髪の再生の間に上皮間葉シグナル伝達の迅速遺伝子解析

Summary

ゲインまたは機能喪失を媒介するためにレンチウイルスを用いて、毛包の再生モデルの組織特異的分析。

Abstract

毛包の形態形成、上皮由来ケラチノサイトと基礎の間充織間の相互作用を必要とする複雑なプロセスは、器官形成および組織特異的シグナル伝達を研究するための魅力的なモデル系である。毛包の発達は、遺伝的に扱いやすいですが、このプロセスのための本質的な要因を迅速かつ再現性の分析が課題として残されている。ここでは、ターゲットに過剰発現または組織特異的にレンチウイルスを用いた要因のshRNAによるノックダウンを生成する手順について説明します。毛髪再生モデル^5、6、11の修正版を使用して、我々は、毛包の形態形成につながる上皮間葉シグナル伝達経路の研究を促進するために、堅牢なゲインまたはプライマリマウスケラチノサイトや真皮の細胞における機能喪失型の分析を実現することができます。我々は、レンチウイルスcontaiを届ける、毛乳頭細胞やその前駆体を含む新鮮な一次マウスケラチノサイトおよび真皮細胞を分離する方法について説明し細胞集団の一つにshRNAまたはcDNAのどちら寧、およびヌードマウスの背中に完全に形成された毛包を生成するためにセルを結合します。このアプローチでは、三週間以内に、毛包を生成するために必要な組織特異的な要因の分析を可能にし、既存の遺伝モデルに迅速かつ便利なコンパニオンを提供しています。

Protocol

1。 0から2日間皮膚切開用オールド新生マウスを準備

1. 少なくとも20分間、CO ₂チャンバーを用いた仔マウスを安楽死させる。解剖するまで最大1時間まで氷上に子犬のままにしておきます。古いマウスから調製した細胞は低い移植片収量がいる前駆容量を減らしているようにP0〜P2マウスを強くお勧めします。 70％エタノールの一皿（ステップ1.3）および洗浄溶液の3皿（ステップ3のために）皮膚切開を実行する準備を準備します。ディスパーゼソリューションを解凍し、4のままにしておく℃に子宮頸部は安楽死を確実にするために、CO ₂露出オーバー後に子犬を脱臼。
2. 氷と無菌流フードへの転送上の培養皿に安楽死させた子犬を置きます。
3. 簡単に無菌培養皿に70％エタノールおよび場所に浸漬することによって、子犬を洗う。

2。マウス皮膚を切開

1. 滅菌ハサミで胴体の付け根に各肢と尾を切り落とした。
2. cuのペアの間にしっかりと身体を把握するrved鉗子基礎となる筋膜を貫通することなく頭からメスを用いて尾の背側の皮膚に沿って切り込みを入れる。
3. 慎重に持ち上げてマウスの正中線から皮膚の皮をむく。
4. 湾曲した鉗子の長辺でしっかりと露出してマウスを握り、マウスの後端に皮膚の下に湾曲した鉗子の別のペアを挿入し、ゆっくりとマウスの腹側半分に向かって腰の肌を引き出します。
5. 慎重に1滑らかな動きで完全にオフマウス皮膚剥離や死骸を捨てる。

3。ディスパーゼソリューションで皮膚とインキュベートを洗う

1. 真皮側と洗浄液の最初の皿の中で皮膚を下に置きます。皮膚を広げてピンセットで撹拌します。次の皮膚を切開しながら洗浄溶液の第一皿に皮を残す。
2. 洗浄液の最初の皿の中で横に切開した皮膚を配置した後、洗浄液の第二の皿の前に肌を転送します。目でスキンを保つ電子第二洗浄液すべてのスキンが収集されるまで。最後の洗浄にスキンのすべてを譲渡、簡単に撹拌します。
3. 無菌10cmの培養皿に10mlの氷冷ディスパーゼを追加します。ディスパーゼソリューションに肌を転送し、皮膚真皮側を下にして平らにする。
4. 4時8月16日時間のスキンをフロート℃（代替オプション：1時間、37℃）。

