Summary
我々は、T細胞の発達を調べるためにフローサイトメトリーベースの方法を提示する
Abstract
健康な免疫システムは、自己抗原に対する寛容を維持しながら、T細胞は外来抗原に反応している必要があります。 T細胞受容体(TCR)αおよびβ遺伝子座のランダム再配置は、自己と外国の両方に、抗原特異性の広大な多様性を有するT細胞レパートリーを生成します。胸腺での開発時にレパートリーの選択は、安全で有用なT細胞を生成するために重要です。胸腺選択の欠陥は、自己免疫疾患および免疫不全疾患1-4の発展に貢献しています。
T細胞の前駆細胞は、CD4またはCD8コレセプターを発現していないダブルネガティブ(DN)の胸腺細胞として胸腺を入力します。 αβTCRと両方共受容体の発現は、ダブルポジティブ(DP)の段階で発生します。胸腺細胞によって提示された自己ペプチド - MHCとαβTCR(pMHC複合)との相互作用は、DP胸腺細胞の運命を決定する。高親和性相互作用負の選択と消去又はにつながる自己反応性胸腺細胞のる。 CD4または自己MHCによって提示された5外来抗原を認識することができるCD8シングルポジティブ(SP)はT細胞の正の選択と開発における低親和性の相互作用の結果。
ポジティブセレクションは、成熟T細胞の生成を観察することによって、ポリクローナル(野生型)TCRレパートリーを持つマウスで検討することができます。しかし、彼らは小さな抗原特異的集団の削除を伴う負の選択の研究のために理想的ではありません。多くのモデル系は、負の選択を検討するが、生理学的事象6を再現する能力に変化させるために使用されてきた。外来抗原の投与が胸腺細胞7-9の非特異的欠失につながることができますたとえば、胸腺細胞のin vitroで刺激すると 、親密に選定に関与している胸腺環境を欠いている。現在、 生体ネガティブセレクションで勉強するための最良のツールはtransgを表現するマウスである自己抗原内因用enic TCRの特定。しかし、多くの古典的なTCRトランスジェニックモデルは時期尚早の負の選択で、その結果、DNの段階でトランスジェニックTCRα鎖の早期の発現によって特徴付けられる。私たちの研究室では、10野生型マウスで発生する負の選択がSP遷移にDPの中に発生することができ、トランスジェニックHYTCRαが条件付きでDPステージで表現されたHYのCD4モデルを開発しました。
ここでは、HYのCD4マウスモデルにおける胸腺の正と負の選択を検討するために、フローサイトメトリーベースのプロトコルを記述します。 HYのCD4マウスにおける負の選択は非常に生理的であるが、これらの方法は、他のTCRトランスジェニックモデルに適用することができます。我々はまた、遺伝子操作されたマウスに適用ポリクローナルレパートリーに正の選択を分析するための一般的な戦略を提示します。
Protocol
実験プロトコルの全体的なスキームについては図1を参照してください。
1。解剖
- 60×15ミリメートルペトリ皿に置き、無菌スチールメッシュスクリーン。 1単位は、組織サンプルあたり必要とされている。
- 各皿にハンクス平衡塩溶液(HBSS)5mlを加える。氷の上で料理をしてください。
- CO 2とマウスを安楽死させる。
- 解剖表面へのセキュアなマウス、上向きに腹側。スプレーは殺菌のため70%エタノールでマウスや毛皮がダウンつや消しされていることを確認する。
- 手術用のハサミを使用して、ちょうど性器上腹部皮膚に腹切開を行うことで、解剖を開始します。あごに切開を上向きに伸びる。
- 正中線から、すべての手足に沿って切開を下に拡張します。たるんだ皮膚を引いて、切開面にそれを突き止める。
- 胸腺の収穫:
- 切開を作るために胸骨の下部先端を持ち上げます。
- 肝臓を避けて、胸郭をデタッチし、各側に胸郭をカットするダイアフラムを切った。肺と心臓を避けるように注意しながら、それぞれの側に胸郭を上方にカットします。
- 胸郭バックピンセットで慎重に引き抜いてください。胸腺は心臓の上方に位置する白、両葉性臓器である。ローブの底を把握するために鉗子の平らなエッジを使用して、静かに胸腺を引き、メッシュスクリーンの上に置きます。
- 脾臓を回収します。
- 脾臓は肝臓下マウスの腹腔内の左側にある赤い、サーフボード形をした臓器です。
- 腹腔内に切開を加えます。優しく結合組織を離れていじめるために第2のペアを使用して、鉗子の1ペアで脾臓を引き出します。別のメッシュスクリーンで脾臓を置きます。
2。細胞調製
