Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Medicine

Bireysel Renal Hücreli Kanserlerde içinde Protein Ekspresyonu Varyasyon kaynakları için Ters Faz Protein Diziler (RPPA) ve Kullanımı

Published: January 22, 2013 doi: 10.3791/50221

Summary

RPPA floresan etiketli antikorlar kullanılarak, aynı anda sorgulanmak üzere nitroselüloz slaytlar basılı örnekleri yüzlerce, protein ekspresyonu sağlar. Bu teknik, şeffaf hücreli böbrek karsinomu olan ilaç tedavisi heterojenliğin etkisini araştırmak için uygulanmıştır.

Abstract

Bulunduğu metastatik şeffaf hücreli renal hücreli kanser için hiçbir iyileştirici tedavi, hastalığın yaygın varyantı vardır. Bu tedaviye direnç önemli bir faktör hastalığı 1 moleküler karmaşıklığı olduğu düşünülmektedir. Gibi tirozin kinaz inhibitörü (TKİ)-sunitinib olarak Hedefli tedavi kullanılmıştır, ancak hastaların sadece% 40 1 yıl 2 içinde relaps bu hastaların büyük çoğunluğu ile cevap verecektir. Renal hücreli kanser hastalarında içsel ve kazanılmış direnç gibi soru 3 derece alakalı olduğu gibi.

Etkili, kişiselleştirilmiş tedavilerin geliştirilmesi nihai hedefi ile, TKI direnç incelemek için, hedeflenmiş tedavinin belirli bir süre sonra sıralı dokusu, kronik myeloid lösemi 4 başarılı olduğunu kanıtlamıştı bir yaklaşım gereklidir. Ancak renal hücreli karsinom, böyle bir stratejinin uygulama b yüksek düzeyde nedeniyle karmaşıklaşırrenal hücre karsinomu 5,6 yanı sıra diğer katı tümörler içinde bir 7 özelliği oth arası ve intratumoral heterojen. Transkriptomik ve genetik farklılıklar nedeniyle Intertumoral heterojenite iyi bile benzer sunum, evre ve tümör derecesi olan hastalarda kurulmuştur. Buna ek olarak daha büyük moleküler heterojenite temsil etmek olasıdır BİK büyük morfolojik (intratümöral) heterojenite, var olduğu açıktır. Kombine morfolojik analiz ve Fuhrman derecelendirme ile BİK tümörlerin detaylı haritalama ve kategorizasyon proteomik analiz için temsili alanların seçimini sağlar.

BİK 8 Protein temelli analiz nedeniyle patoloji laboratuvarlarında yaygın durumuna cazip olmakla birlikte, uygulama spesifik antikorlar 9 sınırlı durumu nedeniyle sorunlu olabilir. Ters Faz Protein Dizilerin dot blot doğa (RPPA), antikor zorunluluktur Borçlar be ön doğrulanmış; kullanılan antikorların böyle sıkı kalite kontrol olarak büyük önem taşımaktadır. Bu kısıtlamaya rağmen dot blot biçimi tek bir nitroselüloz slayda örnekleri yüzlerce baskı sağlayan, tahlil minyatür izin vermiyor. Baskılı slaytlar sonra çoğullama sağlayan, hedefe özgü primer antikor ve fluoresan etiketli ikincil antikoru kullanılarak Batı analizi ile benzer bir şekilde analiz edilebilir. Slayttaki tüm örneklerin genelinde Diferansiyel protein ekspresyonu sonra bir daha maliyet-etkin ve yüksek-throughput şekilde floresans göreli düzeyi karşılaştırılarak aynı anda analiz edilebilir.

Protocol

1. Morfolojik ve Moleküler Tümör heterojenliği tanımlanması

  1. Tümörler -80 ° C derin dondurucu kaldırıldı ve kuru buz üzerinde tutulmalıdır.
  2. Yaklaşık 1 cm 3 bölüme tümörleri bölün. Her bir tümör, birbirlerine göre göreceli bölüm ve bir benzersiz ismi ile etiket ilk konumuna Harita. Mağaza örnekleri -80 bireysel kriyotüplerin ° C Kullanıma hazır oluncaya dek.
  3. Coat örnekleri OCT ve -22 ° C'de kriyostat kesilmiş
  4. Örnekleri Hematoksilen-Eozin counterstaining yöntemi kullanılarak boyandı.
  5. Dondurulmuş kesitlerin Mikroskopi analizi onlar ccRCC doğa, canlı tümör ve dereceleme (frozen Fuhrman sınıflarda 1 ila 4 ayırt etmek zor düşük dereceli, yüksek dereceli veya karışık yüksek / düşük dereceli,) için vardır sağlamak. Şekil 1 a ve b (H & E boyama yüksek, düşük ve karma sınıf).
  6. Protein ekstraksiyonu için her tümör içindeki her morfolojik farklı bölgeden 4 örnekleri kadar seçin.

