Summary
يوصف بروتوكول لإعداد قوي وعصائر هيلا الصغيرة النووية. هذا البروتوكول هو قيمة للفحوصات التي تتطلب استخدام المجموعات الصغيرة من الخلايا، مثل الخلايا المعالجة بالأدوية أو رني. ينبغي أن تكون قابلة للتطبيق على طريقة طائفة واسعة من فحوصات الجينات وغيرها من أنواع الخلايا، بما في ذلك خلايا المريض.
Abstract
وقد أحرز قدر كبير من التقدم في التعبير الجيني في فهم استخدام نظم المختبر. بالنسبة لمعظم الدراسات، وتجرى فحوصات وظيفية خارج باستخدام مقتطفات التي يتم إعدادها في معظم 10-50 أو أكثر لترا من الخلايا التي تزرع في التعليق. ومع ذلك، هذه الاستعدادات واسعة النطاق ليست قابلة للاختبار سريع في المختبر الآثار التي تنجم عن مجموعة متنوعة من العلاجات الخلوية في الجسم الحي أو شروط. هذه المقالة الفيديو مجلة تظهر طريقة لإعداد وظيفي على نطاق صغير مقتطفات النووية، وذلك باستخدام خلايا هيلا كمثال على ذلك. ويتم هذا الأسلوب من استخدام عدد قليل من 3 150 ملم لوحات من الخلايا كما نمت monolayers ملتصقة. لتوضيح كفاءة مقتطفات صغيرة الحجم، وتبين لنا أن تكون نشطة قدر مقتطفات النووي بكميات كبيرة لردود الفعل الديناميكي بوليميريز الحمض النووي الريبي نسخ / الربط الثاني. للتدليل على فائدة من بروتوكول المقتطف، وتبين لنا أن يتم إلغاء الربط في مقتطفات أعدت من خلية هيلاعلاجه مع المخدرات E7107 الربط المانع. وينبغي أن البروتوكول على نطاق صغير تكون قابلة للتطبيق بشكل عام على أي عملية أو نوع من الخلايا التي يمكن أن يتم التحقيق في المختبر باستخدام خلاصات الخلوية. وتشمل هذه الخلايا المريضة التي لا تتوفر إلا بكميات محدودة أو الخلايا المعرضة للعوامل عديدة مثل الأدوية، وكلاء الحمض النووي الضارة، ورني، أو ترنسفكأيشن، والتي تتطلب استخدام السكان زنزانة صغيرة. وبالإضافة إلى ذلك، كميات صغيرة من الخلايا المزروعة حديثا هي مريحة و / أو المطلوبة لبعض التطبيقات.
Protocol
1. خلايا هيلا المتزايد على استخراج النووية
- تستكمل لوحة خلايا هيلا على ثلاث لوحات 150 مم مع وسائل الاعلام DMEM مع FBS 10٪ و 1٪ البنسلين / الستربتومايسين عقار. تنمو في الحاضنة 37 درجة مئوية مع ثاني أكسيد الكربون بنسبة 5٪ 2 حتى الخلايا هي متكدسة 90٪.
بلاغ تقسيم الخلايا 1:10 من لوحة متكدسة وحصاد 3 أيام بعد انفصالها.
يمكن زراعتها بلاغ لوحة اضافية في حال عدم وجود ما يكفي من الخلايا مع ثلاث لوحات (على سبيل المثال، إذا كانت الخلايا أقل من 90٪ متموجة).
2. إعداد والبرد حلول استخراج النووية
- إعداد حلول جديدة على النحو المبين في الجدول رقم 2.
- قسامة 10 مل من الاحتياطي منخفض التوتر في أنبوب 15 مل الصقر. قسامة 1 مل من مخزن الملح و 1 مل من الاحتياطي ملح قليلة إلى 1.5 أنابيب إيبندورف مل. البرد المخازن المؤقتة على الجليد. إضافة كميات مناسبة من PMSF وDTT إلى كل العازلة مباشرة قبل استخدامها (انظر
3. حصاد خلايا هيلا لاستخراج النووية
- نضح وسائل الاعلام من الخلايا، ويغسل خلايا مرة واحدة مع 13 مل من درجة حرارة الغرفة 1X PBS لكل لوحة.
- نضح غسل برنامج تلفزيوني.
بلاغ نضح قدر من برنامج تلفزيوني ممكن عن طريق الشفط الأولى، ثم يقف لوحة على جانبها، والانتظار بضع ثوان، والشفط بقية.