- 3 mlのシリンジからプランジャーを使用して、挽く唯一の結合組織と脂肪が残るまでメッシュスクリーンに臓器。皿三回からHBSSでメッシュをすすぐ。各組織試料のための新しいプランジャーを使用しています。
- 組織を均質化するためのその他のオプションについては、このメソッドの代わりに使用することができます。
- 血球計数器を用いて細胞をカウントする。
- 4℃で5分間、335×gで℃で遠心分離により細胞をペレット化
- 室温で10分間、ACK溶解緩衝液(0.15M NH 4 Clを 、10mMのKHC0 3、0.1mMののNa 2 EDTA、pH7.2)を500μlの脾細胞を再懸濁します。 FACS緩衝液中で20×10 6細胞/ ml(PBS、1%FCS、0.02%アジ化ナトリウム)での胸腺細胞を再懸濁し、氷上に置いておきます。
- HBSS 5mlを加えて等張性に脾細胞を返します。 FACS緩衝液中で20×10 6細胞/ mlで再懸濁し、遠心分離によってペレットは脾。細胞は無菌を維持する必要がある場合は、滅菌したRPMI +10%FCSを使用することができます。
3。フローサイトメトリー用の細胞の染色
このプロトコルの目的は、野生型(WT)とHYのCD4マウスを用いた正と負の選択を分析するための戦略を概説することです。フローサイトメトリー実験のデザイン、収集、および分析に関する一般的な考慮事項については、我々は董らによる優れたレビューに読者を11 参照
- アリコート4×10 96ウェルプレートの各ウェルに、フローサイトメトリー試料につき6胸腺細胞、ならびに補償制御当たり1×10 6 WT脾。トランスジェニックマウスを用いた場合は、実験のコントロールとして、WTマウスを含める必要があります。
- 氷上で10分間anti-CD16/32(クローン2.4G2)で細胞をインキュベートすることにより、Fc受容体をブロックします。
- 5分間、4℃で335 xgで皿回しをする。蓋を外し、一度プレートをフリックして井戸から液体を払拭する、シンクに伏せ。 FACS緩衝液200μlの各ウェルを再懸濁します。洗浄を繰り返します。
- 下記のようにウェル当たりのFACS緩衝液200μlに希釈に基づいて、各抗体の最適濃度を用いて、抗体カクテルを準備します。各抗体の最適濃度は、正と負の集団の最大の分離を与えるために必要な最低濃度として定義されています。所与の抗体には陰性集団が存在しない場合は、アイソタイプ抗体が含まれるべきである。必要に応じて、ウェルあたり総量(ウェルあたり100μlまでなど )に縮小することができます。
- WT胸腺:抗TCRβ、抗CD4、抗CD8、抗CD69または抗CD5、抗CD24
- 胸腺HYのCD4:抗HY TCR(T3.70)、抗CD4、抗CD8、抗CD69または抗CD5、抗CD24
CD69 loと胸腺細胞におけるCD69 ハイテク集団のより良い分離を得るためには、続いて、ビオチン化抗CD69一次抗体を使用することが推奨される二次的な蛍光標識ストレプトアビジンを含む染色。私達はuCD5染色のためのSEが同じ戦略。
- 暗闇の中で氷上で30分間、FACSバッファーで抗体カクテル200μlで細胞をインキュベートします。
- 抗体カクテル染色と同時に、単一蛍光標識抗体を用いて、各補償制御を染色。理想的には、補償染色は、抗体カクテルで使用したものと同じ抗体を含んでいる。多くの抗原がアッセイされたときしかし、個々の抗原を染色すると、大きな実験用可能でないかもしれません。したがって、抗CD4または抗CD8のどちらかに染色が高いこれらの抗原の発現、または補償ビーズの使用に起因することをお勧めします。暗闇の中で氷上で30分間FACS緩衝液で染色。 1補償制御は、汚れのないままにしておきます。
- FACS緩衝液で細胞を2回洗浄します。
- FACS緩衝液およびFACSチューブへの転送中に細胞を再懸濁します。
- フローサイトメーターでサンプルを取得。 FSC認証の取得とするFSC-Wを含むダブレット識別のためLLOW。
4。フローサイトメトリーデータの解析 - 非TCRトランスジェニックマウス
我々は、フローサイトメトリーデータ分析のためFlowJoを使用しています。非TCRトランスジェニックマウスのゲーティング戦略のために図2Aを参照してください。
- SSCは、 "リンパ球"人口で電子的にゲートによって、FSC使用。
- "リンパ球"集団の中では、FSC-W loの人口は、細胞のダブレットとaggregratesを除外するために電子的にゲートにFSC-Wで、FSC使用。これは、 "一"の門です。
