Summary
석판술으로 새겨져와 PDMS에서 가공 Microfluidic 흐름 여왕님 EC 장애와 염증과 관련된 기능적 결과를 알아내기 위해 적용됩니다. 대표 실험에서는 차등 전단 응력의 능력 시토킨 활성화 EC monolayers에 monocytic 세포 접착을 조절하기 위해이 입증되었습니다.
Abstract
Atherogenesis은 내피 기능 장애의 결과로 조직의 염증의 상승된 상태에 기여하는 대사 이상에 의해 potentiated됩니다. 그러나 위험 개인의 수준을 의미하는 내피의 초기 기능 변경은 직접 가이드 치료 전략을 돕기 위해 임상적으로 평가되지 않습니다. 또한, 지역 혈류 역학에 의한 염증의 규정은 죽상 경화증의 비 임의의 공간적 분포에 기여하고 있지만 메커니즘은 생체내에 윤곽을 그리다하기가 어렵습니다. 우리는 정확한 유량 조건 하에서 인간 내피 세포 (EC)와 monocytes의 염증성 이벤트의 정량적 분석 신진 대사 섭동에 실험실 - 온 - 칩 기반의 접근 방식을 설명합니다. 소프트 리소그래피의 표준 방식은 교양 EC의 monolayers에 직접 바인딩되는 혈관 모방 microfluidic 챔버 (VMMC)를 microfabricate하는 데 사용됩니다. 1이 디바이스 시약 작은 볼륨 동안 사용의 이점을 가지고잘 정의된 전단 필드에 노출 EC의 세포막에서 염증 이벤트에 직접 이미징을위한 플랫폼을 제공합니다. 우리는 성공적으로 인간의 대동맥 EC (HAEC)에서 시토킨-2 지질-3, 4, 분노 유발 5 염증을 조사하기 위해 이러한 장치를 적용했습니다. 여기 분석 monocytic 셀 (THP-1) 압연 및 차동 전단 특성 아래 조건과 염증성 시토킨 TNF-α에 의해 활성화됩니다 HAEC monolayers의 체포에 VMMC의 사용을 문서화. 이러한 연구는 신진 대사 위험 요인 아래 atherosusceptibility으로 기계론의 통찰력을 제공하고 있습니다.
Protocol
1. 세포 배양 및 기판 준비
- 선반을 사용하여 100 X 20mm의 조직 배양 접시 (BD 팔콘)에서 3 인치 원형 기판을 자르고. 70 % 에탄올의 침수에 의해 기판을 소독. 상온에서 1 시간 4 ML 타입 - 나 콜라겐 (100 μg / ml) 쇼핑과 배양 접시와 코트의 장소는 다음 네 ML 1 X PBS와 린스.
- 기판에 직접 한 ML을 적용하여 6.5x10 5 셀 / ML 및 종자에서 인간의 대동맥 내피 세포 (HAEC, 통로 4-6)을 일시 중지합니다. 37 ° C 5 % CO 2 배양기에서 장소와 세포가 1 시간의 기판에 충실하실 수 있습니다.
- 셀 1X 항생제 - antimycotic 솔루션을 보완 내피 성장 중간 2 (EGM-2) 9 ML을 추가합니다. 세포가 90 % confluency 도달할 때까지 매 이일 미디어를 변경합니다.
- 10% FBS와 항생제 1X-antimycotic 솔루션을 보완 RPMI 1640 배지에서 THP-1 세포를 유지합니다. 그들이 1 밀도에 도달 통과 세포0 6 셀 / ML.
2. 세포 전단 프로토콜
세포는 맞춤형 콘 및 플레이트 셀 전단 장치 (CSD)에서 조건됩니다. 장치 세부 사항 및 설계 사양은 표 1과 그림 4에 설명되어 있습니다.
- CSD를 준비합니다. 에탄올과 챔버 주택 소독과 멸균 PBS로 린스. ° C와 수준이 원추가 세포 단일층에 직각인지 확인하기 위해 37로 주택을 가열. 주택의 바닥에서 세포와 기판을 조립하고 원하는 높이로 원추형으로 설정합니다.