- باستخدام رافع الخلية، كشط الخلايا إلى الحافة السفلى من لوحات، ومن ثم نقل الخلايا إلى أنبوب إيبندورف. تجنب الوقوع في فقاعات. وينبغي لوحات 3 من خلايا كشط تنسجم مع واحدة 1،5 أنبوب إيبندورف مل.
بلاغ من السهل تقدير حجم الخلايا إذا تم استخدام أنبوب إيبندورف. ليصل الحجم، واستخدام أنابيب الصقر.
- الطرد المركزي في درجة مئوية 4 في microfuge لمدة 5 دقائق عند 100 XG إلى خلايا بيليه.
4. تتورم خلايا هيلا في الواق منخفض التوتر
5. ليز خلايا باستخدام الخالط Dounce
- استخدام الاحتياطي منخفض التوتر لشطف dounce ومن ثم فتور على الجليد. مسح جاف مدقة مع WIP مهمة حساسةإيه (على سبيل المثال Kimwipe). إزالة المنطقة العازلة المتبقي من dounce باستخدام 1000 ميكرولتر طرف micropipette الموسعة.
- نقل الخلايا تورم في dounce. تحرك ببطء مدقة ضيق من dounce صعودا وهبوطا إلى 5 مرات ليز الخلايا، والحرص على تجنب الفقاعات.
- فحص للتحلل الخلية باستخدام قسامة 5 ميكرولتر من الخلايا من dounce. وضع قسامة في أنبوب إيبندورف وإضافة حجم مساو من أزرق التريبان. ضعي المزيج على شريحة ودراسة الخلايا باستخدام مجهر الضوء. ونوى الخلايا هي lysed تظهر باللون الأزرق. حوالي 90٪ تحلل مثالية.
معلومات سرية وعدد المرات التي ينبغي dounced الخلايا سوف تختلف تبعا لضيق من dounce. عند تنفيذ هذا البروتوكول للمرة الأولى، وتحديد عدد المرات إلى dounce من خلال تنفيذ الخطوة 5.3 بعد كل السكتة الدماغية مع dounce. لا تبالغ في dounce، سوف douncing المفرط تدمير نوى.
- نقل الخلايا هي lysed إلى ما قبل chilleد إيبندورف أنبوب وتدور في microfuge 4 درجة مئوية لمدة 5 دقائق في 1500 × ز. وبيليه يحتوي على نواة. نقل بعناية وطاف على أنبوب جديد دون تعطيل نوى. وطاف يحتوي على السيتوبلازم.
معلومات سرية ويمكن استخدامها السيتوبلازم كما هو أو مواصلة تجهيزها لS100 باستخدام نفس عالية السرعة تستخدم لزيادة ونقصان مقتطفات السائبة (انظر 1 لإعداد S100 نشط من مقتطفات بالجملة).
6. الملح استخراج النواة
- تقدير حجم جاهزة النووية (الباسكي) من خلال النظر في تدرج على أنبوب. وPCV من 500 ميكرولتر ينتج عادة الباسكي من 400 ميكروليتر.
- إضافة ½ X الباسكي من الاحتياطي سولت الأقل إلى النواة عن طريق إدراج معلومات سرية micropipette إلى أسفل الأنبوب والتدفق ببطء المخزن المؤقت في نواة في حين خلط بلطف. لا الماصة صعودا وهبوطا. نفض الغبار بلطف الأنابيب للتأكد من أن يتم معلق تماما بيليه في المخزن المؤقت ملح قليلة قبل الشروع في الاستمرار. <لى> إضافة ½ X الباسكي من مخزن الملح وتخلط بسرعة 1 مرة بواسطة أنبوب للقلب. لا تهز. تناوب على 4 درجات مئوية لمدة 30 دقيقة.
بلاغ كن لطيفا مع نواة عندما يكونون في مخزن الملح لتجنب lysing لهم.
- تدور في درجة مئوية 4 في microfuge لمدة 15 دقيقة في ز س 18000. وطاف هو استخراج الملح ارتفاع النووية (HS-NE). ثلاث لوحات من الخلايا تنتج عادة 500-600 ميكروليتر من HS-NE.