- "一重"ゲートは、CD4、CD8、プロット内のイベントを使用します。 DN、DP 鈍い 、DP 明るい 、CD4 + CD8 LO、CD4SPとCD8SP集団、図2Bに示されるようにするためのゲートを描画します。
- CD4SPとCD8SPゲートの下では、CD24のプロットによってTCRβを作成します。 図2Cに示すように、ゲートを描画する象限·ゲーティング·ツールを使用します。
- NEを作成"一重"ゲートからwプロット:CD69によってTCRβ。ゲートA、B、C、Dは、 図2Dに示すように描画します。
- CD5によってTCRβ: "シングレット"ゲートから別のプロットを作成します。 図2Eに示すように、ゲートI、II、III、IVを描きますこれは正の選択を調べるためのもう一つの戦略です。
- ゲートI、II、III、IV、A、B、C、D( 図2D、E)に"一"の下からDN、DP 鈍い 、DP 明るい 、CD4 int型、CD4SPとCD8SPゲートを適用します。
- あなたのターゲット人口に到達するまで、後続の各ゲートの周波数によって臓器の細胞数を乗じて特定のサブセット内のセルの数を計算します。たとえば、TCRβ ハイテク CD69-CD8SP胸腺細胞の数は、 胸腺細胞数×%、TCR BHIによって決定されるであろうCD69-(画分D)×%のCD8SP。
- 生細胞と死細胞は、いわゆる "lymphocが含まれていませんすでにカウントすることを考慮に入れあなたの計算でyte "ゲート。
5。フローサイトメトリーデータの解析 - TCRトランスジェニックマウス
TCRトランスジェニックマウスのゲーティング戦略のために図3Aを参照してください。
- 前節と手順4.1と4.2に従ってください。
- "一重"ゲートの下で、T3.70のSSCプロットとゲートでT3.70を作成+細胞集団を抗原特異的T細胞( 図3B)を分析する。いくつかの状況では、それは非抗原特異的(T3.70-)T細胞集団に、この集団を比較するために興味があるかもしれません。
- T3.70 +集団内では、ドローのDN、DP CD4SPとCD8SPゲート( 図3C)。
- WTコントロールサンプルは、 "一重"ゲートの下、これらのゲートを描くか、非常に少数のT3.70 +細胞が存在するとしてT3.70ゲートを作成します。
- CD8SPゲートの下に、作成CD24のプロットによってT3.70。 4つの集団( 図3F)にセルを分割する象限·ゲーティング·ツールを使用します。
- WTマウスとHYのCD4マウスの T3.70 + DPコンパートメント( 図4A)のDPコンパートメント内のCD69発現を描いオーバーレイヒストグラムを作成します。 CD5発現( 図4B)を調べることを繰り返します。
- 4.8のように、目的の各サブセット内の細胞の絶対数を計算します。
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Representative Results
生理的TCRトランスジェニックモデルとWTマウスでは、正の選択は、抗原遭遇の後、DP 鈍い段階に移る前に、DP 明るい段階から始まります。 DP胸腺細胞鈍いその後CD4SPまたはCD8SP胸腺細胞( 図2B)になる前に、過渡的CD4 + CD8 loの段階に入る。成熟したSPの胸腺細胞は、高いTCR発現およびCD24( 図2C)の損失によって特徴付けられる。更新CD69またはCD5によってTCRβを調べ、正の選択の欠陥を明らかにすることができ、CD4によるCD8は、欠陥がどこにあるさらなる洞察を提供することができます。 CD69とCD5の両方がこれらのマーカーのより高い発現を駆動する強い相互作用で、TCR刺激後にアップレギュレートされる。
CD69プロットによってTCRβで、ゲート(TCRβLO CD69-)を事前選択DP胸腺細胞の人口を表し、ゲートB(TCRβint型 CD69 +)は、trを表す直接TCR婚約、ゲートC(TCRβ こんにちは CD69 +)の後ansitional人口は直接ポストポジティブセレクション細胞の集団を表し、Dはゲート(TCRβ ハイテク CD69 - )細胞( 図2D)のより成熟した人口を表しています。ゲートBは主にいくつかのDP 鈍いとCD4 + CD8 loの細胞とDP 明るいから構成されていながら、WTマウスでは、ゲート、DPの明るい細胞で構成されています。ゲートDは主にCD4SPとCD8SPから成り、一方ゲートCは主に、DP 鈍い 、CD4 + CD8 loとCD4SP細胞から構成されています。集団BとCの不在は障害正の選択を示すことができる。人口D内CD8SPへCD4SPの比の変化は、系統のコミットメントの変化を示唆する可能性があります。集団CとDの損失はポジティブセレクション後の生存の問題を反映しているのかもしれない。
