Summary
Burada yapay antijen sunan hücreler (AAPC) kullanarak toplu T hücre popülasyonlarının insan NKT hücreleri aktive ve genişletilmesi için bir yöntem açıklanmaktadır. CD1d bazlı AAPC kullanılması, fonksiyonel NKT hücrelerinin yüksek sayılar için bir standart bir yöntem sağlar.
Abstract
Doğal katil T (NKT) hücreleri, doğal katil (NK) hücreleri, T hücrelerinin her ikisi de 1 ve karakteristik belirteçleri göstermek T hücrelerinin özel bir alt kümesidir. Klasik T hücrelerinin aksine, NKT hücrelerinin CD1 molekülleri 2 bağlamında, lipid antijeni tanır. Farelerde Vα14Jα18 ve sınırlı çeşitlilik 3-6 Vβ zincirleri ile ilişkili olan, insanlarda Vα24Jα18, kurallı ve değişmeyen NKT (i NKT) hücreler olarak ifade edilir: NKT hücreleri, değişmeyen bir TCRα zincir düzenlenmesi ifade eder. Geleneksel T-hücreleri ile benzer şekilde, NKT hücrelerinin CD1d 7 ile uygun olan sinyal ardından, CD4-CD8-timus T öncü hücrelerinden gelişir. Tedavi amaçlı NKT hücreleri kullanmak için potansiyel anlamlı α-galactosylceramide (α-GalCer) ve sitokinlerin 8 çeşitli insan NKT hücreleri canlandırmak ve genişletmek için yeteneği ile artmıştır. Önemlisi, bu hücreler kendi özgün phenotyp koruduE, salgılanan sitokinler ve tümör hücre hatlarına karşı gösterilen sitotoksik fonksiyonu. Bu nedenle, ex vivo genişletilmiş NKT hücrelerinin işlevsel kalır ve adoptif immünoterapi için de kullanılabilir. Bununla birlikte, NKT hücre bazlı immünoterapi otolog antijen sunan hücrelerin kullanımı ile sınırlı olup, bu stimülatör hücrelerin miktarı ve kalitesi önemli ölçüde değişebilir. Kanser hastalarının monosit türevli DC birlikte uyaran moleküllerin düşük seviyelerde ifade etmek ve 9,10 az enflamatuvar sitokinler üretmek için rapor edilmiştir. Aslında, daha ziyade otolog APC murin DC KML hastalar 11 NKT hücrelerinin fonksiyon test etmek için kullanılmıştır. NKT hücrelerinin mürin DC tarafından genişletilmiş ve daha sonra adoptif immünoterapi için kullanılamaz Bununla beraber, bu sistem, sadece in vitro test için kullanılabilir. Böylece yapay antijen sunan hücreler (AAPC) dayanan standart bir sistem allo-ya Ksenogenik ce tuzaklar olmadan DC uyarıcı etkileri olabilirlls 12, 13. Burada, CD1d bazlı AAPC üretmek için bir yöntem açıklanmaktadır. CD1d-Ig kompleksleri güvenilir bir yöntem, izole etkinleştirmek ve efektör NKT hücre popülasyonlarının genişletmek sağlar: CD1d-antijen kompleksleri ile T hücre reseptör (TCR) katılımını NKT hücre aktivasyonu, antijen temel bir ihtiyacı olduğu için.
Protocol
1. AAPC Üretimi
- Boncuk proteinler eklemeden önce tüm reaktifler ve tamponlar hazırlamak: 0.1M Borat tampon; 1X D-PBS (hiçbir Ca 2 + ve Mg 2 +); Boncuk Yıkama Tamponu (1X PBS +5% İnsan AB serumu +% 0.02 sodyum azid) , tam bir ortam (RPMI medyumu ile +100 mM sodyum piruvat, 10 mM gerekli olmayan vitamin çözeltisi, 100 mM MEM vitamini çözeltisi,% 1 2-merkaptoetanol, 10 uM siprofloksasin,% 5 insan AB serumu); MACS tampon (1 L serbest PBS Ca 2 + ve Mg + 2, 5 g BSA, 2 mmol EDTA).
- 5 ml'lik şeffaf borosilikat cam şişe içinde dişli steril 3 ml 0.1 M borat tamponu (borik asit ve su, pH 7.0-7.4) ile 1 ml Dynabeads M-450 epoksi boncuklar yıkayın.