2. Tümör Örneklerinde Protein Ekstraksiyonu

  1. OCT tümör örneği kesin.
  2. Lizis tamponu, 990 ul ile 2 ml'lik tüp içine doku il 50-75 mg [50 mM Tris-HCl (pH 7.5), 5 mM EGTA (pH 8.5), 150 mM NaCl] aprotinin (Sigma A6279) (10 mg ile desteklenir / ml), fosfataz inhibitörü kokteyl 2 (Sigma P5716), fosfataz inhibitörü kokteyl 3 (Sigma P0044) ve bir proteaz inhibitörü kokteyl (Roche, 11836153001).
  3. Her bir tüp için tek bir 5 mm çelik top ekleyin ve iki kez her 5 dk süre sonra, bir TissueLyser kullanılarak homojenizasyon seviyesini kontrol 5 dk için 50Hz'de homojenize.
  4. Arkasında çelik topu bırakarak pipet kullanarak yeni 2 ml tüp homojenize örnek aktarın.
  5. 4 ° C'de 30 dakika boyunca 13,000 x g'de santrifüj önce her bir numune için Triton X-100, 10 ul ekle
  6. Taze mikrosantrifüj tüpleri için süpernatan aktarın.
  7. BCA assay (Şekil 2) kullanarak protein konsantrasyonu tayin edilir.
  8. 1 mg / ml protein konsantrasyonu normalize edilir.

3. Antikor Doğrulama

  1. Western blot için protein örneklerinin (uygun hücre hatları veya doku çıkarılır) hazırlayın ve% 10'luk SDS-PAGE jel üzerinde çalıştırın.
  2. 4 gecede nitroselüloz membran üzerinde örnekleri aktarın ° C.
  3. Oda sıcaklığında 1 saat boyunca Li-Cor Odyssey engelleme tamponu (PBS içerisinde seyreltilmiş, 50:50) içinde membran engelleme.
  4. Üreticileri de Li-Cor Odyssey Engelleme Tampon birincil antikorlar (PBS 50:50 seyreltilmiş) seyreltin seyreltme 1,000 tipik 1 önerilir.
  5. 4 ° C'de gece boyunca birincil antikor olarak zar inkübe
  6. % 0.1 PBS-Tween20 (; 1 ml Tween20 / 1L PBS PBS-T) Makyaj.
  7. 5 dakika (x3) ile, oda sıcaklığında PBS-T içinde zar yıkayın.
  8. Odyssey Engelleme Tamponu (PBS 50:50 seyreltilmiş) 0.01% 1:10,000 dilusyondaki SDS (1.5 μl/15 ml) sekonder antikor floresan etiketli seyreltin.
  9. Ikincil membran inkübehafif sallama ile 45 dakika için oda sıcaklığında antikorları - bu şekilde sonunda taranmıştır zamana kadar, ışıktan korumak için zar önemlidir.
  10. Karanlıkta zar tutma 5 dk (x3) ile, oda sıcaklığında PBS-T içinde zar yıkayın.
  11. Yine karanlıkta zar tutma kalıntı Tween20 kaldırmak için 5 dak (x3), oda sıcaklığında PBS içinde zar yıkayın.
  12. Karanlıkta filtre kağıt parçası düz membran yatın ve kurumaya bırakın - kuru membran sinyal geliştirmek ve arka plan azaltmak ancak sıyırma ve yeniden tarama için işe yaramaz hale gelebilir sağlar.
  13. Licor Odyssey tarayıcının membran tarayın. Bu tarandıktan gibi zamana kadar karanlıkta membran tutun.
  14. Sadece doğru moleküler ağırlık tek bir bant oluşturmak baskın antikorları seçmek. Şekil 3 RPPA ile kullanım için kabul edilebilir ve kabul edilemez antikorların örnekleri gösterilmektedir.