7. وتركز Dialyze استخراج النووية
- نقل 500 ميكرولتر من HS-NE إلى مبرد مصغرة centricons (Amicon)، وتدور لمدة 50 دقيقة في 4 درجات مئوية في microfuge في ز س 14000. عكس المصغرة centricon (Amicon) ووضعها في أنبوب إيبندورف جديد. تدور لمدة 2 دقيقة في 4 درجة مئوية 1000 x ج لاسترداد HS-NE. وسوف تتركز HS-NE إلى ما يقرب من 115 ميكرولتر.
- باستخدام Pipetman P200، نقل 45 aliquots ميكرولتر من HS-NE إلى شريحة مصغرة لغسيل الكلى، Lyzers-A، ووضعها في 500 مل من مخزن مبرد غسيل الكلى. ضمان أن يتم محاذاة الجزء السفلي من الشريحة-A-Lyzer مع الجزء السفلي من العوام. يقلب لمدة 1-2 ساعات في 4 درجة مئوية. سوف تظهر NE غائم بعد لغسيل الكلى.
معلومات سرية لا الطرد المركزي لإزالة راسب غائم الذي لوحظ بعد لغسيل الكلى، حيث ان هذا الطرد المركزي يقلل من نشاط للاستخراج.
- يمكن استخدام NE فورا أو aliquoted. وينبغي Aliquots فلاش مجمدة في النيتروجين السائل وتخزينه في درجة مئوية -80 ويمكن تخزين الشرق الأدنى والخضوع لاثنين على الأقل تجميد ذوبان دورات دون فقدان النشاط.
8. ممثل النتائج
مؤخرا، تم تطوير كفاءة في أنظمة الأنابيب لتوصيل RNAP الثاني النسخ إلى الربط 2-5. هذه الأنظمة تستخدم خلايا هيلا تزرع بكميات كبيرة، وبالتالي فهي غير قابلة للاختبار بسرعة من آثار العلاجات الخلوية محددة على عينات متعددة. بناء على هذا في حاجة الىالثانية الأداة المساعدة العامة لبروتوكول استخراج الصغيرة (انظر المناقشة)، أنشأنا قوية صغيرة الحجم طريقة استخراج النووية. ويظهر بيانات تمثيلية مقارنة الثاني RNAP النسخ / الربط رد فعل في استخراج صغار النووية مع استخراج النووية السائبة في الشكل 2. تأنشا CMV الحمض النووي، التي تحتوي على مروج CMV وتشفير كانت تستخدم ركيزة الربط القياسي (المنطقة الحرة برأس 3، الشكل 2A) للتحليل. وعندما حضنت هذا البناء في الجزء الأكبر (الممرات 1-3) أو على نطاق صغير (الممرات 4-6) استخراج، وتوليفها مستويات مماثلة من الوليدة قبل مرنا من قبل نقطة دقيقة وقت 5 (الشكل رقم 2، 1 و 4 حارات ). بعد إضافة α-أمانيتين لمنع مزيد من النسخ، والربط وسيطة ومنتجات تقسم المتراكمة على مر الزمن مع حركية مماثلة في كلا النوعين من مقتطفات (الشكل 2، والممرات 2، 3، 5، 6). هذه النتائج تدل على أن ممثل كفاءة للانقلاب بقيادة RNAP الثاني النسخ / الربط نظام مشابه في مقتطفات النووية السائبة وعلى النطاق الصغير.
للتدليل على فائدة من طريقة استخراج الصغيرة الحجم، وأعدت مقتطفات من خلايا هيلا تعامل مع المانع الربط، E7107، أو مجمع سيطرة سلبية pladienolide F 6،7 ومن ثم تم تنفيذ RNAP الديناميكي الثاني النسخ / الربط فحص خارج. كما هو مبين في الشكل (3)، النسخ الثاني RNAP حدث بكفاءة في مقتطفات من استعداد كلا F Pladienolide وE7107 الخلايا المعالجة (10 نقاط الوقت دقيقة). في المقابل، وقعت الربط عادة في استخراج الخلايا المحضرة من طراز F-المعالجة Pladienolide لكن ألغي في الخلايا E7107 المعالجة (الشكل 3، نقطة 20-60 مرة دقيقة). هذه البيانات تقدم دليلا على مفهوم لاستخدام مقتطفات صغيرة الحجم النووي لمعاملة خاصة من الخلايا في نطاق ضيق.