- 1 ml PBS w / o Ca 2 + ve Mg + 2: ayrı bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde, 100 mg hCD1d-Ig dimer ve 20 ug birlikte uyaran moleküller (örneğin anti-CD28mAb) ekleyin. <li> Sıra boncuk gelen mıknatıs ve aspirat borat tamponu üzerine cam flakon içeren. Adım 1.2 cam şişeye protein karışımı ekleyin ve kapağını kapatın. Ters flakon hemen karıştırın, bir rotator üzerinde parafilm ile kapak ve yeri kapsayacak ve 4 ° C'de bir gece inkübe
- Dikkatle boncuk kaçınarak Ertesi gün, bir yerde cam mıknatıs üzerine flakon ve protein karışımı çıkarın. 3 ml boncuk yıkama tampon maddesi (PBS,% 5 AB serumu +0.02% sodyum azid) eklenmesi, ve 5 dakika için bir döndürücü üzerine, 4 ° C sıcaklıkta inkübe ederek boncuk yıkayın. Iki kez tekrarlayın.
- Boncuklar bu boncuk yıkama karışım içinde saklanabilir. Fonksiyonel AAPC yapmak için, küçük bir kısım çıkarın ve bir hemasitometre boncuk saymak. Proteinler stably antikorlar (örn. PE-konjuge anti-fare IgG1) ile boyanarak ve flow sitometri analizleri yaparak boncuk üzerine yüklendiğini kontrol edin.
- Antijen ile boncuk yüklemek için, 5 x 10 7 boncuk kaldırmak, ve küçük bir 1.5 ml bir cam şişeye ekleyin, 1 ml steril PBS ile boncuk yıkayın. Resuspend 1 ml steril PBS ile boncuk yıkandı ve antijen ekleyin; örneğin: α-GalCer/KRN7000 (5mg/ml) ile yükleyin. * Not: biz lipid çözünürlüğün ya misel oluşumu ile herhangi bir sorunları tespit etmemiş olsak bile, lipidler üretici tavsiyelerine göre ele alınmalıdır. Özellikle, KRN7000 bu çalışmalar için DMSO (1mg/ml) içinde yeniden oluşturuldu. KRN7000 glikolipid ve başka antijenler de 0.2 mg / ml PBS içeren% 0.5 içinde çözülebilir Tween-20 (2 saat sonikasyon. 37 ° C'de). ÖNEMLİ-AAPC kullanımdan önce en az 48-72 saat boyunca yüklü olması gerekir.
2. CD161 + CD3 + Hücre İzolasyonu
- Periferik kan mononükleer hücreleri (PBMC) toplayın. Bir buffy coat veya lökoferez paketi lenfositlerin Ficoll yoğunluk gradyan santrifüj ayırma için, ilk olarak oda sıcaklığında 1X PBS eşit bir hacmi ile heparinize kan seyreltin.
- 15 ml Ficoll (oda sıcaklığına ısıtıldı) 50 ml konik tüpe ekleyin. Yavaşça bindirme25 Ficoll üstüne seyreltilmiş kan karışımı ml. Freni ile oda sıcaklığında 30 dakika boyunca 2000 rpm'de santrifüj yapılır.
- Dikkatlice Pasteur pipeti ile lenfosit arabirimi (medya ve Ficoll arasındaki beyaz halka) kaldırmak ve yeni bir 50 ml konik tüp aktarabilirsiniz.
- PBS ile 50 ml'ye tüp doldurma ve 5 dakika boyunca 1500 rpm'de santrifüj yoluyla hücreler yıkanır. Süpernatantı atın ve tek bir tüp, tek bir bireyden tüpler birleştirmek ve 20 ml PBS ile tekrar periferik kan mononükleer hücreleri (PBMC) yıkayın. Daha sonra PBMC saymak ve 5 x 10 7 hücre / MACS tampon içinde ml 'lik bir konsantrasyonda tekrar süspansiyon (Ca 2 1 L serbest PBS + ve Mg + 2, 5 g BSA, 2 mmol EDTA).