4。別真皮と表皮

1. 新しい無菌培養​​皿に皮を転送し、皮膚真皮側を下にして平らにする。慎重にメスで1コーナーから真皮を押したままにします。
2. ピンセットで表皮を握り、ゆっくりとはがし真皮から。表皮は1ピースとしてはがすべき。表皮は白と薄いであろうと真皮は、茶色がかった厚い、そしてゼラチン状である必要があります。
3. 独立した無菌培養皿に二つの組織を分離します。
   1. 皮膚特異的な遺伝子ノックダウン/過剰発現は移植を行うには、真皮を取るとトンと非常に小さい部分にミンチWOのメス。表皮を破棄します。感染症（ステップ7）の日に、レンチウイルスに感染した皮膚細胞と組み合わせて、新鮮な未処理の表皮細胞を調製するために、マウスの皮の別のセットを解剖する。
   2. 表皮特異的な遺伝子ノックダウン/過剰発現は移植を行うには、6に各表皮をスライス - 8小さなピースを。真皮を破棄します。感染症（ステップ7）の日に、レンチウイルスに感染した上皮細胞と結合するために、新鮮な未処理の真皮細胞を準備するために、マウスのスキンの別のセットを解剖する。

5。細分化した組織から初代マウス真皮細胞を（MDC）が解離する

1. 1時間37℃で作りたてコラゲナーゼ溶液で皮膚片をインキュベートすることによって、MDCを解離する。子犬マウスあたりコラゲナーゼ溶液10mlを使用してください。
2. 優しく真皮を10分毎に含む溶液を混ぜる。顕微鏡下での解離の程度をチェックし、消化された細胞懸濁液は、主に単一細胞である必要があります。溶液は透明から曇りのように変更する必要があります真皮細胞は真皮から解離する。
3. コラゲナーゼの活性を低下させるために10％の最終体積に真皮を含むコラゲナーゼ溶液にFBSを追加します。
4. 大型未消化塊と全体卵胞を除去するために新しい50 mlチューブに70μmのセルストレーナーを通して細胞懸濁液を渡します。さらにコラゲナーゼを希釈するフロースルーの30ミリリットル当たりDMEM/10％FBSの10ミリリットルを追加します。
5. 遠心チューブは、さらに全体の卵胞を削除する5分間卓上遠心機で30 xgで消化された真皮を含む。
6. 慎重に、新しい50 mlチューブに上清を移す。 5分間卓上遠心機で200×gで遠心分離することにより細胞をペレット化。
7. DMEM/10％FBS（子犬あたり1ml）とカウント細胞と細胞を懸濁。プレート感染のAmniomax C-100メディア（ステップ7）を持つ細胞、または（ステップ9）移植用レンチウイルスに感染したKCと結合する。典型的な収量は子犬あたり20×10 ^6個の細胞である。

6。プライマリケラチノサイトの関連付けを解除細分化した組織からの（KC）

1. 15分間37℃で新たに解凍0.05％トリプシン-EDTAで表皮片をインキュベートすることによりKCを解離する。子犬マウス当たりトリプシン-EDTAの7ミリリットルを使用しています。
2. 表皮ごとに5分を含む静かに回してソリューションを提供します。
3. トリプシンの活性を低下させるトリプシン-EDTAを含む表皮に中和溶液の等量を追加します。
4. 5分間卓上遠心機で200×gで遠心分離することにより細胞をペレット化。残りの未消化の組織が上に浮くはずです。
5. 慎重に消化されていない組織で上清の大部分を取り除く。妨害することなく、細胞ペレットを10mlのピペットを用いて残りの上清を取り除きます。 PBSで細胞ペレットを再懸濁します。ケースKCSで完全にペレット化していない、上清の大半を捨て、細胞の大部分をペレットになるまで遠心操作を繰り返します。
6. 残りの組織または凝集塊を除去するために新しい管に70μmのセルストレーナーを通して細胞懸濁液をこす。
7. 遠心分離により細胞をペレット化5分間卓上遠心機で200×gで。
8. CNT-07メディアまたはPBS（子犬あたり1ml）とカウント細胞内で細胞を懸濁。感染細胞をプレーティングする（ステップ7）のためにCNT-07を使用し、（ステップ9）移植のためのレンチウイルス感染MDCSと結合するためにPBSを使用しています。典型的な収量は子犬当たり3から10×10 ^6個の細胞である。