JPG "/>
الشكل 1. التخطيطي من البروتوكول استخراج الصغيرة. الخطوة P1. وتزرع الخلايا كما monolayers، تحصد من لوحات باستخدام رافعة للخلية ومنتفخة من خلال إضافة العازلة منخفض التوتر. الخطوة P2. وهي lysed الخلايا باستخدام الخالط Dounce وطرد لتكوير نوى. الخطوة P3. يتم فصل النوى من السيتوبلازم والخضوع لاستخراج الملح. الخطوة P4. ويتركز استخراج النووية ومدال. الخطوة P5. ويتم الحصول على النتائج التي تظهر أن مقتطفات النووية وظيفية (انظر الشكل 2 لمزيد من التفاصيل).
الشكل 2. على نطاق صغير مقتطفات النووية القوية في فحص RNAP الديناميكي النسخ / الربط الثاني. A. التخطيطي لقالب الحمض النووي CMV، المنطقة الحرة برأس المستخدمة لالديناميكي RNAP الثاني النسخ / الربط. يشار إلى المروج CMV وأحجام إلى exons والإنترون. B. مقارنة RNAP الديناميكيثانيا النسخ / الربط فحص باستخدام مستخلص النووية السائبة أو صغيرة الحجم استخراج النووية. أضيف α-أمانيتين بعد 5 دقائق ولم يسمح النسخ والربط للتحدث لمدة 30 و 60 دقيقة. تم استخراج الحمض النووي الريبي ومجزأة على هلام 5٪ بولكرلميد تبديل طبيعة والكشف عنها بواسطة phosphoimager. يشار إلى أن وسيطة الربط والمنتجات. والذاتية U6 snRNA والحمض الريبي النووي النقال الموجودة في استخراج والتي هي مبينة 32 ف وصفت خلال حضانة. انظر 3 للبروتوكول مفصلة عن النظام الديناميكي RNAP النسخ / الربط الثاني.
الشكل 3. على نطاق صغير مقتطفات النووية المعدة من خلايا هيلا تعامل مع المخدرات E7107 الربط المانع معيبة في الربط. وعولج خلايا مع Pladienolide ميكرومتر 3 F أو كما E7107ووصف (6) وبعد ذلك تستخدم لإعداد صغار مقتطفات النووية. وأجريت الدورة مهلة باستخدام نفس النسخ / الربط الفحص كما في الشكل رقم 2. يشار إلى أن وسيطة الربط والمنتجات، وU6 snRNA والحمض الريبي النووي النقال.
Discussion
قمنا بتأسيس طريقة سريعة وقابلة للتكرار لإعداد مقتطفات النووية من كميات صغيرة من خلايا هيلا كما نمت monolayers. أثبتنا أن هذه المقتطفات هي قوية من خلال إظهار أن حركية وكفاءة فحوصات RNAP النسخ / الربط الثاني تتشابه في مقتطفات النووية الصغيرة الحجم وكبيرة الحجم. وأظهرت لنا فائدة مقتطفات من خلال إظهار أن أعدت مقتطفات من الخلايا تعامل مع الربط المخدرات المانع نشطة للنسخ ولكن عيب في الربط.
أنشئت لدينا وسيلة لإعداد صغار مقتطفات النووية من خلال الجمع بين وتحسين أساليب المحددة سابقا لصنع مقتطفات من خلايا هيلا نمت في التعليق على نطاق واسع في 1،8 وطريقة لصغار إعداد مقتطفات 9. أنشأنا لدينا بروتوكول لأن السابقة على نطاق صغير مقتطفات لم تكن وظيفية لبعض المقايسات، مثل النسخ إلى جانب / ليرة سوريةlicing فحص. فارق مهم بين البروتوكول على نطاق صغير السابقة (9) ولنا هو أننا أمثل الظروف لlysing الخلايا باستخدام dounce صغيرة في حين أن بروتوكول السابقة هي lysed الخلايا من خلال دفعهم من خلال إبرة صغيرة عيار 9. نتائج إبرة تحلل في فقاعات، وهو ما قد يفسر السبب في أن مستخلصات كانت نشطة و / أو صعوبة في إعادة إنتاج لبعض المقايسات. وأضاف نحن أيضا خطوة تركيز على بروتوكول لدينا. هذه الخطوة يزيد من نشاط المقتطفات، والتي هي حساسة للغاية للتركيز، ويحد أيضا من التباين بين المقتطفات التي هي ملازمة لصغار الاستعدادات. أخيرا، ويتم بشكل روتيني إعداد للخروج مع ثلاثة فقط 150 ملم لوحات من الخلايا أحادي الطبقة، من دون أي تأثير