- T hücre fraksiyonunun izole edilmesi için, PBMC (10 8 hücreleri) 2 ml ile başlar ve EasySep insan T hücresi Zenginleştirme Kit Pan T hücre zenginleştirme çözeltisinden 100 ul ilave edin. 10 dakika boyunca oda sıcaklığında inkübe edin. Başka bir 10 dakika boyunca oda sıcaklığında ve çözelti inkübe manyetik parçacıkların 100 ul ekle. 2.5 ila çözücü ml nihai hacim getirin ve 5 dk için mor mıknatıs olarak yerleştirilir. Hızlı bir 15 ml konik tüp içine CD3 + fraksiyonu kapalı dökün.
- 5 ml soğuk tampon MACS eklenmesi ile yıkayın hücrelerini, yaşayabilir hücrelerin sayısını saymak ve FACS boyanması için bir tablet çıkarmak.
- 980 ul buz soğuk MACS tampon CD161 + hücreler, ilk tekrar süspansiyon zenginleştirilmiş T hücreleri seçmek için, 10 mikrogram anti-CD161 mAb ekleyin ve 10 dakika buzdolabında beklettikten sonra kullanın.
- 5 dk için 4 ° C sıcaklıkta 1500 rpm'de hücreler santrifüj yapılır. MACS tamponu 800 ul Sonra sulandırmak hücre pelletini. Anti-fare IgG1 mikroboncuk 200 ul ekle ve 4. 10 dakika için çözelti inkübe ° C
- İnkübasyon bu adım sırasında, 3 ml MACS tampon eklenerek bir LS kolon dengelenmeye.
- Daha sonra, 5 dakika boyunca 4 ° C'de 1,500 rpm'de santrifüj ile hücreler yıkanır. Resu3 ml MACS tampon içinde hücreler geçirirler. Sonra, LS MACS ayıran sütun içine pipetle hücreler. Yavaş pipetleme kabarcıklar üreten önlemek için emin olun. MACS tampon, 3 ml ilave edilerek sütun yıkayın. Iki kez tekrarlayın.
- 3 ml taze MACS tamponu ekleyin ve mıknatıstan sütun kaldırmak. 15 ml konik tüp içine yerleştirin sütun. Piston takın ve saflaştırılmış CD161 + CD3 + hücreler elde etmek içeriğini dışarı itin. Kont NKT hücre fraksiyonu zenginleştirilmiştir. Sen 2-4 milyon hücre olmalıdır.
3. AAPC aracılı NKT Hücre Genişletme
- 16 ml tam bir ortam (tam bir ortam + IL-2, 100 U / ml) içinde 10 6 zenginleştirilmiş CD161 + CD3 + T hücreleri ve 10 6 AAPC eklenmesi ile ko-kültür ayarlayın. , 96 iyi doku kültürü tedavi polistiren için düşük buharlaşma kapaklı U-alt plaka 160 sıra nihai / ul hacim ekleyerek Plate bu karışımı. Taze orta 80 ul ekleyerek her 7 inci günü orta değişimi gerçekleştirin.
- Hasathücreler, saymak ve günde 12-14 FACS boyaması gerçekleştirin.
- Genişletilmiş NKT hücreleri, özellikle 16 ml tam bir ortam içinde 10 6 genişletilmiş T-hücreleri ve 10 6 AAPC tekrar süspansiyon, yukarıda adım 3.1 'de tarif edildiği gibi replated edilebilir. Ul / kuyu bir 96 U-alt plaka 160 ekleyerek Levha bu karışım. Taze orta 80 ul ekleyerek her 7 inci günü kokültürü orta yenilemek için devam edin.
- Bu genişleme ikinci turu sonrasında ekstra NKT hücreleri dondurmak için en iyi (1 ml% 5 DMSO / 95% FBS 1 x10 6 / cryovial.)
4. İşlevsel Test: NKT Hücre AAPC aracılı Uyarım
- 5x10 4 NKT hücreleri kurma / de 96 U-alt plaka 200 ul son hacim (tam orta) olarak 5x10 5 AAPC ile.
- 24-48 saat sonra ELISA Hasat hücre kültür süpernatant.