7。 shRNAまたはcDNAを含むレンチウイルスで初代培養細胞に感染

感染の当日（ステップ9）移植当日のウイルスに感染した細胞と結合する、新鮮な未処理のプライマリKCSまたはMDCを準備するために、マウスのスキンの別のセットを解剖する。

1. 1. MDCのため、プレート4×10で37 AmnioMAX-C100メディアインキュベートした10 cmのプレート当たり⁶ MDCS°C〜50％の細胞密度で翌日感染の+ 5％のCO _2。通常のMDCの3-4プレートは1片を生成するために使用されており、10月12日のプレートの合計は、1つの実験では3の移植片を生成するために必要とされています。あるいは、MDCがfを添付し、広めることができまたは37℃で2時間の最小℃+ 5％CO ₂及び感染症の細胞播種の同じ日に行う。 MDCは線維芽細胞様の形態を持つことになります。
   2. KCのために、プレート12×10で37 CNT-07メディアインキュベートした10 cmのプレート当たり⁶ KC℃の翌日感染の+ 5％のCO _2。あるいは、KCは添付して2時間の最小値に対して広がる37℃+ 5％CO ₂と同じ日に感染を実行できます。 KCの通常3から4プレートは、1片の生成に使用されます。 10月12日のプレートの合計は、1つの実験のための3つの移植片を生成するために必要とされています。 KCSは、石畳の形態を持つことになります。
2. 37℃で8μg/ mlのポリブレンソリューション℃+ 5％CO ₂で5〜10分間細胞をPreincubate。
3. 交換媒体とレンチを追加するには、[+ 8μg/ mlのポリブレンソリューション。レンチウイルス力価は、構築に使用され、感染する前に決定されるべきであるに応じて異なります。
4. 32℃で1時間卓上遠心機で200×gでプレートを遠心°;レンチウイルスで細胞を感染させるために、C。
5. レンチウイルス含有培地を取り除き、新鮮な培地を追加します。 KCは、新鮮な培地を添加する前に戻ってPBSで一回細胞を洗浄する。通常、感染した細胞は37℃で±5％のCO _2を一晩回復。あるいは、移植片のために細胞をトリプシン処理前℃+ 5％のCO ₂で37回復の少なくとも2時間を可能にします。代表的な結果セクションで説明したように、感染効率を確認するために、培養感染細胞の小さな部分に進みます。

8。グラフト感染した細胞を準備する

1. 手順4〜6を使用して皮膚からの新鮮な一次MDCSまたはKCSを分離します。氷冷滅菌PBS中に再懸濁します。細胞をカウントする。
2. 1. 皮膚特異的な遺伝子ノックダウン/過剰発現は移植のために、8分間37℃で0.05％トリプシン-EDTAを用いてプレートから感染したMDCを解離する。
   2. 表皮特異的な遺伝子ノックダウン/過剰発現は移植のために、プレートUSIから感染KCを解離で、37 ngの0.125パーセントトリプシン-EDTA℃で15分間インキュベートする。
3. DMEM + 10％FBS（MDC）がまたは中和溶液（KC）を使用して、トリプシン活性を中和する。 50mlチューブにトリプシン処理した細胞を移す。
4. 5分間卓上遠心機で200×gで遠心分離することにより細胞をペレット化。
5. 氷冷滅菌PBS中に再懸濁します。細胞をカウントする。
6. 作りたての未処理相手細胞型とウイルスに感染した細胞を兼ね備えています。 1グラフトは、4℃で氷冷滅菌PBSおよびペレット卓上遠心機で細胞スラリーで7から10×10 ⁶ KCSと7月10日×10 ⁶ MDCを組み合わせる50〜100μlの氷冷滅菌PBSに細胞を再懸濁する。 nu / nuマウス室は準備が整うまで、氷上で細胞を維持。

9。 nu / nuマウスの背面に創傷床とFix商工会議所を作成

移植前日に、70％エタノールに浸漬することによって、オートクレーブ滅菌したシリコン室と手術器具を滅菌する。 70％ETHAを交換チャンバーを使用する前に滅菌PBSでNOL。

1. 腹腔内注射（100μl/10g体重）または他の好適な方法を介して、ケタミン（8 mg / ml）を/キシラジン（1.6 mg / ml）を用いて麻酔nu / nuマウス（7-12週齢の雌）。眼潤滑剤を適用します。マウスの下に加熱パッドを配置します。
2. ヨウ素でヌードマウスの背部皮膚の消毒、アルコール綿棒で清掃してください。
3. 1-3局所切開部位に0.25％Bupivicaineをドロップに追加します。ピンセットで首の付け根にヌードマウスの背部皮膚をつまむ。
4. 滅菌ハサミで挟ま皮膚の小さな円形の穴（直径約1cm）を切り取ります。
5. 創傷床の上に無菌室を置き、周囲の皮膚とチャンバーの縁をカバーしています。
6. 図2Aに示すように、チャンバの縁に沿って縫合（チャンバーあたり6ステッチ）に近い場所にセキュア室。
7. 室の準備ができている、優しくスワール細胞スラリーと1mlのシリンジに取り付け23ゲージの針に策定する。細胞スラリーは優しく、下部に凝縮されている場合針に描画する前に1ミリリットルピペットチップで再懸濁する。
8. 穿刺針を有するチャンバとゆっくり傷口に細胞を垂れる。
9. クリーン、オートクレーブしたケージにマウスを置きます。ハウスケージあたり2マウスおよび水を飲むには、抗生物質やタイレノール（3 mg / ml）を加える。我々の経験では、ケージあたり2匹の雌マウスは、チャンバ、グラフト、または動物に有害な外傷をもたらしていない。
10. 2分の1ケージの下温暖化パッドを置き、麻酔が切れるまでマウスを観察します。

10。 7-9日後チャンバーを取外す

1. ステップ9.1のようにチャンバーnu / nuマウスを麻酔。眼潤滑剤を適用します。
2. ヨウ素とチャンバー周りの皮膚を消毒し、アルコール綿棒で清掃してください。
3. 慎重にステッチをカットし、チャンバから取り除く。
4. 優しくマウスからチャンバーを取外す。室に新しい皮膚移植スティック場合は、鉗子を用いてチャンバからチャンバの一部と優しく別個移植を持ち上げます。チャンバーの取り外し作業中には、移植を押したままにします。グラフトはトイレべき図2Bのようにkの鈍いと不透明。
5. カチッと開いた傷口や縫合糸（2ステッチ）に対する抗生物質の薄膜と非接着パッドを適用します。
6. パッドを固定し、傷口を保護するために、マウスの周りに包帯を巻きつけます。所定の場所に包帯を縫合。
7. シリコン室は、薄い中性洗剤で洗浄することにより洗浄し、徹底的に脱イオン水で洗浄する。一晩70％エタノールでチャンバー、空気乾燥しており、店舗を浸す。

11。毛の成長のためのマウスを調べ

1. チャンバー除去の3日後に包帯やパッドを取り外します。移植片は乾燥して褐色に不透明でなければならない。
2. 髪の成長のために定期的にマウスを確認してください。髪は移植後16日目に表示するように開始する必要があります。

手順の概要

1日目は（2〜3時間）、生まれたばかりの子犬を生け贄に皮膚を除去し、4℃で一晩ディスパーゼに残す。

2日目（2〜3時間）：皮膚から初代培養細胞を分離し、推奨細胞密度でプレート。

3日目（3〜4時間）：レンチウイルスで細胞を感染させる。生まれたばかりの子犬の別のセットから皮膚を除去し、4℃で一晩ディスパーゼに残す。

4日目（6-8時間）：皮膚からの初代細胞を分離し、数えて、氷の上に残す。トリプシン処理し、遠心分離によりレンチウイルスに感染した細胞を回収し、カウントし、移植あたりのPBSを50から100μLに7から10×10 ⁶真皮細胞及びケラチノサイトを兼ね備えています。マウスの創傷床を作成し、チャンバーを取り付け、床に傷を細胞混合物を適用します。

代替手順のアウトライン

代替手順のアウトラインは、4日から3までの手順を短縮することができます。

1. 1時間（予定時刻5から7時間）37℃でディスパーゼでマウスの皮を処理することにより、1日目​​と2日目を兼ね備えています。
2. 2時間めっきセル（推定時間5月7日時間）後にレンチウイルスで細胞を感染させることにより、2日目と3日目を兼ね備えています。

Representative Results

図1に我々は、3週齢回生毛移植では、平滑化（SMO）、重要Shhのシグナル伝達成分の経皮特有のレンチウイルスshRNAノックダウンの結果を示す。単独でレンチウイルスベクターを用いて、制御グラフトは堅牢な髪の成長（ 図1A）を示しています 。髪の成長の損失Smoの結果とは対照的に、皮特有のノックダウン（ 図1B）。ヘマトキシリン·エオシン染色は、対照群と実験条件における毛包の段階（ 図1C、D）を示しています。同様の治療から髪の成長の表現型は、レンチウイルスベクター単独感染陽性コントロールを含む、実験間で可変することができます。したがって陽性対照の移植は常に移植片の30％が瘢痕化や移植片の不完全な添付ファイルの結果として失敗することがありますように、基準として全ての実験に含まれるべきである。再1因子のcDNAを過剰発現しているような、2つの因子間の相互作用をテストする場合は、別の要因のSCUEのshRNAによるノックダウン、1つは常に単独グラフトマニフェストにノックダウン、各実験における機能喪失型の結果を含める必要があります。これは、特定の遺伝子が、毛包の再生経路を乱す方法と、2つの遺伝子がどのように相互作用するかを決定するために必要な範囲を提供します。

チャンバー（ 図2A）の除去は慎重に行わなければなりません。新たに形成されたグラフトは鈍い面（ 図2B）とわずかに不透明でなければならない。移植は、移植片が創傷床に接続されたままで確認することが重要ですので、そっと片側を持ち上げると、チャンバに固執することがあります。グラフトは3日後にはかなり安定していて、ドレッシングを取り外すときに少し難しさを提示しなければならない。堅牢な髪の成長は、3週間後（ 図2C）後に観察されるべきである。 MDCSまたはKCSのどちらかを省略すると、任意の毛（ 図^2D）11なしで回復した創傷部位になります。のいずれかで、細胞死や細胞の喪失図1Bに示すように、細胞の種類も真皮Smoのノックダウンの減少毛髪再生とは対照的に、無毛をもたらす。

成功したアッセイを確保するためには、移植する前に、適切な過剰発現またはノックダウン効率が90％以上の細胞のウイルス感染を達成するために重要です。移植手順の時間的な制約のために、我々は移植実験を開始する前に、トラブルシュートはウイルス感染効率を推奨し、常に損失または利得の発現を確認するための手順を移植当日に細胞の小さな部分を保存します。レンチウイルス力価は、構築物に使用され、90〜100％の効率を達成するために、感染する前に決定されるべきであるに応じて異なります。我々は、レンチウイルスベクターからGFPを共発現させ、ウイルス感染効率を監視する。我々は日常的に定量PCRおよび/またはウェスタンブロットを行うノックダウンまたは過剰発現の程度を決定する。ラベルを付けるために蛍光タグでデュアル発現ベクターを利用したウイルス感染した細胞シグナルと成熟した移植片で私たちの構築物を発現する細胞の数のperduranceを報告するための方法を提供します。我々は、SMOのshRNAとの組み合わせでレンチウイルスベクターpSicoR-CMV-GFPを¹⁰からCMVプロモーターによって駆動されるGFPを使用しています。 図3では、我々はGFPを代表する毛包の毛乳頭にlentivirally発現されている3週齢皮膚固有の移植を示す。