- Leibovitz-15 (L-15) CO 2의 부재에 적절한 산도를 유지하기 위해 전단 매체로서 내피 BulletKit으로 보완 매체를 사용하십시오. , 염증을 자극 전단 매체에 종양 괴사 인자-α (TNF-α, 0.5 NG / ML)를 추가하고 입구 포트에 연결된 주사기를 통해 장치에서 6 ML 주사, 공기를 소개하지 돌보는하려면챔버에 거품.
- 높은 진도 꾸준한 전단 응력에서 전단 세포 (HSS, 15 다인 / ㎝ 2) 4 시간 또는 oscillatory 전단 응력 (OSS, 0 ± 5 다인 / ㎝ 2, 1 Hz에서). 원하는 SS는 정확하게 이전에 설명한대로 마이크로 스테핑 모터로 제어되는 세포, 상기 원추형 회전에 의해 달성되는 6 표면의 벽, SS (τ W)에 의해 approximated있다. :
μ는 매체의 점도이고, ω는 원추의 각속도이며, α는 원추 각도 (0.5 °)입니다. 기판과 원뿔 정렬은 0.05 정밀 측량을 통한 °와 20에서 설정한 간격의 높이 ± 10 μm의 τ w에서 원주와 레이디얼 편차를 최소화하기 위해 깊이 게이지를 사용하여 이내로 조정됩니다. 장치는 층류 특성을 보장하기 위해 검증되었습니다. 광고 제거장치에서 ells 및 단핵구 유착의 분석을 위해 준비합니다.
3. PDMS Microfluidic 상공 회의소의 제작
- 응용 프로그램에 따라 원하는 microfluidic 채널 번호와 채널 높이 마스터 몰드를 구합니다. 이 프로토콜에서 사용되는 구체적인 설계의 특성은 5000 DPI에서 1 간단히는 채널 네트워크 (오토 데스크 발명가) CAD 소프트웨어를 사용하여 설계되었습니다. 이들을 만들기위한 방법은 이미 잘 문학에 설명되어 있습니다. 표 1에서 상세하고 인쇄됩니다 투명성에. 부정적인 포토 레지스트 (SU8은) 100 μm의의 두께로 실리콘 웨이퍼에 소용된다. 투명성은 중첩 및 자외선에 노출됩니다. 비 polymerized 포토 레지스트는 긍정적인 복제 마스터를 생성하기 위해 제거됩니다.
- 실리콘은 무게는 보트 무게로 에이전트 10시 1분 치료와 PDMS 솔루션 믹스 실리콘 기반을 만들고 5 ML serological pipet으로 저어합니다. 벽면을 다쳤어요하지 않도록주의이 솔루션에 플라스틱 부스러기를 추가하지 않도록 배 무게 때문에.
- 100x15mm 배양 접시에있는 마스터 웨이퍼를 넣은 그릇에 PDMS 용액을 붓는다.
- 접시를 커버하고 거품을 제거하는 15 분 동안 진공 용기에 넣습니다. 15 분 배양 접시를 꺼내 부드럽게 표면을 통해 공기를 불어하여 여분의 거품을 제거한 후.
- 70에서 1 시간 동안 오븐에서 페트리 접시를 놓습니다 ° C. 접시를 제거하고 날카로운 칼날을 사용하여 microfluidic 챔버를 했네요.
