Summary
Hier sind einige Highlights aus der Oktober 2012 Ausgabe des Journal of Visualized Experiments (Jupiter).
Protocol
L. John R. Foster, Elizabeth Karsten
Bio / Polymer Research Group, University of New South Wales
Die Herstellung einer erfindungsgemäßen, flexiblen Dünnfilm chirurgischen Klebstoff aus FDA zugelassenen Inhaltsstoffen, Chitosan und Indocyaningrün beschrieben. Bonden dieser Klebstoff auf Kollagengewebe durch eine einfache Aktivierung mit einer Low-Power-Infrarotlaser nachgewiesen wird.
Herstellung und Anwendung von Rose Bengal-Chitosan-Films in Laser Tissue Repair
Antonio lauto 1, Marcus Stoodley 2, Matthew Barton 1, John W. Morley 1, David A. Mahns 1, Leonardo Longo 3, Damia Mawad
Die Fäden werden in der Regel erforderlich, um Gewebe während chirurgischer Eingriffe zu reparieren. Jedoch kann ihre Anwendung als problematisch, da sie invasiv sind und kann Gewebe beschädigen. Die Herstellung und Anwendung Methoden einer neuartigen Gewebekleber werden hier berichtet. Diese Klebefolie wird lasersensitiven aktiviert und erfordert nicht die Verwendung von Nähten.
Robart Babona-Pilipos 1, Milos R. Popovic 2, Cindi M. Morshead 3
1Institut für Biomaterialien und Biomedical Engineering, University of Toronto, 2 Lyndhurst Centre, Toronto Rehabilitation Institute, 3 Department of Surgery, University of Toronto
In diesem Protokoll zeigen wir, wie Sie benutzerdefinierte Kammern, die die Anwendung eines Gleichstrom elektrisches Feld an Zeitraffer-Aufnahmen von erwachsenen Gehirn abgeleitete neurale Vorläuferzellen Translokation während Galvanotaxis ermöglichen ermöglichen konstruieren.
Zelle spezifische Analyse von Arabidopsis Blätter mit fluoreszenzaktivierten Zellsortierung
Jesper T. Grønlund 1, Alison Eyres 1, Sanjeev Kumar 1, Vicky Buchanan-Wollaston 1, 2, Miriam L. Gifford 1, 2
1 School of Life Sciences, University of Warwick, 2 Warwick Systems Biology, University of Warwick
AVerfahren zur Herstellung von Arabidopsis Blattprotoplasten, die kompatibel mit der fluoreszenzaktivierten Zellsortierung (FACS) sind, so dass für Studien spezifischer Zellpopulationen. Dieses Verfahren ist kompatibel mit jeder Zeile, die Arabidopsis GFP exprimiert in einer Untergruppe von Zellen.
Visualisierung der bakteriellen Toxin induzierten Reaktionen mit Live Cell Fluoreszenzmikroskopie
Peter A. Keyel 1, Michelle E. Heid 1, Simon C. Watkins 2, Russell D. Salter 1
1 Department of Immunology, University of Pittsburgh School of Medicine, 2 Department of Cell Biology and Physiology, University of Pittsburgh School of Medicine
Methoden zur Reinigung des Cholesterin-Bindung Toxin Streptolysin O von rekombinantem E. coli und Visualisierung von Toxin Bindung an eukaryotischen Zellen leben, sind zu beschreibend. Lokalisierte Abgabe von Toxin induziert eine schnelle und komplexe Veränderungen in Zielzellen enthüllen neue Aspekte des Toxins Biologie.
High Throughput Sequential ELISA zur Validierung von Biomarkern des akuten Graft-Versus-Host Disease
Bryan Fiema *, Andrew C. Harris *, Aurelie Gomez, Praechompoo Pongtornpipat, Kelly Lamiman, Mark T. Vander Lugt, Sophie Paczesny
Pediatric Blood and Marrow Transplant Program, University of Michigan
* Diese Autoren trugen gleichermaßen
Hoher Durchsatz Validierung mehrerer Biomarker-Kandidaten können durch sequentielle ELISA durchgeführt werden, um Einfrieren / Auftauen zu minimieren und die Nutzung von wertvollen Plasmaproben. Hier zeigen wir, wie man nacheinander durchführen ELISAs für sechs verschiedene validierte Plasma-Biomarker 1-3 von Graft-versus-Host-Krankheit (GVHD) 4 auf der gleichen plasma Probe.