Representative Results
Bu olgu, NKT hücreleri (Şekil 1) yayılması için standart yöntem olarak NKT hücreleri, uyarmak için manyetik boncuklara CD1d-Ig, anti-CD28 mAb kovalent bağlanması ile yapılmış CD1d-Ig bazlı AAPC, üretmek için bir yöntem açıklanmaktadır. İlk olarak, bir CD1d-Ig füzyon proteinleri stabil olarak manyetik boncuk yüzey üzerinde hareketsiz olduğundan göstermek zorundadır. Şekil 2A, CD1d-Ig ve anti-CD28 antikor gösterilen manyetik boncuk yüzeyinde eksprese edilen, her ikisi de. AAPC olan uyarıcı kapasitesini incelemek için AAPC gecede, hasat kültür yüzer ve ELISA ile ölçülen IL-2 üretimi ile biz co-kültürlü NKT hücre hibridomlar. Biz CD1d-Ig tabanlı AAPC (Şekil 3, veriler gösterilmemiştir) eşit ya da hücresel muadillerine göre daha yüksek seviyelerde NKT hücre hibridomlar teşvik başardık bulundu. İlginçtir, bizim fare NKT hücre hibridomlar insan CD1d tabanlı AAPC (Fi tarafından uyarılır bulunduAAPC her parti test edilmesi için basit bir yöntem sağlar Şayet 2B).
Sonra biz AAPC yayılma potansiyelini göstermek için çalıştı, böylece insan T hücreleri periferik kandan izole edildi. İlk CD161 + CD3 + T hücre fraksiyonu manyetik boncuk ayırma ile zenginleşti. Daha sonra T hücreleri α-GalCer yüklemeli AAPC ile haftada iki kez uyarıldı. Önemlisi, biz bile nispeten düşük bir başlangıç NKT hücre nüfus (% 0.03) ile, biz ~ 67% Vα24 + Vβ11 + (Şekil 3) hücreleri genişletmek mümkün olduğunu bulmuşlardır. Biz çok sağlıklı gönüllüler ve kanser hastalarının PBMC NKT hücreleri genişlettik ve α-GalCer yüklenen AAPC iki grupta NKT hücreleri nüfus genişletmek mümkün olduğunu bulduk. Özellikle, genleşme oranı yüksek donör bağımlı oldu. Beklendiği gibi Vα24 + hücrelerin daha yüksek bir başlangıç nüfusu, genişleme daha büyük yüzdesi. Buna ek olarak,2 milyon hücre, bir başlangıç popülasyonu kullanıldığında CD161 + CD3 + T-hücreleri, tek genişlemelere (Tablo 1) sonra> 10 7 hücreleri elde edebilir. Genişletilmiş NKT hücrelerinin yaklaşık% 80-90 +, ~% 5 CD8 + ve geri kalan muhtemelen CD4-negatif CD8-çift NKT hücreleri CD4 vardır. Şekil 4A-C 'de gösterildiği gibi Bu genişletilmiş NKT hücrelerinin fonksiyonel çalışmalar için de kullanılabilir. Biz ex vivo NKT hücreleri α-GalCer uyarım ile duyarlı kalmasını ve IL-17A, TNF-α, ve IFN-γ potent üreticileri genişletilmiş olduğunu bulduk. Bu, ilk T-hücresi zenginleştirme nüfus düşük olması ve bir ikinci CD161 zenginleştirme adımı gerçekleştirmek mümkün ise, AAPC-aracılı genleşme beklenen sonuçlar (Şekil 4D, Donör 1'e bakınız) elde olmayabilir not edilmelidir. Dolaşımdaki NKT hücrelerinin yüzdesi% 0.1 'den daha yüksek olan, ancak, yine de önemli bir büyüme elde etmek mümkün olmalıdıri NKT hücrelerinin. Toplu olarak, bu veri CD1d bazlı AAPC genişletmek ve etkili bir primer insan NKT hücreleri, uyarmak için kullanılabileceğini göstermektedir.
Şekil 1. CD1d şematik: Ig-tabanlı aAPCs CD1d molekülünün hücre dışı bölümleri, kısa amino asit bağlayıcısı ile ayrılan bir immünoglobülin ağır zincir protein sabit bölgesi ile birleştirilir. Bu moleküller, kolayca sadece ilgi lipid fazlalığı ile inkübe ederek, bu gibi α-GalCer gibi lipid antijenleri ile yüklenebilir. AAPC manyetik boncuklara CD1d-Ig, anti-CD Abs birleştirilmesi ile gerçekleştirilmiştir. Bu sistemde, CD1d-Ig mAb kaynaklı birlikte uyaran sinyalin içerir TCR ve anti-CD28 ile aynı soydan gelen antijen-spesifik sinyal sağlamak için kullanılır.