4. RPPA Printing

  1. Protein lizatları bir MicroGrid II robotik gözcü kullanarak nitroselüloz kaplı cam slaytlar (Fastslides-whatman) üzerine tespit edildi. Kullanılan slaytlar örnekleri tespit edildiği üzerine 2 pedleri içeriyordu. Her ped Bu durumda 100 örnekleri, özdeş örnekleri ile fark edildi. Diğer kullanılabilir biçimler 1, 8 ve 16 ped slaytları içerir. Pedleri sayısı arttıkça daha küçük her biri üzerine tespit edilebilir numune sayısıdır.
  2. Beş 2 kat dilüsyonlarının bir dizi her örnekten yapılmış ve her sonra (örnek başına 15 noktalar toplam sonuçlanan) üç nüsha olarak görüldü.

5. RPPA Protein Algılama

  1. Aşırı Licor Engelleme Tampon Islak slaytlar (PBS 50:50 seyreltilmiş). Bir sallanan platform üzerinde 1 saat oda sıcaklığında inkübe edin.
  2. Istenen konsantrasyonlarda Licor Engelleme Tamponu (PBS 50:50 seyreltilmiş) primer antikor 800 ul hazırlayın ve buz üzerinde tutmak.
  3. Ya (i) tek bir kare Chip Klip slaytlar monteveya (ii) 'FastFrame' dört defne slayt tutucu yüzden sıkı bir mühür slayt ve inkübasyon odası arasında oluşan olduğunu.
  4. Kuyulardan rezidüel tamponu çıkarın ve ilgili kuyulara 600 ul primer antikor ekleyin.
  5. 4 gecede platformu sallanan bir kapalı ıslak kutu ve inkübe içine slayt ve odasına yerleştirin ° C
  6. % 0.1 PBS-Tween20 (; 100 ul Tween 20/100 ml PBS PBS-T) Makyaj.
  7. Soğuk oda slaytları çıkarın ve dikkatle her kuyudan primer antikorlar çıkarın.
  8. PBS-T 600 ul ekleyin ve 5 dakika (X3) için RT platformu sallanan ilgili slaytlar yıkayın.
  9. Odyssey Engelleme Tamponu (PBS 50:50 seyreltilmiş) 0.01% ilk etapta 1:2,000 seyreltme (1 ul / 2 ml) SDS içinde seyreltilmesi ile floresan etiketli sekonder antikor hazırlayın.
  10. Kuyulardan tamponu çıkarın ve ilgili kuyulara 600 ul floresan etiketli sekonder antikor ekleyin. Hafif sallama ile 45 dakika için oda sıcaklığında sekonder antikor inkübe - buNihayet tarandı zamana kadar, ışıktan korumak için zar önemlidir.
  11. Oda sıcaklığında 600 ul PBS-T iyi ve kısaca yıkama (x3) ikincil antikorlar çıkarın. Taşıyıcı slayt çıkarın ve uygun bir kaba aktarın ve karanlıkta membran tutarak, 15 dakika boyunca aşırı PBS-T yıkayın.
  12. Yine karanlıkta zar tutarak, kalıntı Tween-20 çıkarmak için PBS-T ile 15 dakika süreyle oda sıcaklığında PBS ile yıkayın daha fazla zar çıkarın.
  13. 10 dakika için 50 ° C fırın içinde Fastslide kurutun ve sonra Li-Cor Odyssey tarayıcı üzerinde tarama. Tarandiktan kadar karanlıkta slayt tutun.
  14. Sekonder antikor / kullanılan antikorlara bağlı 680 nm ve / veya 800 nm'de slayt tarayın. İki renk algılama için daima çapraz reaksiyon en aza indirmek için yüksek çapraz adsorbe sekonder antikorlar kullanır. Primer ve sekonder antikor dikkatli seçilmesi iki renk algılama için gereklidir. Birincil öneme seçimidiriki primer antikorları için farklı konak türler (örneğin tavşan ve fare). Bu kolayca ayırt emisyon spektrumları ile boya etiketli anti-tavşan ve anti-fare sekonder antikor tarafından ayrımcılık sağlar.
  15. Resim dosyaları. Tiff dosyası olarak kaydedilir. Şekil 4 (taranan dosyaların görüntü).