4. 현미경에 대한 장치의 조립
- 거꾸로 현미경으로 광원의 전원을 켜고 37로 히터를 설정할 ° C를 10 ML의 주사기에 튜브를 부착하고 아무런 거품이 없다는 등의 증류수로 채운다. 한 다인 / ㎝ 2의 벽에 SS를 유도하기 위해 주사기 펌프 및 설정 유량에 주사기를 놓습니다. 채널의 중심선을 따라 생성된 벽면 전단 응력은 (τ W) 표준을 사용하여 approximated있다병렬 플레이트 흐름 챔버를위한 방정식 :
μ는 체적 유량은 Q 매체의 점도이고, H는 채널의 높이이며, w는 채널 폭입니다. 참고 : 채널 유한 너비 때문에 실제 τ w는 w는 채널에 따라 같이 달라집니다 화면 비율 및 성능은 측면 벽에 가까운 25 %로 피해야합니다. 1,7 - 물에 PDMS 챔버를 삽입하고 각 채널에서 공기를 제거하는 100μl micropipette을 사용합니다. 챔버는 밸브가 해제로 설정되어 있는지 확인 만들기 위해 진공 어댑터를 연결합니다.
- 목표 이상의 HAEC의 단일층과 배양 접시를 놓습니다. 페트리 접시 위에 PDMS 챔버를 삽입하고 기포가 장치와 단일층 사이에 형성 없다는 것을 확보하면서 조심스럽게 HAEC 단일층에 설정합니다. 진공이 켜져 있고 챔버에 단단히 부착되도록 밸브를 켭니다. 19 게이지 바늘은 금속의 왼쪽에만 5mm가있다는 것을 같은 무딘 잘라. 버퍼와 플라스틱 저수지를 입력하고 PDMS 챔버 입구에 넣어. 사용되는 채널의 적절한 번호를 반복합니다. 주사기 펌프에서 PDMS 채널 출구로 튜브를 연결합니다.
5. 전단 응력 이하 단핵구 접착 분석
- 2x10 6 셀 / HBSS + 칼슘 2 + / MG 2 + + 0.1 %의 HSA에 ML에서 THP-1 세포를 일시 중지합니다. 상온에서 15 분 동안 stromal 파생된 요소-1 (SDF-1, 50 μg / ml) 쇼핑과 잠복기에 의해 활성화 THP-1 세포.
- 흐름을 확립하기 위해 주사기 펌프를 켜고 다음 기포를 도입하지 않고 저수지에 세포 현탁액의 50 μl를 추가합니다. 일단 흐름이 완전히 개발, 데이터 수집을 시작합니다.
- 솔루션은 낮게 잡으면 저수지에 버퍼를 추가, 적절한 유속에서 5 분 동안 실행합니다. 흐름 스트림에 어떤 언바운드 세포를 씻어하기 채널로 버퍼를 흐르는 계속합니다.
6. 데이터 수집 및 분석
- 사이드 가까운 즉시 입학 후 또는 출구 포트를 이전하거나 25 % 기록하지 않도록 돌보는 채널에 3 개소에서 채널의 세로 축을 따라 완전히 발달 흐름을 따라 2 분에 대해 3 프레임 / 초에서 디지털 이미지 시퀀스를 취득 벽.
- 단일층 같은 초점 평면에서 자신의 위상 밝은 모습을 파악하여 현장 체포 당 세포의 수를 세어보세요.
- 기업 셀 체포 움직임에 의해 정의되고 <10 s에 ½ 세포 직경. 3 랜덤 필드 / 채널 이상 평균 데이터 ImageJ 소프트웨어를 사용하여 계량.