كبير على النشاط مقارنة مقتطفات السائبة. وبالتالي، فإن الإجراء غير قابلة بسهولة لصغار الاستعدادات التي تتطلب الكواشف مكلفة أو محدودية توفر الخلية. على سبيل المثال، قمنا بإعداد SMAتستخدم ليرة لبنانية على نطاق مقتطفات من الخلايا ورني ضربة قاضية من خلايا سرطان الدم الليمفاوي المزمن المريض (CLL)، وهذه مقتطفات لفحوصات وظيفية و / أو البيوكيميائية (EGF، JLH، وTY RR، غير منشورة). لقد وجدنا أن لا تقل قيمة عن مقتطفات رني تليها فحوصات البيوكيميائية محددة، مثل immunopreciptations، الغرب، وتلطيخ الفضة. بعد تأسيس فعالية هدمت بروتين معين، ويمكن إجراء دراسة أكثر تفصيلا من خلال جعل ضربة قاضية مستقر خلية الخط، والتي يمكن استخدامها لإعداد مقتطفات إضافية بتكلفة أقل. مطياف الكتلة من البروتينات الموجودة في immunoprecipitates تم الحصول عليها من هذه الخطوط الخلية ضربة قاضية ستكون أيضا مفيدة لتطبيق هذه الطريقة. بالإضافة إلى فحص النسخ / الربط إلى جانب ذلك كنا كمثال لوصف بروتوكول لدينا هنا، ينبغي على مقتطفات صغيرة الحجم قابلة للتطبيق بشكل عام إلى العديد من المقايسات الفنية والكيمياء الحيوية، مثل تلك المستخدمة في الحادي ومختلفالعائد على السهم في التعبير الجيني (مثل وضع حد أقصى، الربط، النسخ، وتجهيز تذييل بعديد الأدينيلات microRNA،). ويمكن أيضا أن البروتوكول يمكن تكييفها لأنواع الخلايا المريضة التي يمكن الحصول عليها إما في تعليق (مثل خلايا CLL) أو تزرع في ثقافة (مثل الخلايا الليفية المريض). أخيرا، يجب على جزء السيتوبلازمية التي تم الحصول عليها أثناء عملية مفيدة لكلا المقايسات الفنية والبيوكيميائية التي تتطلب السيتوبلازم.
Disclosures
وترعى الإنتاج وحرية الوصول إلى هذه المادة من قبل Abcam، والمجلس التشريعي.
Acknowledgments
ونحن ممتنون لإبراهيم إ. م. Winkelbauer-هيرت،، P. فالنسيا، K. Dufu، H. تشنغ لإجراء مناقشات مفيدة. وقد تم الحصول على خلايا هيلا من مركز الخلية الثقافة الوطنية (مينيابوليس، مينيسوتا). كما نشكر ايساي المحدودة لتوفير E7107 ومركز التصوير نيكون في كلية هارفارد الطبية للمساعدة في المجهر الضوئي. وأيد هذا العمل من قبل منحة المعاهد الوطنية للصحة GM043375 إلى RR وEGF وزمالة NRSA إلى JLH.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| HEPES | 4-(2-Hydroxyethyl)piperazine-1-ethanesulfonic acid | Sigma | H3375-500G |
| MgCl2.6H2O | Magnesium Chloride Hexahydrate | Sigma | M2670-500G |
| KCl | Potassium Chloride | Fisher | P335-212 |
| PMSF | Phenylmethanesulfonyl fluoride | Sigma | P7626-100G |
| DTT | Dithiothreitol | American Bioanalytical | AB00490-5G |
| EDTA | Ethylenediaminetetraacetate, disodium, dihydrate | American Bioanalytical | AB00500-01000 |
| Glycerol | MP Biomedicals | 800689 | |
| DMEM | Dulbecco’s Minimal Essential Medium | Invitrogen | 11995-073 |
| FBS | Fetal Bovine Serum | Gibco | 16140 |
| Penicillin/Streptomycin | Gibco | 15070 | |
| PBS | Phosphate Buffered Saline | Cellgro | 21-040-CV |
| Trypan Blue Stain 0.4% | Gibco | 15250 | |
| Cell Lifters | Corning | 29442-200 | |
| 150mm Plates | VWR | 353025 | |
| Extended Micropipette Tip | Denville | P1126 | |
| Dounce homogenizer, 1ml, with tight pestle | Wheaton | 357538 | |