Şekil 2. . IgG dimer (PE-bağlı anti-fare IgG1 ile boyama yoluyla) ve anti-CD28 antikoru (FITC-konjuge anti-fare IgG2a kullanılarak): aAPCs yüzey proteinleri FACS boyama A) aAPCs CD1d varlığı açısından test edildi . Aç histogramlar izotip kontrol gösterir; dolu histogramlar Belirtilen antikorlar temsil eder. CD1d-Ig ifade AAPC NKT hücreleri IL-2 üretimi teşvik edebilir. B) Vα14 + fare hibridoma hücre NKT, DN32.D3, ya da orta, suda çözünür antijen (α-GalCer), AAPC ya da α-GalCer yüklemeli AAPC boşaltılması ile kültüre edildi. Yüzen kültürler hasat edildi ve standart bir sandviç ELISA, IL-2 üretimini ölçmek için kullanılmıştır.
Şekil 3,. CD1d-Ig kaplama suni antijen sunan hücreler tarafından NKT hücrelerinin genişlemesi. (A) Birincil CD3 + CD161 + çift pozitif hücreler manyetik ayırma kullanarak PBMC'ler izole edilmiştir. Kriteri hücreleri α-GalCer yüklü, 14 gün boyunca CD1d-Ig kaplamalı AAPC ile uyarıldı. Hücreler Vα24 ve Vβ11 aşağıdaki AAPC uyarılması için boyandı. (B) Birincil insan NKT hücre bir B hücreli lenfoma hattı lizis aracılık. Antijeninin varlığı ya da yokluğu, 20-24 saat için 96 oyuklu U tabanlı bir plaka-GalCer (100 ng / ml) olarak belirtilen oranlarda NKT hücreleri ile inkübe C1R-CD1d hücreler. NKT hücre aracılı hücre parçalama standart 51Cr-salınım testi ile değerlendirildi.
Şekil 4. AAPC-genişletilmiş NKT hücrelerinin sitokin profilleri. 5 / kuyu) çözünür α-GalCer, PMA / Ionomycin, anti-CD3/28 mikroboncukları veya α-GalCer yüklü AAPC ile kültüre edildi ile stimülasyon sonra (2 × 10 5 kuyu /) 48 saat boyunca. (A), IL-17A, (B), TNF-α, ve (C), IFN-γ standart sitokin üretimi ELISA ile ölçülmüştür. Gösterilen veriler negatif kontroller (medya ve boş boncuk) düşüldükten sonra net sitokin üretimi vardır. (D) Birincil T hücreleri PBMC manyetik boncuk ayırma kullanılarak izole edilmiştir. Kriteri hücreler-GalCer yüklü-AAPC göstergesi ile iki hafta için uyarıldı. Hücreler Vα24 için belirli Abs kullanılarak boyandı + ve Vβ11 + ve flow sitometri ile analiz.
Discussion
AAPC NKT hücre aktivasyonu için temel gereklilikleri incelemek için kullanılır ve adoptif immünoterapi için NK T hücrelerinin ex vivo olarak genişleme için potansiyel klinik bir değere sahip olabilir. Mescher ve ark. Lateks mikro kürecikler 14, 15 yüzeyine biyotinile birlikte uyaran moleküller streptavidin üzerinden B7.1 ve B7.2 ile kombine edilmiştir birinci boncuk esaslı sistemlerinden biri, biyotinile murin MHC sınıf I-peptid-tek zincirli yapıları tanımlanmıştır. Bu yaklaşımın başarılı bir şekilde transgenik farelerden alınan antijen-spesifik T hücreleri stimüle etmek için kullanılmıştır. Bu yaklaşım MHC moleküllerinin homojen bir yükleme sağlamak için bir tek zincir MHC-peptid kompleksi kullanan bu yana Buna ek olarak, her bir hedef peptid antijen böylece yoluyla sunulan tüm, istenilen tek zincir MHC-peptid kompleksi ifade etmek için bir yeni transfeksiyon gerektirir yaklaşım. Önemlisi, Dr Schneck grubunun başka bir hücresel olmayan boncuk tabanlı AAPC geliştirerek, boncuk tabanlı-AAPC öncülük, Manyetik boncuklar üzerine HLA-Ig, sinyal 1, ve anti-CD28, sinyal 2, kuplaj yapılır. HLA-Ig, bir immunglobulin moleküler iskele 16, 17 için erimiş HLA eşsiz multimerik formu kendi grubu tarafından geliştirilmiştir. Daha sonra, onlar etkili CMV ve MART-1 spesifik CTL 18 genişletmeye gösterilmiştir MHC-Ig tabanlı AAPC geliştirdi. Burada, CD1d-Ig bazlı AAPC fonksiyonel NKT hücrelerinin genişletmek için kullanılabileceğini göstermiştir. Bir çalışmada, CD1d 19 ile NK hücrelerinin fiziksel etkileşimini incelemek için benzer bir sistem kullandı.