7. 대표 결과
혈관 내피가 균일하게 전신 염증에 기여 agonists에 노출되고 있지만, 죽상 경화증은 내피 기능의 공간적 이질 고발, 동맥의 흐름 변동의 사이트에서 우선적으로 개발 초점 질병 8. 9, 10 TNF-α는 세포 유착 분자의 상향 조절 (달았을 포함 EC에 잘 특성화 응답을 유도하고 ; 예 VCAM-1, ICAM-1, E-selectin)과 순환, 초기 atherosclerotic 병변의 특징에서 모집 monocytes 11 혈류 역학은 내피 염증성 표현형의 중요한 조절기는 것을 12 하이 크기의 전단 응력이 chemokines (HSS..; 예를 들어 15 dynes / ㎝ 2) 또는 타악기 전단 응력 (PSS, 예 : 15 ± 5 dynes / ㎝ 2) 동맥에서 TNF-α 유발 반응을 다운 규제 죽상 경화증에 대한 저항의 사이트와 연관된. 반대로, 낮은 크기의 전단 응력 (LSS; 예 2 dynes / ㎝ 2) 또는 oscillatory 전단, 생체내에 감염될 사이트의 특성 (OSS 예 : 0 ± 5 dynes / cm 2), cytoki 증명했다NE-유도 염증. 13, 14 우리 microfluidic PDMS 장치는 내피 기능과 병리의 규정에 유체 요소로 대사 스트레스가 중첩 관련된 가설을 테스트하는 기계론의 연구 수행을위한 플랫폼을 제공합니다. 접근 방식의 유틸리티와 다기능는 크게 다음과 같은 대표적인 결과를 통해 보여주고있다.
1 그림. 전단 응력은 differentially TNF-α 염증 내피 monolayers에 THP-1 세포 접착력을 modulates.이 데이터는 위의 동영상에서 설명 설명한 세부적인 프로토콜을 사용하여 획득했다. HAEC의 monolayers 동시에 염증성 시토킨 TNF-α (0.5 NG / ML, VCAM-1까지 규제를위한 ~ EC 50)과 HSS (15 dynes / ㎝ 2) 또는 OSS (0 ± 5 dynes 중의 낮은 복용량에 노출되었다 descri 등 4 시간에 대한 사용자 지정 CSD의 / ㎝ 2, 1 Hz에서)자세한 프로토콜의 침대. THP-1 세포 체포 PDMS 흐름 챔버의 전단 유동 하에서 계량되었다. 인간 monocytes의 표현형을 모방한 것이었 이러한 세포 라인의 재현성 및 사용의 용이성을 위해 선정되었습니다. HSS 감쇠 염증 반응은 감소 THP-1 세포 체포 결과, OSS에 비해. 데이터는 학생의 T-테스트에 의해 분석되었으며 말은 ± 3 독립적인 실험 SEM을로 표현됩니다. DeVerse 외로부터 허가를 적응 5.
다음 데이터가 출판 작업에서 예제를 사용하여 우리의 접근 방법의 다양성을 보여줍니다. 해당되는 위의 프로토콜의 출발이 표시됩니다.
그림 2. 시토킨 유도된 VCAM-1 표현과 전단 응력 구배에 단핵구 모집의 변조. ) HAEC의 monolayers는 플로 아래에 4 시간을 위해 TNF-α (0.3 NG / ML)로 자극했다Hele-쏘 플로우 이론을 바탕으로 설계된 VMMC의 w 15 채널의 중심선을 따라 SS 친위대 크기의 선형 감소는 2 차원 침체 흐름의 합리화에 맞춰 챔버 측벽을 설계하고 끝을 형성함으로써 달성되었다 채널의 ISO-잠재적인 라인과 일치합니다. 입구 (X)에서 축 거리에서이 채널의 중심선을 따라 생성된 벽면 전단 응력은 (τ W)에 의해 주어진다 :