6. Veri Analizi

  1. MicroVigene Yazılım (VigeneTech, Carlisle, MA, ABD) başlatın.
  2. Açın. RPPA slayt tarama içeren tiff görüntü dosyası.
  3. RPPA slayt görüntü üzerinde bindirmek için bir kılavuz olacak bir önceden tanımlanmış şablon dosyası seçin.
  4. Click Izgara getirmek için, faiz getirisi (ROI) düğmesinin Bölgeleri tanımlayın.
  5. RPPA noktalar üzerinde Izgara konumlandırın. Şekil 6a (resmin üzerine ızgara görüntüsü).
  6. Tüm ROI vurgulamak için Tümünü Seç düğmesini tıklatın.
  7. Tümünü Bul'u tıklatın. MicroVigene autom olacakatically ROI bulmak noktalar bulmak, plan çıkarma, herhangi bir toz kaldırmak ve noktalar ölçmek.
  8. RPPA Slayttaki tüm örnekler için sonuçlar getirmek için Görünüm Seyreltme Eğri düğmesini tıklatın.
  9. Seyreltme Veri Kaydet'i tıklatın.
  10. Her numune 5 seyreltme noktalar üzerinde yazdırılır olarak üç nüsha halinde, her analiz için 15 puan, hata riskini azaltır ve eğri uydurma kalitesini artırır vardır. MicroVigene antijen-antikor bağlanma kinetik bir Sigmoid eğrisi üretmek için tüm noktalar içeren bir 4-parametreli lojistik-log modeli "Supercurve" algoritması (Şekil 6b), üretir. Varsayım aynı antikor-antijen bağlanma kinetik ortak bir yanıt eğrisi sığdırmak için bir dizi tüm noktalar alarak böylece, hatta farklı örneklerdeki, her numune noktada gerçekleşiyor eğri uydurma 10,11 güvenini artırabilir olduğunu
    Y = a + ((ba) / (1 + e (c * d-ln (x)))
    x dilutio olduğuK faktörü ve Y sinyal yoğunluğudur.
    Numuneler nispeten analizimize supercurve üzerine bu eşleme sonra x değerlerinin orta noktasından y değeri karşılık y0 değeri kullanılarak analiz edilebilir.
  11. Şekil 7'deki gibi Microsoft Excel ve arsa y0 verileri aktarın.
  12. İntratümöral protein varyans bir ANOVA çerçevede işlenmemiş ve işlenmiş hastalar için ayrı ayrı hesaplanmıştır. Tüm analiz proteinlerden gelen verilerin birleştirilmesi Varyans dağıtımları Mann-Whitney testi (MWT) ile karşılaştırıldı. Yanlış keşif hızı (FDR) düzeltme 12 uygulandı; bireysel proteinlerin İntratümöral varyansları normallik ve homoscedasticity varsayımları Lillefours ve Fligner testleri kullanılarak sırasıyla, ölçme-değerlendirmeye düzenlenen bir F-testi ile karşılaştırıldı. Işlenmemiş ve işlenmiş hasta numuneleri arasındaki Diferansiyel protein ekspresyonu student t-testi kullanılarak her protein için test nerede normallik ve homoscedasticity varsayımlar aksi MWT yapıldı karşılandı; FDR kombine t-testi ve MWT değerler üzerinde 12 uygulandı. Proteinler için protein ekspresyonu ve varyans Pearson korelasyon Önemi standart bir yaklaşım kullanılarak hesaplanmıştır [R referans] ve FDR 12 uygulanır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Taranan RPPA kayar bir örnek 680 ile gösterilen kanallar 800 nm her ikisi de, Şekil 4 (i) 'de görülebilir. Dalga boyu, Şekil 4 (ii) ile görüntü ayırma analiz edilmesi için RPPA kayar ve Şekil 4, (iii) tespit bireysel protein ekspresyonu üzerindeki her bir yastık sağlar. Şekil 4'te görüldüğü gibi (iii) örnek üzerinde tek proteinlerin ekspresyonu gelsolin çok daha düşük bir protein ifade vardır cMYC göre slaydı üzerinde ifade yüksek bir seviyesine sahip olan, ayrı, ama yine de evrensel olarak tüm numuneler üzerinde ifade test. Buna karşılık CD10 belirli örnekleri çok az veya hiç ifade saptanabilir sahip olan diğer örnekleri ifade rağmen yüksek düzeyde bir vererek, değişken ifade verdi. Sonunda pJAK2 plan seviyesinden herhangi bir saptanabilir protein ekspresyonu üretmek için başarısız oldu. Bir kalite kontrolü açısından bakıldığında pJAK2 sonuçları olanlar ise kabul edilemez olacaktırCD10 slayt üzerinde örnekleri, çok sayıda tespit protein ekspresyon seviyelerine bağlı olarak kabul edilebilir olacaktır. Şekil 5, sekonder antikor ve bir başka türden primer antikorlar ile çapraz reaktivite eksikliği çekmektedir. Tek bir slayt üzerinde örnekleri hesaplamak için kullanılan Supercurve bir örneği Şekil 6'da görülebilir. Bu eğriler, Şekil 7 (c) de olduğu gibi göreceli protein bazlı ifade verileri üretmek için kullanılır. Şekil 7a RPPA Tedavi edilmiş ve edilmemiş numuneler arasındaki farklar tespit edebilir ne öne üç RPPA slaytlar üzerinde temsili bir protein ekspresyon seviyelerini gösterir. Şekil 7b odaklanır Şekil 7a, 7c, örneklemleri ön olduğu tespit edilen daha yüksek bir protein ekspresyonu ile muamele göre gruplandırılmıştır ardından diferansiyel protein ekspresyon düzeyleri üzerindeki. Şekil yüksek intratümöral odaklanırörnekler tedavi sonrası numune içinde bulunan daha yüksek olan varyans ile muamele göre gruplandırılmış edildikten sonra tedavi sonrası numune için varyans.