CD5によってTCRβを調べると、別の戦略tであるプリ·ポストポジティブセレクション集団を同定O。人口I(TCRβLO CD5 LO)には 、事前選択DP胸腺細胞を表し、人口IIは(TCRβLO CD5 int)の正の選択( 図2E)を開始する細胞である。これらの集団は、主DPbright胸腺細胞で構成されています。人口iiiは(int型 TCRβCD5 hi)に正の選択を受けている過程で胸腺細胞を表し、主DP 鈍いとCD4 + CD8 loの胸腺細胞で構成されています。人口IVは(TCRβ こんにちは CD5 hi)にポストポジティブ選択のSP胸腺細胞の主に構成されています。集団IIおよびIIIの障害発生が不良正の選択を示唆している。通常の前の集団にもかかわらず、人口IV内CD8SPへCD4SPの比の変化は、系統のコミットメントの変化を示唆する可能性があります。人口ivの不在は、正の選択範囲以下の生存率の低下を示している可能性がありる。例えば、TOXで- / -正の選択は12無傷のままマウス、不良CD4SP分化は集団IV、CとDの大幅な削減につながります。正の選択で真の欠陥が集団B、C、Dの13,14の損失につながるDPステージ、中Bcl11b不活化して見ることができます。 RasGRP1欠損マウスは唯一人口(未発表データ)の存在下で得られた正の選択の前の欠陥を持っています。
負の選択が小さい抗原特異的な集団の欠失を伴うように、このプロセスの欠陥は、最高のTCRトランスジェニックマウスを用いて観察されています。 HYのCD4マウスにおいて、トランスジェニックHY TCRを発現する胸腺細胞はモノクローナル抗体T3.70( 図3B)を用いて検出することができる。 HY TCRがMHCクラスID Bの中に提示された男性特有のHY抗原を認識します。このように、HYのCD4の男性(M)マウスはHY TCRの負の選択を受ける、+ D、P胸腺細胞番号( 図3D)とT3.70でもっと劇的な減少+ CD8SP胸腺細胞番号( 図3C、E)。これとは対照的に、女性HYのCD4(F)はマウスがT3.70 + CD8SP T細胞を生成するために正の選択を受けています。その厳しい定義では、負の選択は、成熟し、自己反応性胸腺細胞の発生を防止することができる。したがって、一方D P胸腺細胞数の減少は、最も正確な尺度である、抗原特異的なSPの胸腺細胞の不在負の選択の指標である。 HYのCD4のMマウスにおける少数T3.70 + CD8SP胸腺細胞の精査はHYのCD4 F の最もT3.70 + CD8SPの胸腺細胞( 図3F)(CD24 lo)の成熟度に達していながら、ほとんどは、(CD24 hi)に未熟であることを明らかに。これは、さらに負の選択は、iを発生することをサポートしていますnはHYのCD4 mマウス。
TCRトランスジェニックモデルのいずれかの注意点は、トランスジェニックTCRは胸腺細胞の分化を通して高度に発現されていることです。その結果、さらにTCRとCD69/CD5式に基づいて母集団を識別することにより、正の選択を特徴づけることは困難である。しかし、CD69およびCD5発現はTCRシグナルの強さと相関しない。 WTマウスでは、ほとんどのDP胸腺細胞はpMHC複合のTCRの関与を必要とし、正または負の選択を受けていない、したがって、CD69またはCD5をアップレギュレートされません。 HYのCD4 F のマウスは、WT( 図4A)に比べてCD69 +人口の増加によって示される正の選択を受けT3.70 + DP胸腺細胞の大規模な人口を持っています。負の選択は正の選択よりも高い親和性のTCR刺激を伴うが、これはHYのCD4 MマウスにおけるT3.70 + DP胸腺細胞上のCD69の高い発現によって示され、シフトOの結果右にfをヒストグラムピーク。同様の傾向はCD5発現( 図4B)で見られている。遺伝子操作されたマウスにおける胸腺選択を分析する際には、CD69またはCD5発現を調べると、欠陥がTCRシグナリングまたはTCR刺激の下流結果に収まっているかどうかを決定することができます。
図1:実験プロトコルの全体的なスキーム。