μ는 체적 유량은 Q 매체의 점도이고, H는 채널 높이, W 1 채널 입구 폭이며, L은 전체 채널의 길이입니다. Q가 16 일부터 SS 친위대 진도에서 그라디언트를 생성하는 선정되었습니다 outle에 dynes / 정체 지점에서 0으로 입구에서 cm 2 ""단지 근위티. B)-C) VCAM-1 표현은 양자 도트에 복합 및 unstimulated 정적 제어의 비율이 평균 형광 강도 (MFI)로 제시 항체를 사용하여 immunofluorescence 현미경에 의해 원위치로 측정되었다. SS는 unstimulated HAEC (회색 삼각형)에서 낮은 VCAM-1의 기저 레벨을 조절하지 않았다. 그러나, VCAM-1 표현)은 ~ 2 dynes / ㎝ 2 시에 피킹 및 전단 크기는> 5 dynes / ㎝ 2 (검은색 사각형). D에서 TNF-α의 기준으로 반환하거나 아래, LSS의 크기는에서 TNF-α에 상대적으로 증가 Monocytes (10 6 / ML)가)에서와 같이 preconditioned monolayers 이상의 병렬 플로우 채널에서 5 분 동안 두 dynes / ㎝ 2 시에 perfused되었다. 내피에 단핵구 모집은 양적 주어진 전단 응력 크기에서 VCAM-1 표현과 상호. 특히, monolaye에서 훌륭한 공간 해상도로 VCAM-1 표현과 단핵구 모집을 알아내기 수있는 능력R은 별도의 실험에서 전단 중 몇 이산 값을 적용하여 평가되지 않을 SS 친위대 크기의 좁은 범위에서 상당한 변화를 발표했다. 데이터는 TNF-α의 * P <0.05 정적인 조건 하에서 반복 측정 ANOVA와 뉴만 - Keuls posttest에 의해 평가의 차이에 의해 분석되었다. 데이터는 의미있다 ± SEM을 3-6 독립적인 실험에서. Tsou 외 2.의 허가와 적응
그림 3. 트리 글리세 라이드 풍부한 lipoproteins (TGRL)는 기증자 혈청 트리 글리세 라이드 수준과 VCAM-1 표현에 비례 시토킨 유도된 염증을 조절. HAEC의 monolayers는 TGRL (10 MG / DL과 동시에 4 시간 동안 TNF-α (0.3 NG / ML)로 자극했다 ApoB)는 정적 문화에 고지방 음식을 먹은 후엔 인간 주제에 격리.) VCAM-1 표현은 유동세포계측법에 의해 정지 EC에서 별도로 측정되었다그리고 단핵구 유착은 세부적인 프로토콜에 설명된대로 VMMC을 사용하여 계량. 데이터는 TNF-α의 % 변화로 제공됩니다. 단핵구 체포는 기증자 혈청 트리 글리세 라이드의 수준과 직접적으로 증가했다. B) 프로 염증성 기증자의 하위 집합에 대한 단핵구 체포가 VCAM-1 차단 항체의 면전에서 abrogated되었다 내피 VCAM-1 표현에 정비례에서 변경될. 의의가 결합하여 학생의 T-테스트에 의해 결정되었다 3-5 독립적인 실험에서 ± SEM을 의미합니다. 왕 외로부터 허가를 적응 4.
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Discussion
우리는 캠 표현과 단핵구 유착의 실시간 영상을 통해 내피 염증성 표현형의 온 칩 평가를위한 microfluidic PDMS 장치의 사용을 설명합니다. 우리의 접근 방식의 가장 큰 장점은 atherogenic 혈관에 전단 응력을 미러링 정의된 유체 조건에서식이 lipids 및 크린 시토킨 등의 염증 중재자에 노출된 세포에서 내피 기능 장애와 관련된 결과를 계량하는 능력에있다. VMMC는 시약 또는 제한된 공급이있을 수 있습니다 재료의 소량의 사용을 촉진하고 저렴한 사용자 정의 및 높은 처리량 의무가되는 추가된 장점이 있습니다.
microfluidic 장치의 사용은 가위로 교양 EC의 반응을 조사하기 위해 수십 년 동안 사용되어 왔습니다 macroscale 접근법에 대한 대안을 나타냅니다. 이러한 CA는 각 병렬 플레이트 흐름 챔버, 원통형 튜브, 그리고 원추 앤 판 viscometers를 포함꾸준한, 판상 Poiseuille 흐름 조건 (16 년 검토) 순례의 활기찬. 이러한 장치에 대한 수정은 벽면 전단 응력의 시간적 혹은 공간적 유사 콘텐츠를 생산하거나 동맥 파형을 요점을 되풀이하다. 6 그러나 일반적으로 이러한 장치는 미디어의 큰 금액을 요구, 적은 융통성 조작하는 비용이며, comparably 낮은 처리량에 시달리고 있습니다.