Haruki Higashimori 1, Yongjie Yang 1, 2
1 Department of Neuroscience, Tufts University, 2 Neuroscience Program, Tufts Sackler School of Graduate Biomedical Sciences
Diese Studie beschreibt die Verfahren für die Einrichtung einer neuartigen neuronalen Axon und (astro) Glia Co-Kultur-Plattform. Auf diese Co-Kultur-System wird Manipulation direkte Wechselwirkung zwischen einem einzelnen Axon (und einzigen Gliazelle) durchführbar ist, so dass mechanistischen Analyse des gegenseitigen Neuron zu glialen Signalisierung.
Angle-Photoemissionsspektroskopie Bei extrem niedrigen Temperaturen
Sergey V. Borisenko 1, Volodymyr B. Zabolotnyy 1, Alexander A. Kordyuk 1, 2, Danil V. Evtushinsky 1, Timur K. Kim 1, 3, Emanuela Carleschi 4, Bryan P. Doyle 4, Rosalba Fittipaldi 5, Mario Cuoco 5, Antonio Vecchione 5, Helmut Berger 6
1 Institut für Festkörperforschung, IFW-Dresden, 2 Institut für Metallphysik der Nationalen Akademie der Wissenschaften der Ukraine, 3 Diamond Light Source LTD, 4 Department of Physics, University of Johannesburg, 5 CNR-SPIN und Dipartimento di Fisica "ER Caianiello ", Università di Salerno, 6 Institut für Physik komplexer Materie, École Polytechnique Fédérale de Lausanne
Das übergeordnete Ziel dieser Methode ist es, die Niedrig-Energie-elektronischen Struktur von Festkörpern bei extrem niedrigen Temperaturen mit Angle-Photoemission Spectrosc bestimmenopy mit Synchrotronstrahlung.
Herstellung einer mikrofluidischen Vorrichtung für die Kompartimentierung von Neuron Soma und Axone
Joseph Harris 1, Hyuna Lee 1, Behrad Vahidi 1, Christina Tu 2, David Cribbs 3, Noo Li Jeon 1, Carl Cotman 3
1 Department of Biomedical Engineering, University of California, Irvine, 2 Stem Cell Research Center, University of California, Irvine, 3 Institut für Hirnforschung Altern und Demenz, University of California, Irvine
In diesem Video zeigen wir die Technik der weichen Lithographie mit Polydimethylsiloxan (PDMS), die wir verwenden, um einen mikrofluidischen Vorrichtung zum Kultivieren von Neuronen farbricate.
Vorbereiten E18 Kortikale Rattenneuronen für Kompartimentierung in einem Microfluidic Geräte
Joseph Harris 1, Hyuna Lee 1, Christina Tu Tu 2, David Cribbs 3, Carl Cotman 3, Noo Li Jeon 1
1 Department of Biomedical Engineering, University of California, Irvine, 2 Stem Cell Research Center, University of California, Irvine, 3 Institut für Hirnforschung Altern und Demenz, University of California, Irvine
In diesem Video zeigen wir die Herstellung von E18 Kortikale Rattenneuronen.
Nicht-Plasma-Bonding von PDMS für kostengünstige Herstellung von mikrofluidischen Bauteilen
Joseph Harris 1, Hyuna Lee 1, Behrad Vahidi 1, Cristina Tu 2, David Cribbs 3, Carl Cotman 3, Noo Li Jeon 1
1 Department of Biomedical Engineering, University of California, Irvine, 2 Stem Cell Research Center, University of California, Irvine, 3 Institut für Hirnforschung Altern und Demenz, University of California, Irvine
In diesem Video zeigen wir, wie die Neuronen mikrofluidischen Vorrichtung ohne Plasma Bindung verwenden.
Disclosures
Keine Interessenskonflikte erklärt.
