies | 02903 | |
| Recombinant murine IFNγ | Stemcell Technologies | 02746 | |
| Recombinant murine IL-4 | Stemcell Technologies | 02714 | |
| Cell Dissociation Buffer | Invitrogen | 13150-016 | |
| Rat anti-F4/80 Antibody | AbD Serotec | MCA497GA | |
| Mouse anti-ArgI Antibody | BD Transduction Laboratories | 610708 | |
Table 1. Specific reagents used in this protocol. |
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References
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