図2:非TCRトランスジェニックマウスでは胸腺選択を分析する。非TCRトランスジェニックマウスでは胸腺選択を分析するための(A)は、ゲーティング戦略。 (B)は、WT胸腺のCD4プロファイルによるCD8。 (C)TCRβとCD24の発現により、SP胸腺細胞の成熟度を調べる。 (D)は正の選択のステージはによって区別することができるTCRβ発現によるCD69、CD8および各サブセットでプロファイリングCD4と共に。 (E)は、CD5でTCRβは、発達段階を分離するために使用できる別の戦略である。 拡大図を表示するには、ここをクリックしてください 。
図3:HYのCD4マウスにおいて胸腺選択を分析する。 TCRトランスジェニックマウスでは胸腺選択を分析するための(A)は、ゲーティング戦略。 (B)はWTにおけるHY TCR(T3.70 +)HY CD4 FとHYのCD4 mマウスを表現胸腺細胞の頻度。 (C)が示されたマウスにおけるT3.70 +集団のCD4プロファイルによるCD8。周波数に加えて、T3.70 + DP(D)および特にT3.70 + CD8SP(E)の胸腺細胞の絶対数は負の選択の重要な指標です。 (F)を調べる指示されたマウスでは胸腺細胞の成熟CD8SP。 拡大図を表示するにはここをクリック 。
(4)活性化マーカーの発現はCD69()およびCD5(B)はCD4 HY FとHYのCD4 MマウスからのWTとT3.70 + DP胸腺細胞からの総DP胸腺細胞の図 。
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Discussion
ここで紹介するプロトコルは、非トランスジェニックTCRおよびTCRトランスジェニックマウスにおける正と負の選択を調べるために使用することができます。このプロトコルは、表面抗原の染色を説明します。分子メカニズムの更なる分析のために、それはしばしば細胞内染色を行う必要がある。我々は、ほとんどの細胞内タンパク質と転写因子のBDバイオサイエンスのFoxp3の染色キット用BD Biosciences社Cytofix / Cytopermキットを使用しています。私たちは通常、直ちに染色後に我々のサンプルを取得する。しかし、サンプルは4℃で1%ホルムアルデヒド℃の暗所でCとFACS緩衝液中で一晩保存することができます。いくつかの蛍光色素と抗体が固定と互換性がない可能性があることに注意してください。
正の選択の分析のために、私たちは、負の中間、高発現個体群の良好な分離( 図2)を提供するために、ビオチン化抗CD69または抗CD5の使用をお勧めします。代表的な結果で述べたように、このゲーティング戦略は、2つの異なったフォローアップを必要とする可能性がありますので、系統のコミットメントから正の選択の欠陥を区別するのに役立ちます。成熟したSPの胸腺細胞の生成に加えて、正の選択は、IL-7RαとCCR7の発現増加によって確認することができる。しかし、これらのマーカーは、SP胸腺細胞15,16に比べて事後選択DP胸腺細胞で低レベルで発現される。 DPの区画内の成熟段階の詳細な分析については、細胞内のZAP70式は17を測定することができます。これはTCRβX CD5プロット( 図2E)でこのようなIとIIとして成熟マーカーの発現と同様の集団は、開発のさまざまな段階を表していることを実証するのに特に有用である。
HYのCD4モデルは 、正と負の両方の選択項目を表すの利点、ならびにトランスジェニックTCRの生理的な表現を持っています。しかし、これらの方法を適用することができます一定の配慮を持つ他のTCRトランスジェニックモデル。常に抗原特異的T細胞の研究を可能にするために、選択したトランスジェニックTCRに対する抗体が含まれています。いくつかの分析のためには、内部統制などの非特定の集団への抗原特異的集団を比較するために興味があるかもしれません。他のTCRトランスジェニックモデルでの負の選択を研究することは、さらなる配慮が必要です。負の選択が行われる間、胸腺細胞の分化のステージでは、異なるTCRトランスジェニックモデルによって異なります。 HYのCD4胸腺細胞は負の選択10,18( 図3)の正しい読み出しです、従ってHY -特定CD8SP子孫の集団の分析DPステージでpMHC複合係合する。負の選択は、古典的なHYのマウス19とDPの移行へのDN中に発生した場合、興味のある分析は、抗原特異的DP胸腺細胞の有無となります。ユビキタスHY抗原に対する選択は、胸腺で起こる皮質20。これとは対照的に、組織制限抗原に対する負の選択は胸腺髄質21,22で発生します。 OVA抗原は、胸腺髄質および膵臓23でのみアクティブになりラットインスリンプロモーターの制御下で発現されるとしてのOT-I、RIP-movaのマウスは選択のこのタイプを再現。胸腺皮質のDP胸腺細胞の正の選択が最初に延髄に移行のために必要とされるので、(CD24 lo)の成熟したOT-I TCR + CD8SP胸腺細胞の不在は、OT-I RIP-MOVAマウス24で成功した負の選択を示します。
TCRトランスジェニックマウスを使用すると、抗原特異的な細胞の大集団を研究することができるという利点を有しているが、潜在的な注意点は、トランスジェニックTCRの正と負の選択を仲介することができる限られたリガンドのためのT細胞の発達を変更されます。 RAG-十分なHYのCD4マウスでは、もう一つの注意点は、内因の共発現であるヌースTCRα鎖はHY TCR +胸腺細胞の少数派に正と負の選択を調節する可能性を秘めている。この注意事項は、一般的にはHYのCD4モデルに固有ではなく、むしろTCRトランスジェニックモデル。発表代表HYのCD4は RAG-十分な背景にHYのCD4マウスに由来しています。自然の中で多少複雑ですが、限られた前駆体の頻度をより生理的な雰囲気の中で胸腺細胞選択を研究する多くの方法があります。例えば、TCRトランスジェニックおよびWT混合骨髄キメラ抗原特異的な胸腺細胞前駆体の頻度を減らすために生成することができます。また、1はそのようなHY TCR 25または前駆体の頻度を制限するためのOT-I TCR 26のVB5チェーンのVB8チェーンとしてだけジェニックTCRβ鎖を発現するマウスを使用することができます。トランスジェニックTCRβチェーンは再抗原特異的な胸腺細胞の追跡、各種内因性TCRα鎖と対になっているのでpMHC複合テトラマーの使用を帖。この方法の限界は、TCR発現はテトラマーで検出できるようにするDP胸腺細胞では低すぎるということです。これは、正と負の選択につながるDP胸腺細胞における分子メカニズムのさらなる研究を制限します。さらに最近では、pMHC複合テトラマーと磁気ビーズ濃縮の組み合わせは27 unmanipulatedマウスでCD4の小、抗原特異的な集団+ T細胞を列挙するために使用されてきました。
負の選択は主に内因性アポトーシス経路を介した自己反応性胸腺細胞のクローン除去によって媒介される。アポトーシス胸腺細胞が切断されたカスパーゼ3の細胞内染色を用いたフローサイトメトリーにより検出することができる。 BH3のみのBcl-2ファミリーメンバーのBIMは、TCR刺激18,28に対応して胸腺細胞におけるカスパーゼ3の活性化のために不可欠です。異なるTCRトランスジェニックモデルにBimの欠損マウスを交配することによって、私たちのラボは、BIMを負の選択範囲が必要であることを発見しました複数の負の選択機構18,29の存在を示すユビキタス自己抗原ではなく、組織制限抗原に対するる。同様のアプローチは、胸腺のネガティブセレクション30,31のもう一つの重要なメディエーターとしてオーファン受容体Nur77はステロイドが示唆されている。 HYのCD4マウスからDP胸腺細胞の転写解析では、具体的に正と負の選択32時に誘導される遺伝子のリストを生成しています。これらの遺伝子に操作したマウスにここに提示する方法を適用すると、胸腺選択の分子機構への洞察を提供することがあります。
これは、末梢免疫コンパートメントの分析と胸腺選択の検討をフォローアップするのが理想的です。しかし、中枢および末梢削除を分離することはしばしば困難である。負の選択は、最終的には自己免疫の欠如によって反映されます。彼らは限界があるものの、TCRトランスジェニックマウスでは、強力で実用的な方法です生理的な負の選択を研究しています。特定の遺伝子を欠損したマウスへのクロッシングTCRトランスジェニックマウスでは、負の選択の分子メカニズムを解明するための効果的な方法です。それは認識することが重要であるが、遺伝子の欠陥が原因で、その末梢の炎症は、コルチコステロイドおよびサイトカイン7月9日によって媒介される非特異的な胸腺細胞欠失を引き起こす可能性があります。このような場合は、ここで提示戦略は、炎症の発症前に新生児マウスから胸腺の分析に適用することができます。正の選択は、他の一方で、研究者の交配の悩みを救う、のどちらか、TCRまたは非TCRトランスジェニックモデルで研究することができる。正と負の選択に関与する分子のより良い理解は、自己免疫疾患および免疫不全疾患の診断と治療のための新たな戦略につながるでしょう。
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Disclosures
特別な利害関係は宣言されません。
Acknowledgments
作者は彼の技術支援のために張兵に感謝したいと思います。この作品は、健康の研究(MOP-86595)のためのカナダの協会によって資金を供給された。 TABはCIHR新治験責任医師とAHFMRの学者である。博士とAIHSフルタイム学生の身分 - QHはCIHRカナダ大学院奨学金によってサポートされています。 SANは、クイーン·エリザベスII大学院奨学金によってサポートされています。博士 - AYWSはNSERC大学院奨学金によってサポートされています。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
HyClone Hank's balanced salt solution | Thermo Scientific | SH30030.02 | |
Metal mesh screens | Cedarlane | CX-0080-E-01 | |
Petri dishes (60 x 15 mm) | Fisher Scientific | 877221 | |
Syringes (3 ml) | BD Biosciences | 309657 | |
Conical tubes (15 ml) | Sarstedt | 62.554.205 | |
Microscope | Zeiss - Primo Star | 415500-00XX-000 | |
Hemocytometer | Hausser Scientific | 3110 | |
96-well plate | Sarstedt | 82.1582.001 | |
Multichannel pipette | Fisherbrand | 21-377-829 | |
Fetal calf serum | PAA | A15-701 | |
Phosphate buffered saline | Fisher Scientific | SH3025802 | |
Sodium azide | IT Baker Chemical Co. | V015-05 | |
FcR blocking reagent | Clone 2.4G2 | ||
Anti-mouse HY TCR | eBioscience | XX-9930-YY* | Clone T3.70 |
Anti-mouse CD4 | eBioscience | XX-0042-YY* | Clone RM4-5 |
Anti-mouse CD8α | eBioscience | XX-0081-YY* | Clone 53-6.7 |
Anti-mouse CD24 | eBioscience | XX-0242-YY* | Clone M1/69 |
Anti-mouse TCRβ | eBioscience | XX-5961-YY* | Clone H57-597 |
Anti-mouse CD69 Biotinylated | eBioscience | 13-0691-YY* | Clone H1.2F3 |
Anti-mouse CD5 Biotinylated | eBioscience | 13-0051-YY* | Clone 53-7.3 |
Streptavidin | eBioscience | XX-4217-YY* | |
Flow cytometer | BD Biosciences - FACS Canto | 338962 | |
FACS tubes | BD Biosciences | 352052 | |
Flow cytometry analysis software | TreeStar - Flowjo | FlowJo v7/9 | |
HyClone RPMI - 1640 medium | Thermo Scientific | SH30027.01 | |
*XX varies by fluorochrome and YY varies by vial size. |
References
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