제한 사항도 VMMCs의 사용과 함께 존재한다. 이러한 장치는 무한한 넓이를 가정 병렬 플레이트 흐름 이론을 바탕으로 설계되었습니다. 이것은 너비가 높이보다 훨씬 큰 macroscale 장치에 대한 합리적인 가정이다. 그러나, microfluidic 채널의 한정된 넓이는 실제 τ 뒀어 뒀어 채널 화면 비율에 따라과 다를 수로 연구가, 사이드 벽 효과를 제거하기위한 채널의 길이 방향 축의 중앙을 따라 실시하는 것이 필요로합니다. 1, 7 마찬가지로 , 성능은 가까운 T를 이동하지 않는입학 효과를 피하기 위해 채널의 입구와 출구를 O. 우리는 부상 또는 관찰 반응에 기여으로 단일층에 장치를 씰링에 의한 EC의 손상에 의해 유도된 어떤 의미 paracrine 신호 효과 또는 염증을 배제했습니다. PDMS는 분비 chemokines 및 leukocytes와 VMMC 사이가 아닌 특정 상호 작용 흡수으로 이어질 수 소수성 분자에 대한 높은 친화력을 가지고 있습니다. 그러나 이것이 우리의 연구 기간 동안 문제를 발견하지 않았습니다. 2
교양 세포와 유동 장치의 사용은 전단 응력에 대하여 기계론의 연구와 원인과 효과의 시범을 용이하게 reductionist 접근 방식을 구성합니다. 그러나, 체외 접근법에의 한계는 그것이 적절하게 네이티브 동맥의 환경의 복잡성을 요점을 되풀이한다는 가정이다. 생체내에서 내피 세포가 만성 복잡한 흐름 패턴에 적응하고있다다른 세포, 매트릭스, 그들의 행동을 규제 체액성 중재자와 상호 작용에 따라 달라질 수 있습니다.
그것은 위에 제시된 결과는 모두 단기 모델과 같은 것을 주목할 것은 시간 불변량되지 않을 수 있습니다. 그러나 그들은 우리가 일반적으로 급성 염증 도전 아래 메커니즘을 조사하기 위해 수행하는 실험의 대표입니다. 우리의 연구를위한 관련 전략은 4 시간이 VCAM-1 표현의 대략적인 피크를 대표하는 낮은 선량 TNF-α의 자극에 염증 기준의 변화를 모니터링하는 것입니다. 우리는 VCAM-1의 표면 표현의 변화가 이러한 조건 하에서 향상된 단핵구 모집와 연관되는 여러 연구에 문서화되어있다. 2-4, 17
또한, SS 파형의 선택은 차등 내피 반응을 보여주고 있습니다. 우리의 대표적인 프로토콜에서 우리는 아래의 조건 HAEC에서 단핵구 유착 이벤트를 수치 VMMC의 사용을 문서화상대 저항 (HSS) 및 맞춤형 셀 전단 장치의 동맥에서 atherogenesis에 자화율 (OSS)의 사이트의 대리인으로 선정 스트레스를 들었어요. 교양 EC에서 이전 연구 결과, HSS 감쇠 OSS에 대한 상대 시토킨 활성화에 대한 응답과 일치. 12, 13 결과 생체내의 흐름 변동의 사이트에서 EC의 염증 활성화에 큰 허용함과 일치합니다. 이러한 조건은 일반적으로 각각 흐트러지지과 방해 흐름을 나타내는 데 사용하는 동안 그들은 완전히 동맥의 흐름의 복잡 요점을 되풀이하지 않습니다. 그러나 문학 부는 적절하게 분출 흐름 기능을 재현 간단한 approximations 것처럼 그들의 사용을 지원합니다. 14
특히, 우리의 원추 앤 플레이트 기반 CSD는 이전에 보고된로 긴 기간 동안 더 복잡한 파형 및 조절 세포를 생성할 수있을 것입니다. 따라서 6 설명한 홍보에 CSD로 VMMC를 페어 링otocol는 유연성을 최대 학위를 부여. 이 방법의 고려는 CSD의 전단 에어컨의 방향에 대하여 VMMC의 방향에 달려있다, 원주 방향으로 HAEC 경험 흐름 인치 그 채널까지 가능한 시설 세포의 상류 흐름 필드와 입구와 평행하게되도록 연습에서는 VMMC가 지향이다. 채널이 합리적인 근사치를 나타내는 것을 충분히 작은 수 있습니다. 그러나 우리는 또한 VMMC의 전단 에어컨의 방향에 수직으로 평행하거나 흐르는 monocytes가 그림 2에 표시된 결과에 영향을 미치지 않았다고 이전 연구에서 보여준 2.