Özellikle, biz en uygun NKT hücre çoğalması için gerekli bulduğunuz herhangi gereksinimlerine uyarlanabilir yapay bir antijen sunan hücre tasarladık. AAPC genişleme yöntemi, insan NKT hücreleri genişletilmesi ve zenginleştirilmesi için basit ve güvenilir bir yöntem sağlar. Bizim AAPC sistematik potansiyeli kostimülatör moleküllerin bir panel rolünü değerlendirmek ve NKT hücre proliferasyonunda kendi rolünü değerlendirmek için modifiye edilebilirtion ve fonksiyonu. Böylece, AAPC NKT hücreleri indükleyen ve genişletilmesi için kullanışlı sağlam çok yönlü bir teknoloji sunmaktadır. AAPCs bir kuşak en az bir hafta sürer ve boncuk büyük miktarlarda üretim için uygundur. Bununla birlikte, AAPC oluşturulmasında önemli bir adım CD1d-Ig stabil olarak boncuklar üzerinde hareketsiz tutulan yüzey olduğunu doğrulamak için ve partiden partiye tutarlılık sağlamak için kendi işlevselliğini değerlendirilmesidir. Sistemin bir potansiyel kısıtlama boncuk mekanik olarak temizlenmesi dışında, stimülasyon kapatmak için bir mekanizma yok olmasıdır. Spesifik olarak, antijen ile T hücre reseptörü (TCR) iç içe geçme: CD1d/MHC kompleks tipik olarak T hücresi ve her ikisi üzerinde inhibitör ya da baskılayıcı faktörlerin indüksiyonu ile sonuçlanabilir aksesuar / yapışma molekülleri ile uyum içinde immünolojik sinaps oluşturmak antijen hücre sunulması. AAPC sistem, bu faktörler T hücresi tarafından upregulated olabilir, ama boncuk ortak kökenli ligand ifade etmedikleribu reseptörler için.
Buna ek olarak, CD4 + NKT hücreleri, farelerde ve insanlarda anti-tümör tepkileri bastırmak için gösterilmiştir, bundan dolayı da bütün NKT hücreleri (α-GalCer yani, küresel stimülasyonu) ya da yanlış bir alt kümesi aktivasyonu seçici aktivasyon istenmeyen immünolojik neden olması mümkündür sonuçları. Sonuç olarak, bir fenotipik olarak ve işlevsel olarak AAPC-genişletilmiş NKT hücre popülasyonu göstermek zorundadır. Şekil 4'te gösterildiği gibi, anti-CD28 eksprese eden α-GalCer yüklemeli AAPC ile stimülasyon Th2 Th1 üreten NKT hücreleri, ve Th17 tipi sitokinlerin neden olabileceğini bulduk. Mürin çalışmalarda, IL-33, yeni tanımlanmış bir sitokin olan meydan IL-5 ve IL-13 gibi inflamatuar sitokinlerin dolaşımdaki düzeylerinde artış sağladığını bildirdi. IL-33 ile NKT hücrelerinin tedavisi onların sitokin üretimini 20 artırmıştır. IL-33 ST2 için bir spesifik ligand olup, bu çözünür ST2 ca görülmüştürn blok IL-33 sinyal. Böylece, gelecekteki bir uygulama örneği olarak, AAPC ifade ST2 oluşturulur ve NKT hücreleri tarafından Th1 sitokin salgılanmasını uyaran ise bir seçici olarak Th2 sitokinlerin üretimini inhibe edebilir olup olmadığını belirlemek için kullanılabilir. Aynı zamanda rapor edilmiştir ki iv enjeksiyon Kb-eksprese eden içine AAPC C57BL / 6 fareleri tümör 21 azalmıştır akciğer metastazı ile sonuçlanmıştır. Önemlisi, bu veriler akciğer o AAPC trafiği göstermek ve efektör T hücre alt aktive edebiliyoruz. Bu nedenle, bir AAPC birden fazla türde oluşturmak ve antijen spesifik T hücre alt grupları arasındaki etkileşimi incelemek olabilir. Özetlemek gerekirse, bu çalışmalar CD1d-Ig tabanlı AAPC normal hücresel APC yerine kullanılabileceğini göstermek ve NKT hücre bazlı evlatlık immünoterapi için güncel klinik yaklaşımlar geliştirmek için potansiyel var.