Şekil 1a
Ilişkili H & dondurulmuş kesitlerin E boyama ile ön tedavinin doku Şekil 1a. Doku örneği haritası

Şekil 1b
Ilişkili H & frozen E boyama ile tedavi sonrası doku Şekil 1b. Doku örneği haritası

Şekil 2,
Şekil 2. Protein tayini için Bradford tahlil için ayarlama, including kalibrasyon eğrisi, sonuçlar tablo ve 96 plaka biçiminde. büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın .

Şekil 3
Şekil 3,. RPPA ile kullanım için uygun ve uygunsuz primer antikor örnekleri

Şekil 4,
Şekil 4. RPPA tarama sürecinin akış şeması. büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın .

Şekil 5. Ikincil antikorlar ve başka türlerin primer antikorlar arasındaki çapraz reaktivite eksikliği örneği. 680 nm ve 800 nm dalga boyu yanlış doğru dalga boyunda taranan sekonder antikor kullanarak protein ifade Sol görüntü algılama.

Şekil 6a
Şekil 6a. RPPA slayt Spotlar üzerinde Izgara takılması. büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın .

Şekil 6b
Şekil 6b. RPPA Slayttaki tüm örneklerin karşılaştırmalı analizi için kullanılan SuperCurve örneği. Yeşil noktalar "kabul temsilmümkün analiz yazılımı önceden tanımlanmış sınırlar esas aşırılıkların "" lekeleri ve kırmızı temsil ".

Şekil 6c
Şekil 6c. Lekeli numunelerin tekrarlanabilirliği örneği, gösterilen örnek boş ek olarak, tek bir numune 5 dilüsyonları üç kopya noktalar içerir.

7a Şekil
Şekil 7a. Tipik RPPA Bir protein için verileri (MLH1), çoklu slayt boyunca karşılaştırılmıştır. Her bir numune, bir tümör alt bölgeye karşılık gelir.

Şekil 7b
Şekil 7b. DİFERANSİYELTedavi öncesi ve sonrası örnekleri MLH1 için al protein ekspresyonu.

Şekil 7c
Tedavi öncesi ve sonrası numuneler arasındaki MLH1 ifade 7c. Varyans Şekil.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Burada sunulan RPPA yöntemi protein analizleri yaygın olarak kullanılan ancak nispeten düşük verim western blot için yüksek kapasiteli bir alternatif temsil eder. Yöntem örnekleri yüzlerce analiz edilmiş ve aynı anda hücre hatları ve doku örnekleri geniş bir yelpazede yer alan önemli proteinlerinin doğrudan karşılaştırma için izin karşılaştırıldığında yarı kantitatif olmasına imkan verir. Farklı antikor türleri ile Multiplexing daha çok antikor aynı anda kullanılmasına izin tekniğin gücünü artırır. Burada sunulan örnek tümör heterojenite ve heterojen hedeflenmiş tedavinin etkisi çalışmada RPPA yeteneğini vurgular.