| Slidealyzers, MWCO 10kDa | ThermoScientific | 69572 | |
| Mini-Centricons, MWCO 3kDa | Millipore (Amicon) | UFC500396 | |
| Table 1. Specific Reagents and Equipment. | |||
| Hypotonic | 10 mM HEPES, pH 7.9 | 1M HEPES, pH 7.9 | 5 ml |
| 1.5 mM MgCl2 | 1M MgCl2 | 750 μl | |
| 10 mM KCl | 3M KCl | 1.67 ml | |
| 0.2 mM PMSF | 200 mM PMSF | 500 μl | |
| 0.5 mM DTT | 2M DTT | 125 μl | |
| Bring up to 500 ml with water | |||
| Low Salt | 20 mM HEPES, pH 7.9 | 1M HEPES, pH 7.9 | 2 ml |
| 1.5 mM MgCl2 | 1M MgCl2 | 150 μl | |
| 20 mM KCl | 3M KCl | 667 μl | |
| 0.2 mM EDTA | 0.5M EDTA | 40 μl | |
| 25% Glycerol | Glycerol | 25 ml | |
| 0.2 mM PMSF | 200 mM PMSF | 100 μl | |
| 0.5 mM DTT | 2M DTT | 25 μl | |
| Bring up to 100 ml with water | |||
| High Salt | 20 mM HEPES, pH 7.9 | 1M HEPES, pH 7.9 | 2 ml |
| 1.5 mM MgCl2 | 1M MgCl2 | 150 μl | |
| 1.4M KCl | 3M KCl | 48 ml | |
| 0.2 mM EDTA | 0.5M EDTA | 40 μl | |
| 25% Glycerol | Glycerol | 25 ml | |
| 0.2 mM PMSF | 200 mM PMSF | 100 μl | |
| 0.5 mM DTT | 2M DTT | 25 μl | |
| Bring up to 100 ml with water | |||
| Dialysis | 20 mM HEPES, pH 7.9 | 1M HEPES, pH 7.9 | 10 ml |
| 100 mM KCl | 3M KCl | 16.625 ml | |
| 0.2 mM EDTA | 0.5M EDTA | 200 μl | |
| 20% Glycerol | Glycerol | 100 ml | |
| 0.2 mM PMSF | 200 mM PMSF | 500 μl | |
| 0.5 mM DTT | 2M DTT | 125 μl | |
| Bring up to 500 ml with water | |||
| Table 2. Solutions for Nuclear Extract Preparation. | |||
References
- Krainer, A. R., Maniatis, T., Ruskin, B., Green, M. R. Normal and mutant human beta-globin pre-mRNAs are faithfully and efficiently spliced in vitro. Cell. 36, 993-1005 (1984).
- Ghosh, S., Garcia-Blanco, M. A. Coupled in vitro synthesis and splicing of RNA polymerase II transcripts. Rna. 6, 1325-1334 (2000).
- Das, R. Functional coupling of RNAP II transcription to spliceosome assembly. Genes Dev. 20, 1100-1109 (2006).
- Hicks, M. J., Yang, C. R., Kotlajich, M. V., Hertel, K. J. Linking splicing to Pol II transcription stabilizes pre-mRNAs and influences splicing patterns. PLoS Biol. 4, e147 (2006).
- Yu, Y., Das, R., Folco, E. G., Reed, R. A model in vitro system for co-transcriptional splicing. Nucleic Acids Res. 38, 7570-7578 (2010).
- Kotake, Y. Splicing factor SF3b as a target of the antitumor natural product pladienolide. Nat. Chem Biol. 3, 570-575 (2007).
- Folco, E. G., Coil, K. E., Reed, R. The anti-tumor drug E7107 reveals an essential role for SF3b in remodeling U2 snRNP to expose the branch point-binding region. Genes. 25, 440-444 (2011).
- Dignam, J. D., Lebovitz, R. M., Roeder, R. G. Accurate transcription initiation by RNA polymerase II in a soluble extract from isolated mammalian nuclei. Nucleic Acids Res. 11, 1475-1489 (1983).
- Lee, K. A., Bindereif, A., Green, M. R. A small-scale procedure for preparation of nuclear extracts that support efficient transcription and pre-mRNA splicing. Gene Anal. Tech. 5, 22-31 (1988).