図1。毛包の成長の組織学的分析（A）空のレンチウイルスベクターおよび未処理ケラチノサイトに感染して皮膚細胞と制御毛髪再生グラフトの表示（B）平滑ノックダウンは、毛包の損失未処理ケラチノサイトの結果と組み合わせて真皮の細胞にレンチウイルスshRNAを用いた。 （C）はヘマトキシリン·エオシン染色は、成長期毛fを示していますコントロール移植片におけるolliclesは真皮に分け拡張し、（D）は平滑ノックダウン毛包がいじけたままで、大部分は不在。すべての画像は、3週間後に移植されています。スケールバーは100μmを表します。

図2。初代細胞を移植。縫合チャンバハウジングプライマリー真皮細胞とケラチノサイトとの（）nu / nuマウスは、（B）室の除去は、文字に鈍いと不透明で、新たに形成されたスキンを公開しています。野生を使用して移植に（C）が十分に成長した毛移植後3週目で一次真皮細胞とケラチノサイトを入力します（D）はケラチノサイトせず、一次皮膚細胞を添加すると、3週間後に無毛につながる。同様の結果は、真皮細胞のない一次ケラチノサイトを加えて見られている。

図3。 3週齢の再生された移植片から毛乳頭の乳頭におけるGFP発現のメンテナンス。共焦点画像。 GFPは、レンチウイルスベクターから真皮の細胞集団に発現し、真皮乳頭（緑）で検出された。バーシカン（赤）が毛乳頭と核はヘキスト（青）を持つラベルであった境界が設定されます。 （注）GFPは真皮細胞ではなく、周囲のケラチノサイトに特異的に発現されています。スケールバーは20μmを表す。

Discussion

髪の再構成アッセイは、de novoの毛包形成のメカニズムを調べるためのユニークな臓器再生のモデルを提供します。ここでは、毛包形成における遺伝子の機能を決定するために有用で修正されたチャンバー髪アッセイを説明します。我々のアッセイは、我々はどちらかの真皮または表皮の細胞型において遺伝子の過剰発現またはノックダウンを達成するためのレンチウイルス発現技術を導入するために変更された報告室ヘア再構成アッセイ^5、6,11、に基づいています。我々のアッセイは、組織特異的遺伝子ノックアウトを生成するために迅速な代替手段を提供します。このアッセイは、私たちは移植コレクションにレンチウイルスで初代細胞を感染から、わずか3週間で毛包形成における遺伝子機能を発揮することができます。我々のアッセイが1つの細胞型¹²にレンチウイルスによって組み合わせのshRNA / cDNAの配信を使用して遺伝的相互作用に対処するために拡張することができるだけでなく、真皮と表皮細胞の代表値との間のシグナリングの検査を可能にするES。

微妙な欠陥が観察しにくいですしながら私たちの髪アッセイは最高の、毛包の再生に強いゲインまたは機能喪失表現型を検出するのに適しています。我々は正常に私たちの毛髪再生アッセイ^1,12を使用^していくつかの遺伝子の真皮の特定の遺伝子の機能を明らかにした。 GFPマーカーに基づいたshRNAの^10を発現^するレンチウイルスベクターからの共発現は、ドナーの皮膚細胞を発現shRNAが再生された毛の移植に固執していることを実証した。 GFP陽性細胞は、再生毛包の毛乳頭（DP）（ 図3）で存在していた。細胞はGFPのさまざまなレベルを表現したのであるDP細胞はおそらく遺伝子ノックダウンの異なるレベルから成っていた、このように観察された毛包の表現型はnullに遺伝わい小体型の範囲であった。

このアッセイのための1つの改善はgraftin前に高shRNAを発現する細胞のための迅速かつ効率的な選択を確立することであろうグラム強いGFP発現細胞を精製するためにFACSを使用するなど。代替案は、このアッセイ⁹に変異または条件付きノックアウト細胞を置き換えることです。一次皮膚細胞は継代培養された後DPの効力が徐々に失われるので、一方に、DP細胞機能を維持することができる培養システムは非常に便利です。潜在的な培養システムは、人工ニッチまたは集約文化^2,7,8,13由来生体材料の使用が含まれる。もう一つの改善点は、これは皮膚固有の損失またはで新鮮ケラチノサイト生成する仔マウスの第2のセット（ステップ7）の使用量を削減するように高い細胞回収率を持つ信頼性の高い表皮細胞凍結法の利得のを生成することになります機能研究。

髪の成長がやや少ない同期化され、卵胞の向きがよりランダムですが、このチャンバー髪アッセイは、毛包の密度と通常のマウスの皮膚と同様の品質を生成します。毛髪再生遺伝アッセイ含めたいくつかの制限電子レンチウイルスと細胞数の大量の要件、そして、それはそのようなパッチやフラップアッセイ^3,4,14など髪の再構成アッセイの他の形態に比べて外科的方法の面で非常に集中的な労働である。しかし、髪の成長を検出するために毛包とタイムラインの品質は他のアッセイ⁴よりも優れています。私たちのターゲットと毛髪再生アッセイは、既存の遺伝的モデルへの迅速かつ便利なコンパニオンを提供しています。

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
PBS	Invitrogen	14190-144
HBSS	Invitrogen	14170-122
DMEM	Invitrogen	11995-065
0.25% Trypsin-EDTA	Invitrogen	25200-056
Cnt-07	Cell N Tec	CnT-07
AminoMAX-C100	Invitrogen	17001-074
AminoMAX-C100 Supplement	Invitrogen	12556-015
FBS	Invitrogen	26140-079
Penicillin/Streptomycin	Invitrogen	15140-122
Fungizone	Invitrogen	15290-018
Gentamycin	Invitrogen	15710-064
Dispase	Roche	4942078001
Collagenase, Type 1	Sigma	C-0130
Polybrene	Sigma	107689-10G
Tissue culture dish	Fisher Scientific	08-772E
Dissecting Scissors	Fisher Scientific	11-999
Forceps	Fisher Scientific	10-275	curved
Scalpal	Medex Supply	GRF-2975#10	Size no. 10
70 μm cell stainer	VWR	21008-952
15 ml conical centrifuge tube	Fisher Scientific	14-959-49D
Alcohol swabs	Fisher Scientific	1368063
23 gauge needle	Fisher Scientific	14-821-13F
Eye lubricant	CVS	8883660
Providone-lodine swabs	Fisher Scientific	NC0116841
Silicon Chambers	Renner GmbH	F2U, 30268
Sutures	Acuderm	SUP3524
Flexible bandage	Fisher Scientific	22-363-100
Non-adherent dressing	TELFA	1050
Materials
Wash solution PBS 500 μg/ml Penicillin/Streptomycin 12.5 μg/ml Fungizone 100 μg/ml Gentamycin Dispase solution HBSS 2.5 mg/ml final Dispase 100 μg/ml Gentamycin Neutralizing media HBSS 15% (Collagenase solution DMEM 0.25% (w/v) Collagenase, Type I 100 μg/ml Penicillin/Streptomycin 2.5 μg/ml Fungizone 50 μg/ml Gentamycin v/v) FBS Polybrene solution HBSS 8 μg/mL (w/v) Polybrene