Bir teknik olarak RPPA antikor seçimi çok önemlidir olan kritik bir dizi adım sahiptir. Tekniği antikor özgüllük dot blot doğası nedeniyle analizi sırasında tespit edilemiyorsa ve kullanmadan önce tespit olmalıdır. Mevcut çalışmada 83 antikorlar geçerli olduğunusadece 58 (~% 30 oranında başarısız) geçtiği batı blot üzerinde ated. RPPA (% 95 başarı oranı) ile ilgili analizler. Diğer kritik adımlar RPPA üzerine örnekler nokta bir konsantrasyon seçimi slaytlar yanı sıra lekelenme tekdüzelik dahil ettiğimizde bu 58, 55 antikorlar kabul edilebilir sonuçlar vermiştir. Daha yüksek bir konsantrasyon daha fazla hassas sonuçlar verecektir, fakat mevcut olması nedeniyle yetersiz protein ile tespit edilen daha az numune ile sonuçlanabilir. RPPA tespit için yeterli protein sağlayacaktır doku minimum miktarı bağımlı bir tümör olduğunu. RCC için 50 mg arasında en az yine de 1 mg / ml 'lik bir konsantrasyon lekelenme muhafaza ederken, bir tümörün, birden çok alt bölüm analiz izin yararlanılmıştır. Analizi bu slayt lekelenme sonra toplam protein antikor kullanılarak doğrulanmış olmasına rağmen tüm örnekler, tek bir konsantrasyonda fark olduğunu varsayar gibi lekelenme tarzında tekdüzeliği de anahtarıdır. En son aşama örnekleri sayılar çok yüksek olduğu zaman kullanılmak üzere bir kontrol numunesinin kullanımıdırBurada örneklerde olduğu gibi tek bir slayt üzerinde lekeli olamaz. Burada kullanılan örnekte, bir böbrek hücre çizgisi, hem de kontrol grubu olarak bir HUVEC hücre çizgisi protein dahil edilmiştir. Hücre hattı proteinin kullanılması proteinlerin, büyük miktarlarda ekstre edilmiş ve çoklu slaytlar için kullanılmasına olanak tanır. Kontrol inkübasyonlar lekelenme veya antikor nedeniyle herhangi bir içsel hata telafi ve farklı günlerde kullanılan farklı kullanıcılar ve slaytlar nedeniyle sapmaları telafi eder.

Bir teknik olarak RPPA kullanılmak üzere örneklerin sayısı ile ilgili olarak esnektir. Örnekleri burada her slaytta 2 yastıkları ile, üç kaydıraklı yayıldı 45 tümör örneklerinden ~ 300 numuneleri kullanılmıştır sundu. Alternatif akım formatı 1 pad ile tek bir slayt üzerinde lekeli olabilirdi. Böyle biçimi deneylerin bireysel ihtiyaçlarına göre uyarlanabilir gibi, bir slayt daha antikorlar daha yastıkları aynı anda kullanılabilir, ancak sam sayısını sınırlamak olabilirnekleri.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Çıkar çatışması ilan etti.

Acknowledgments

ETM37 ve Birleşik Krallık Kanser Araştırma Deneysel Kanser Tıp Merkezi tarafından desteklenen: Baş Bilim Ofisi, hibe sayısına göre finanse edilmektedir Yukarıdaki yazarların FCO, DF, JN, DJH ve GDS çalışması bahsettiniz. AL çalışmaları Edinburgh Robertson Güven, bakım ve kanser ve Tıbbi Araştırma Konseyi tedavi için Melville Trust Cerrahlar Kraliyet Koleji tarafından finanse edilmektedir. IO Marie Curie Eylemleri ve İngiltere'de Tıbbi Araştırma Konseyi tarafından cofunded Edinburgh İskoç Hükümeti Bursu Royal Society tarafından desteklenmektedir. Yazarlar bu çalışmada tartışılan konulardan bazıları üzerinde yararlı tartışmalar için SCOTRRCC ortak başvuru ve işbirlikçileri teşekkür etmek istiyorum.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
aprotinin Sigma A6279
phosphatase inhibitor cocktail 2 Sigma P5726
phosphatase inhibitor cocktail 3 Sigma P0044
protease inhibitor cocktail Roche 11836153001
Triton X-100 Triton-X T8787
Li-Cor Odyssey Blocking Buffer Li-Cor 927-40000
TissueLyser Qiagen 85600
MicroGrid II robotic spotter Biorobotics
FastFrame' four bay slide holder Whatman 10486001
FAST Slide - 2-Pad Whatman 10485317
IRDye 680LT Goat anti-Mouse IgG Licor 926-68020
IRDye 800CW Goat anti-Rabbit IgG Licor 926-32211