Disclosures
Çıkar çatışması ilan etti.
Acknowledgments
Yazarlar faydalı tartışmalar için Priyanka Subrahmanyam teşekkür etmek istiyorum. Yazarlar hiçbir maddi çıkar rakip var. Bu çalışma Amerikan Kanser Derneği, NIH / NCI K01 CA131487, R21 CA162273, R21 CA162277 ve P30 Tümör İmmünolojisi ve TJ Webb'e İmmünoterapi Programı hibe ile desteklenmiştir. Içeriği sadece yazarların sorumluluğundadır ve mutlaka Ulusal Kanser Enstitüsü ve Ulusal Sağlık Enstitüleri resmi görüşlerini temsil etmemektedir.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Ficoll-Paque PLUS | GE Life Sciences | 17-1440 | |
| EasySep Human T Cell Enrichment Kit | StemCell Technologies | 19051 | |
| Allophycocyanin CD161 human mAb | Pharmingen | 550968 | |
| EasySep Magnet | StemCell Technologies | 18002 | |
| Anti-mouse IgG1 Microbeads | Miltenyi Biotec | 130-047-101 | |
| Dimer XI Recombinant Soluble Dimeric Mouse CD1d:IG Fusion Protein | BD Biosciences | 557599 | |
| Anti-CD28 mAb | Biolegend | 302914 | |
| M-450 Epoxy beads | Life Technologies | 150-11 | |
| Alpha-galactosylceramide (KRN7000) | Axxora, LLC | BML-SL232-0100 | |
| RPMI 1640 Medium | Sigma Aldrich | R 0883 | |
| Sodium Pyruvate | Gibco | 11360-070 | |
| Non-essential amino acids | Gibco | 11140-050 | |
| Vitamin Solution | Gibco | 11120-052 | |
| 2-mercapt–thanol | Gibco | ||
| Ciprofloxacin | Alexis Biochemicals | 380-288-G025 | |
| PE-Vα24Jα18 | Biolegend | 342904 | |
| PE-Vα24 (Clone C15) | Beckman Coulter | A66907 | |
| FITC-Vβ11 (Clone C21) | Beckman Coulter | A66905 | |
| PE-CD1d | Biolegend | 123510 | |
| PE anti mouse IgG1 | BD Biosciences | 556650 | |
| FITC anti-mouse IgG2a | Biolegend | 407105 | |
| DPBS, no calcium, no magnesium | Life Technologies | 14190250 | |
| Sodium Azide | Sigma Aldrich | S8032 | |
| Bovine Serum Albumin | American Bioanalytical | AB00440-00100 | |
| EDTA | Sigma Aldrich | 431788 | |
| IL-2 (Proleukin) | BD Biosciences | 354043 | |
| Human AB Serum | Atlanta Biologicals | S40110 | |
| Labquake Tube Rotator | Fisher Scientific | 13-687-10Q | |
| BD Falcon 5 ml polystyrene round-bottom tubes | Fisher Scientific | 14-959-1A | |
| Wheaton Glass Sample Vials with Cap | Fisher Scientific | Small (03-343-6A ) Large (03-343-6E) |
References
- Fowlkes, B. J. A novel population of T-cell receptor αβ-bearing thymocytes which predominantly expresses a single Vβ gene family. Nature. 329, 251-254 (1987).
- Prigozy, T. I. Glycolipid antigen presentation by CD1d molecules. Science. 291, 664-667 (2001).
- Davodeau, F. Close phenotypic and functional similarities between human and murine αβ T cells expressing invariant TCR α-chains. J. Immunol. 158, 5603-5611 (1997).
- Exley, M., Garcia, J., Balk, S. P., Porcelli, S. Requirements for CD1d recognition by human invariant Vα24+ CD4-CD8- T cells. J. Exp. Med. 186, 109-120 (1997).
- Koseki, H. Dominant expression of a distinctive V14+ T-cell antigen receptor α chain in mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 88, 7518-7522 (1991).
- Dellabona, P., Padovan, E., Casorati, G., Brockhaus, M., Lanzavecchia, A. An invariant Vα24-JαQ/Vβ11 T cell receptor is expressed in all individuals by clonally expanded CD4-8- T cells. J. Exp. Med. 180, 1171-1176 (1994).
- Porcelli, S. A., Modlin, R. L. The CD1 System: Antigen-presenting molecules for T cell recognition of lipids and glycolipids. Annu. Rev. Immunol. 17, 297-329 (1999).
- Harada, Y., et al. Expansion of alpha-galactosylceramide-stimulated Valpha24+ NKT cells cultured in the absence of animal materials. J. Immunother. 28, 314-321 (2005).
- Bella, S. D., et al. Altered maturation of peripheral blood dendritic cells in patients with breast cancer. Br. J. Cancer. 89, 1463-1472 (2003).
- Onishi, H., et al. Dysfunctional and Short-Lived Subsets in Monocyte-Derived Dendritic Cells from Patients with Advanced Cancer. Clinical Immunology. 105, 286-295 (2002).
- Shimizu, K., et al. Evaluation of the function of human invariant NKT cells from cancer patients using alpha-galactosylceramide-loaded murine dendritic cells. J. Immunol. 177, 3484-3492 (2006).
- Shiratsuchi, T., Schneck, J., Kawamura, A., Tsuji, M. Human CD1 dimeric proteins as indispensable tools for research on CD1-binding lipids and CD1-restricted T cells. Journal of immunological. 345, 49-59 (2009).
- Webb, T. J., Bieler, J. G., Schneck, J. P., Oelke, M. Ex vivo induction and expansion of natural killer T cells by CD1d1-Ig coated artificial antigen presenting cells. J. Immunol. Methods. 346, 38-44 (2009).
- Tham, E. L., Jensen, P. L., Mescher, M. F. Activation of antigen-specific T cells by artificial cell constructs having immobilized multimeric peptide-class I complexes and recombinant B7-Fc proteins. J. Immunol. Methods. 249, 111-119 (2001).
- Goldberg, J., Shrikant, P., Mescher, M. F. In vivo augmentation of tumor-specific CTL responses by class I/peptide antigen complexes on microspheres (large multivalent immunogen). J. Immunol. 170, 228-235 (2003).
- Dal Porto, J. A soluble divalent class I major histocompatibility complex molecule inhibits alloreactive T cells at nanomolar concentrations. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 90, 6671-6675 (1993).
- Greten, T. F. Direct visualization of antigen-specific T cells: HTLV-1 Tax11-19-specific CD8+ T cells are activated in peripheral blood and accumulate in cerebrospinal fluid from HAM/TSP patients. PNAS. 95, 7568-7573 (1998).
- Oelke, M., et al. Ex vivo induction and expansion of antigen-specific cytotoxic T cells by HLA-Ig-coated artificial antigen-presenting cells. Nat. Med. 9, 619-625 (2003).
- Huang, M. M. S., Borszcz, P., Sidobre, S., Kronenberg, M., Kane, K. P. CD1d1 Displayed on Cell Size Beads Identifies and Enriches an NK Cell Population Negatively Regulated by CD1d1. J. Immunol. 172, 5304-5312 (2004).
- Bourgeois, E. The pro-Th2 cytokine IL-33 directly interacts with invariant NKT and NK cells to induce IFN-gamma production. Eur. J. Immunol. 39, 1046-1055 (2009).
- Ugel, S., et al. In vivo administration of artificial antigen-presenting cells activates low-avidity T cells for treatment of cancer. Cancer Res. 69, 9376-9384 (2009).