체외 기술의와 관련된 추가적인 고려 사항은 직렬 절연 EC 또는 monocytes에서 문화와 이질에 EC의 passaging와 관련된 phenotypic 드리프트에 의해 유도된 다양성을 포함합니다. HAEC은 일반적으로 통과 6과 각 많은 의해 사용되어야TNF-α에 대한 일관성있는 염증 반응에 대한 특성화. 이러한 THP-1과 같은 세포 라인의 사용은 기증자에 의해 활동에 다양하고 편리하게 자신의 고립에 의해 활성화되는 monocytes의 사용과 관련된 다양성을 줄일 수 있습니다. 재현성과 정확한 기능 설치 했어요, 세포 준비와 전송 시간을 최소화해야 보장하기 위해서. 컨트롤의주의 선택은 의미 결과를 해석하는 데 필요합니다. 실험에 따라, 이들은 치료 또는 정전기 교양 세포, TNF-α 처리, unactivated THP-1 세포, 차단 항체, siRNAs 또는 pharmacological 억제제의 사용, 타인을 포함할 수 있습니다.
접근 방식의 다양성에 대한 증거로서, 우리는 HAEC에 시토킨-2 지질-3, 4, 분노 유발 5 염증을 조사하기 위해 이러한 장치를 적용했습니다. 우리의 연구는 인간의 혈청에서 파생 지질 입자의 염증 가능성을 측정 포함내피 세포 3, 4, monocytes에서 ubjects. 17 대안 전략은, monocytes가 부착 메커니즘을 조사하는 등 VCAM-1과 같은 고정화 분자와 derivatized 기판이 제공됩니다. 이 방법을 사용하여, 우리는 이전에 인간 17 생쥐의 dyslipidemia 동안 VCAM-1 단핵구 유착의 -4 늦게 항원 (VLA)와 협력 유착 분자 CD11c를위한 기능적인 역할을 보여주었다. 18 monocytes가 쉽게 의해 활성화될 수 있기 때문에 그들의 고립, 우리는 또한 더 민감하고 재현성 검출을 할 수 있도록 저희 실험실 온칩 장치와 함께 사용하기위한 전체 혈액 분석을 개발했습니다. 17
궁극적으로 죽상 경화증의 기초가 초기 염증 이벤트에 대한 통찰력을 제공하는 이외에, 우리는 W를 포장,이 기술 개발은 염증 - 중재 심장 혈관 질환의 개인의 위험을 평가하기위한 충실한 전직의 생체내 접근 방식으로 이어질 것이라는 구상단핵구 및 EC 활성화에 신고 맞춤 진단의 발전을 위해 찬성.
| 콘 및 플레이트 세포 전단 장치 | ||
| 원뿔 반경 | 0.06985 | m |
| 원뿔 각도 | 0.00877 (0.5 °) | 방사선 (도) |
| 갭 높이 | 20 ± 10 | μm의 |
| 최대 각속도 (실험에 설명된) | 18.85 | 방사선 / s의 |
| 동점도 | 0.00077 | 평방 미터 / 초 |
| 최대 R 번호 (실험에 설명된) | 0.000758 | 무차 |
| VMMC 사양 | ||
| 채널 길이 | 8.0 | mm |
| 채널 높이 | 60 | μm의 |
| 채널 폭 | 2 | mm |
| 레이놀즈 수 | 1.67 | 무차 |
표 1. CSD와 VMMC 사양.
4 그림. 콘 앤 플레이트 세포 전단 장치 (CSD)의 교차 단면 볼 수 있습니다. CSD는 고정 세포 배양 기판 위에 회전 스테인레스 스틸 원통 원추로 구성되어 있습니다. 원뿔 각도와 간격 높이는 문화 매체의 존재에서 생산되는 전단 필드의 특성을 정의하는 중요한 매개 변수입니다. 점성 세력에 대한 원심의 관계를 보여주는 수정된 레이놀즈 번호에 의해 주어진다 :
<BR />
R은 원뿔 반경이고, ω는 각속도이고, α는 원뿔 각도이며, ν는 유체의 운동학 속도입니다. R은 << 1 원심 세력가 낮으되면 흐름이 층류이고 순전히 azimuthal, 그리고 유도 전단 응력은 단일층 이상의 상수입니다. 우리 CSD에서는 19, 교양 세포와 기판을 전시 챔버로 바닥에서로드 콘. 매체는 챔버에 추가 및 전단 유체로 사용됩니다. 콘은 미리 로드된 정밀 베어링 및 마이크로 스테핑 모터에 의한 회전으로 마운트됩니다. 정밀 수준 측량 시스템은 셀 기판에 수직 정렬을 유지합니다. 갭 높이는 (전지 기판에 원추형의 꼭대기로부터 거리에 의해 정의) 고정밀 깊이 게이지로 설정됩니다. 그리스 타야 및 미디어 도장 챔버 주택 세포가 깨끗하고 기름과 파편 무료로 유지되도록 제자리에있다.
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Disclosures
관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.
Acknowledgments
이 작품은 스콧 I. 사이먼과 앤서니 G. Passerini에 NIH / NHLBI 부여 R01 HL082689에 의해 지원되었다.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 100 x 20mm Petri Dishes | BD Falcon | 353003 | |
| Ethanol 95% | EMD Chemicals | EX0290-1 | |
| DPBS | Cellgro | 21-031-CV | |
| Type I Rat Tail Derived Collagen | Gibco | A10483-01 | |
| Human Aortic Endothelial Cells | Genlantis | PH30405A | |
| Antibiotic-Antimycotic Solution | Invitrogen | 15240-062 | |
| Endothelial BulletKit | Lonza | CC-4176 | |
| Endothelial Basal Media-2 | Lonza | CC-3156 | |
| 10 ml Syringes | BD Falcon | 309604 | |
| Polyurethane tubing | Tygon | ABW0001 | |
| Leibovitz-15 Media | Gibco | 11415-069 | |
| Sylgard 184 Silicone Elastomer Base | Dow Corning | 184 | |
| Sylgard 184 Silicone Elastomer Curing Agent | Dow Corning | 184 | |
| SU8 Photoresist Master Wafer | UC Davis Pan Lab | N/A | |
| Eclipse TE200 Inverted Microscope | Nikon | Eclipse TE200 | |
| Syringe Pump | Harvard Apparatus | PHD2000 | |
| 19 gauge hypodermic needle | Kendall | 8881 | |
| THP-1 Monocytic Cell Line | ATCC | TIB-202 | |
| HBSS (Hanks Buffered Saline Solution) with Ca2+/Mg2+ | Gibco | 14025-092 | |
| Tumor Necrosis Factor Alpha (TNF-α) | R&D Systems | 210-TA-010 | |
| Stromal Derived Factor - 1 (SDF-1) | R&D Systems | 350-NS-010 | |
| RPMI 1640 | Cellgro | 10-040-CV | |
| Human Serum Albumin (HSA) | ZLB Behring | NDC 0053-7680-32 | |
Table 2. Specific reagents and equipment. |
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References
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