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Stewart, G. D., O'Mahony, F. C., Powles, T., Riddick, A. C., Harrison, D. J., et al. What can molecular pathology contribute to the management of renal cell carcinoma. Nat. Rev. Urol. 8, 255-265 (2011).
  2. Rini, B. I., Michaelson, M. D., Rosenberg, J. E., Bukowski, R. M., Sosman, J. A., et al. Antitumor activity and biomarker analysis of sunitinib in patients with bevacizumab-refractory metastatic renal cell carcinoma. J. Clin. Oncol. 26, 3743-3748 (2008).
  3. Swanton, C., Larkin, J. M., Gerlinger, M., Eklund, A. C., Howell, M., et al. Predictive biomarker discovery through the parallel integration of clinical trial and functional genomics datasets. Genome Med. 2, 52 (2010).
  4. Cortes, J., Jabbour, E., Kantarjian, H., Yin, C. C., Shan, J., et al. Dynamics of BCR-ABL kinase domain mutations in chronic myeloid leukemia after sequential treatment with multiple tyrosine kinase inhibitors. Blood. 110, 4005-4011 (2007).
  5. Gerlinger, M., Rowan, A. J., Horswell, S., Larkin, J., Endesfelder, D., et al. Intratumor heterogeneity and branched evolution revealed by multiregion sequencing. N. Engl. J. Med. 366, 883-892 (2012).
  6. Fisher, R., Larkin, J., Swanton, C. Inter and intratumour heterogeneity: a barrier to individualized medical therapy in renal cell carcinoma. Front. Oncol. 2, 49 (2012).
  7. Yachida, S., Jones, S., Bozic, I., Antal, T., Leary, R., et al. Distant metastasis occurs late during the genetic evolution of pancreatic cancer. Nature. 467, 1114-1117 (2010).
  8. O'Mahony, F. C., Faratian, D., Varley, J., Nanda, J., Theodoulou, M., et al. The use of automated quantitative analysis to evaluate epithelial-to-mesenchymal transition associated proteins in clear cell renal cell carcinoma. PLoS One. 7, e31557 (2012).
  9. Spurrier, B., Ramalingam, S., Nishizuka, S. Reverse-phase protein lysate microarrays for cell signaling analysis. Nat. Protoc. 3, 1796-1808 (2008).
  10. Hu, J., He, X., Baggerly, K. A., Coombes, K. R., Hennessy, B. T., et al. Non-parametric quantification of protein lysate arrays. Bioinformatics. 23, 1986-1994 (2007).
  11. Wang, X., Dong, Y., Jiwani, A. J., Zou, Y., Pastor, J., et al. Improved protein arrays for quantitative systems analysis of the dynamics of signaling pathway interactions. Proteome Sci. 9, 53 (2011).
  12. Benjamini, Y., Hochberg, Y. Controlling the False Discovery Rate: A Practical and Powerful Approach to Multiple Testing. Journal of the Royal Statistical Society Series B (Methodological). 57, 289-300 (1995).

Tags

Kanser Biyolojisi Sayı 71 Biyomühendislik Tıp Biyomedikal Mühendisliği Hücresel Biyoloji Moleküler Biyoloji Genetik Patoloji Onkoloji Proteinler Kanser Erken Teşhis Translasyonel Tıbbi Araştırma RPPA RCC heterojenlik Proteomik Tümör Grade intertumoral tümör metastatik karsinom renal kanser berrak hücreli renal hücreli kanser kanser tahlil
Bireysel Renal Hücreli Kanserlerde içinde Protein Ekspresyonu Varyasyon kaynakları için Ters Faz Protein Diziler (RPPA) ve Kullanımı
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

O'Mahony, F. C., Nanda, J., Laird,More

O'Mahony, F. C., Nanda, J., Laird, A., Mullen, P., Caldwell, H., Overton, I. M., Eory, L., O'Donnell, M., Faratian, D., Powles, T., Harrison, D. J., Stewart, G. D. The Use of Reverse Phase Protein Arrays (RPPA) to Explore Protein Expression Variation within Individual Renal Cell Cancers. J. Vis. Exp. (71), e50221, doi:10.3791/50221 (2013).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter