Summary
Biz 2.0 mm spekulum ile bir otoskop kullanarak direkt laringoskopi yoluyla farelerde entübasyon için, basit, güvenilir ve nispeten ucuz bir yöntem geliştirdik. Bu teknik, atravmatik ve kronik deneylerde tekrarlanan ölçümler için de kullanılabilir. Biz üstün trakeostomi veya daha önce cerrahi dışı teknikler bildirdi bulabilirsiniz.
Abstract
Fareler, vahşi tipli ve transjenik hem şu anda, biyomedikal araştırmalarda asıl memeli modeli vardır. Entübasyon ve mekanik ventilasyon derin anestezi veya akciğer fonksiyon ölçümleri altında ameliyat gerektiren bütün hayvan deneyleri için gereklidir. Trakeostomi mekanik havalandırma sağlamak için bu farelerde entübasyon için standart olmuştur. Orotrakeal entübasyon nedeniyle önemli teknik zorluk veya çok özel ve pahalı ekipman için bir gereklilik rapor edilmiştir ancak başarılı birçok çalışmada kullanılmıştır olmamıştır. Burada bir 2.0 mm spekulum ile donatılmış bir otoskop kullanarak ve bir endotrakeal tüp olarak 20 G intravenöz kateter kullanarak doğrudan laringoskopi bir teknik rapor. Biz entübe ve farelerde akciğer fonksiyonunun doğru değerlendirmeler yapmak için yaygın ve güvenilir bu tekniği kullandık. Bu teknik, deneyimli ellerde aslında hiçbir hayvan kaybı ile güvenli kanıtlamıştır. Ayrıca, bu teknik,Kronik bir model farelerin tekrarlanan çalışmalar için de kullanılabilir.
Introduction
Laboratuvar faresi biyoloji ve patobiyolojisinde başlıca memeli model olarak hemen hemen tüm türlerin yerini almıştır. Laboratuvar faresi açıkça ve yoğun insan hastalığının bir model olarak değer olduğu gösterilmiştir ve insan biyolojisi ve hastalık anlayışımızın gelişmeler paha biçilmez kanıtlamıştır küçük memeli türüdür. Kısa gebelik süresi ve önemli ölçüde daha düşük maliyetli bir biyomedikal araştırmalarda yaygın araç olarak boş ve transjenik farelerin geliştirme ve çalışma sağladı. Ancak, ortalama laboratuvar faresi (20-25 g) büyüklüğü dolayısıyla, bazı araştırmacılar, daha büyük memeli türler olan, fizyolojik ya da cerrahi araştırmalarda kendi çalışma sınırlı gelmiştir. Bu çalışmalarda fareler kullanarak bir engel derin anestezi altında fizyolojik ölçümler veya geniş cerrahi prosedürler sağlayacak entübasyon teknikleri ile karşılaşılan zorluk olduğunu. Trakeostomi 1, standart te olarak kullanılmaktadırçünkü gerekli bu tekniği ve mütevazı beceri yerine daha kolay yerine entübasyon NİK. Ancak, trakeostomi kronik veya kurtarma cerrahi çalışmalar için elverişli değildir; bu nedenle, akut deneyler ile sınırlıdır. Trakeostomi de iltihap veya hassas fizyolojik refleksleri önemli olduğu araştırma karıştırıcı bir değişken olabilir.
Bizim laboratuvar diğer araştırmacılar tarafından açıklanan tekniklerin çoğunu denedim ve çeşitli nedenlerle için onları yetersiz buldu. Trakeostomi çok travmatik ve kanama ve hava yolu iltihabı neden olur. Çok daha sorunlu bunun fizibil tekrar edilemez olmasıdır. Ekipman mütevazı bir yatırım gerektiren birçok nispeten non-invaziv teknikler yeterince güvenilir değildir. Diğer teknikler ekipman belirli bir uygulamada çalışacak olmadığını bilmeden haklı zordur pahalı ekipman gerektirir. Böylece, biz artık t gerekli bir nontravmatik tekniğini geliştirmek için çalıştıhan özel bir ekipman mütevazı bir yatırım, hızlı bir şekilde gerçekleştirilebilir olabilir ve güvenilir bir şekilde, kronik modellerinde tekrar olabilir ve hayvanların çok sayıda kullanılabilir. İşte biz böyle bir teknik rapor.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1.. Hayvan Preparasyon
- (Küçük fareler bir uzman tarafından entübe edilebilir) 8 hafta daha eski ve daha 20 g olan fareler edinin.
- Anestezi
- Periton boşluğu içine bir preanesthetic olarak ketamin ve ksilazin 20 mg / kg, her biri, farelere enjekte edilir. (Bu doz tamamen fare uyutmak için yeterli değildir, ancak mekanik ventilasyon entübasyon sonrası güvenli taşınmasını kolaylaştırır.) Ancak, dozlar ayarlama kurumsal veterinere danışılarak anestezik yanıta göre gerekli olabilir.)
- 90-120 saniye boyunca bir indüksiyon odası içinde% 3.5 izofluran / oksijen ile farelerde anestezi neden.
- Dikkatle, solunum hızı dikkate alınmalıdır. Değil en az 45 bpm giderek yavaş olmalıdır.
2. Entübasyon için hazırlık
- Indüksiyon odasından fareyi çıkarın ve sıkıca Scruff.
- Gent yastıklı ince forseps kullanınly ağız dil uzatmak.
- Iki parmak arasında dil tutma ve yumuşak bir kuvvet uygulanarak dil uzatma koruyun.
- Dikey hareket ile otoskop ve spekulum üzerinde fare yukarı çekin.
- Sıkıca Eksfoliyant ise otoskop oküleri bakmak ve dil ve berduş tarafından yavaşça fareyi yukarı çekin.
- Ses telleri için dikkatle bakmak. Onlar bu zaman kolayca görünür olmalıdır. Laryngis ADITUS (laringeal açılış yapısı) nispeten beyaz bakmak gerekir. Her nefes ile kablolarından hareket olmamalıdır. Kordonlar hareket etmiyor veya kötü görüntülendi varsa, biraz hayvan döndürün ve yavaşça boynunu hyperextend.
- Dominant elin ile, bir kalem gibi, kateterin ucuna uzanan PE10 boru 1 cm uzunluğunda, kateter 20 G, 1 tutun ve spekulumun tarafına takın. PE boru, bir stile veya buji olarak hizmet vermektedir.
- PE10 Tubi yönlendirinng ses tellerinin (stile) ve göbek kadar PE boru üzerinde 20 G kateter (endotrakeal tüp) ilerletmek alt kesici dişlerinin düzeydedir. Hızla bu stile kaldırmak.
- Yavaşça spekulum kapalı hayvan almak ve deney boyunca genel anestezi korumak için sürekli% 2 izofluran ile mekanik ventilatöre hayvan koyarak boru konumunu doğrulayın. Entübasyon onaylamak için PEEP tuzak geçiyor süresi dolan havayı (baloncuklar) gözünüzde canlandırın. Özofagus entübasyon birkaç baloncuklar neden olsa da, o kadar belirgin ya da endotrakeal entübasyon ile tutarlı olmayacaktır. Ayrıca, negatif deplasmanlar için bir hava yolu basıncı izleme (Şekil 1) gözlemlemek. Bunlar, borunun doğru yerleştirilmesi teyit etmektedir. Seçenek olarak ise, IV boru halinde su küçük bir miktar ve ET borusu bağlanabilir. Solunum 2 fare ve gelen hareket doğrulanıyor. Özofagus entübasyon, p durumundaressure izleme anlamlı olarak daha yüksek basınçlar ve hiçbir olumsuz deplasmanlar ortaya çıkaracaktır. Endtidal CO 2 yararlı olmasına karşın, teknik olarak bu küçük tidal hacimleri (~ 200 ul) ve bu çok pahalı olacaktır yapmak için ekipman verilen çok zor olacaktır. Tarif basit teknikleri tam yeterli ve çok daha ucuzdur. Izofluran anestezi mevcut değilse, tüm işlemler, genel anestezi xylazine, 10-20 mg / kg ketamin ile bağlantılı olarak 80-120 mg / kg kullanılarak yapılabilir.
3. Alternatif Tekniği: Doğrudan Larengoskopi Otoskop Tekniği ile Temelde Akciğer içine Çalışma Maddelerin Doğrudan Uygulamasının için, Diğer Amaçlı kolaylıkla Kullanılır.
- Indüksiyon odası içinde 90-120 saniye boyunca% 3.5, bu işlem için tek başına izofluran ile anestezi hayvanlarda neden.
- Sıkıca kafatası tabanında hayvan Scruff ve yavaşça dil uzatmakince forseps ile.
- Hayvan daha da yukarı çekti olamaz kadar yavaşça dilini tutan, dik spekulum üzerine (değiştirilmemiş) hayvan çekin.
- Ses telleri tek başına bu teknikle en sık görüntülenmiştir, fakat hayvan ve tam görünüme getirmek için hiper-genişletilmiş boyun döndürmek olabilir.
- Glottis instillate içeren bir jel yükleme pipet ilerlemek ve sıvıyı aşılamak. Spekulum hipofarenks ile bir mühür yapar çünkü fare kabloları aracılığıyla gitmez herhangi bir kalıntı sıvı aspire edecek. Bu kolayca rhonchorous tarafından doğrulanmadı nefes zaman sıvı akciğerlerde tam olarak dağıtılmış kadar fare şimdi yapar geliyor.
- Alternatif olarak, sıvı arkasında bir hava bolus ile akışkan 50 ul ihtiva eden bir 0.5 ml şırıngaya PE10 boru bağlayın. 0.5 cm için ses tellerinin dikkatle PE boru ilerlemek ve yavaş yavaş solunum içine boşaltın. Bununla birlikte, alt solunum yolu için zaman zaman travma meydana gelir uNumunenin daha teslim olmadan bu tekniği şarkı.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Yukarıdaki tekniği ile entübasyon, güvenilir ve hızlı. Endotrakeal tüpün uygun yerleştirme en kolay ve batık ekspiratuar uzuv süresi dolan gaz kabarcıklarının oluşması gözlemleyerek tarafından doğrulanmadı ventilatör devresi (genellikle bir PEEP tuzak) ve (Şekil 1) izleme, bir hava yolu basıncı üzerindeki olumsuz sapmaların. Hava yolu basıncı izleme üzerinde olumsuz deplasmanlar en güvenilir. Diğer ekspiratuar vantilatör devresi 2'ye bağlı intravenöz boru küçük bir akışkan damlasının hareket kullandık. Biz kapsamlı bu tekniği kullanılmış olmasına rağmen, bu boru konumunu doğrulamak için yeterli olmalıdır. Deneyimli bir operatör ilk geçişte bu yöntem zaman yaklaşık 90% kullanarak fareleri entübe yapabilirsiniz. Boru derhal kaldırılır, başarısız olanlar için, hayvan izofluran anestezi ile reinduced ve yerleştirme yeniden denenir. Hayvan bir ESO durumunda ventilatör devresine bağlı bırakılırsahiçbir müdahale varsa phageal entübasyon, mide yavaş yavaş üflemek yüksek tepe hava yolu basınçları, hipoksemi ve sonuçta ölüme üreten olacaktır. Yüksek pik havayolu basıncı negatif inspiratuar çabalara olmaksızın gözlenirse, hayvan derhal ventilatör kaldırılır ve ekstübe edilmelidir. Ancak, ventilatör hayvan kaldırılması ve endotrakeal tüpü çıkarmadan kolayca tersine. Entübasyon gerektiren son 300 hayvan çalışmaları sırasında deneyimli bir operatör ikinci girişimi tarafından ilk girişimi ve daha fazla% 95 ile% 80 entübe. Tüm hayvanlar deneyimli operatörleri üçüncü denemede entübe edildi. Fareler entübe için alınan zaman izofluran ile fareyi ikna etmek preanesthetic, 90-120 saniye için 5 dakika ve 30 saniye belirlemek ve aslında havayolunu entübe kalmıştır. Biz yeni kursiyerler ilk ses telleri görselleştirmek için öğrenmek gerektiğini bulduk. Başarıyla ses tellerinin on kere tam bir görünümü gösterebilen, onlar hazır t vardıro entübe için eğitim başlar. Kursiyerlerin başarılı 10 kez entübe sonra, bir spontan solunum hayvanda izleme bir hava yolu basıncı üzerinde olumsuz sapmaların gösterdiği gibi, bunlar deney hayvanlarında çalışmalar yapmak için hazırız. Ancak, eğitim video ölçüde öğrenme eğrisi hızlandıracaktır. Sadece deneyimsiz operatörler bu teknikle havayolu travma neden ve tekniği öğrenirken hayvanların ölümleri bu ortamda oluşabilir. Bununla birlikte, tecrübeli bir operatör ile hayvan kaybı nadirdir. Bu son 4 yılda 1.000 'den fazla hayvanlarda bizim deneyim.
Böylece hava yolu basınçlarının doğru önlemler sağlayan hava yolu ile sıkı bir sızdırmazlık sağlar ve hava yolu direncinin önlemler için yeterli çapa sahip olduğu için bir 20 G kateter farelerde bir endotrakeal tüp olarak kullanılır. Ancak, stile veya buji gibi PE boru kullanılarak 20 G ses telleri aracılığıyla kolay ve daha güvenilir geçmesine izin verir. 1 'deKateterin (2.5 cm) uzunluğunda tüp istikrar için alt ön dişler de hub ile yerleştirilmesini sağlar, ancak alt solunum yolu travma neden veya mainstem bronşların entübasyon olmadan.
Biz, hava yolu direncinin ölçümler yapmak (Şekil 2) Metakolin doz-yanıt eğrileri gerçekleştirmek ve akciğer basınç-hacim ilişkileri (Şekil 3) ölçmek için bu tekniği kullanın. Bu ölçümlerin tüm hayvanlar tamamen kullanılabilir, doğru veri elde etmek için felç olması gerekir. Bu amaçla nonrecovery deneylerde, ucuz, Nondepolarizan felçli olarak pankuronyum bromid kullandık. Ancak, panküronyum artık mevcuttur ve nedeniyle uzun yarılanma ömrü kurtarmak için gidiyoruz hayvanlar üzerinde kullanılamaz. Bu nedenle, zaman içinde tekrarlanan ölçümlerin seçeneği sağlayan nedeniyle kısa yarı ömrü vekuronyumda (30 dakika) ya da felç için rokuronyumda açtınız. Diğer araştırmacılar kullanmışbir depolarize edici felçli olarak süksinilkolin, ancak yarı ömrü deneylerimiz çoğunluğu için çok kısa olmuştur. Ayrıca, süksinilkolin histamin salınmasını 3 neden olabilir ve bu nedenle de potansiyel bir karıştırıcı bir değişken olur.
Ayrıca, aslında Hastings 4 ile sıçanlarda bildirilen bir teknik göre akciğere test maddelerinin verilmesi için yaygın olarak entübasyon tekniği kullanılmıştır. Farenin burun solunumu ve burun instilasyon kolay olması nedeniyle çoğu araştırmalar alt solunum sistemine test maddelerinin verilmesi için nasal instilasyon kullandık. Ancak, burun instilasyon yöntem kantitatif verilmesi için güvenilir olarak bulduk. Biz niceliksel tedarik akciğerde daha güvenilir ve dağıtım olduğunu bulduk entübasyon tekniği kullanarak, daha düzgün bir. Doğrudan instilasyon tekniğinin Bizim temel kullanımı, alt solunum yolu i antijeni teslim olmuşturalerjik enflamasyon na modeli (Şekil 4) ve solunum yolu aşırı duyarlılığı (Şekil 2). Biz de bu yöntemle örneğin sitokinler ve uyuşturucu gibi diğer test maddeleri teslim ettik.
Şekil 1.. Havayolu basıncı izleme. Mavi çizgi hava yolu basıncı yansıtır ve kırmızı hat entübasyondan hemen sonra fare izleme gelgit hacmi yansıtır. Basınç eğrisi (siyah oklar) negatif (aşağı) deplasmanlar spontan solunum çabası ile fare negatif intratorasik basınç (C57BL / 6, 24 g) nesil gösterir ve endotrakeal tüpün doğru yerleştirilmesi gösterir. v için tıklayınız Bu rakamın büyük bir sürümünü IEW.
Şekil 2,. Hava yolu direnci ve metakolin doz-tepki eğrileri. Fareler (C57BL / 6), bu teknik ile entübe edilmiş ultrasonik bir püskürtücü vasıtasıyla teslim metakolin iki katına dozları kullanılarak hava yolu direnci ve bronş reaktivite önlemler tabi olabilir. Bu temsili örnekte, kontrol hayvanı ml ovalbümin aşılanmış fare ve metakoline karşı aşırı duyarlılığı gösterir meydan 25 mg / kadar metakoline minimal tepki veriyor. Bu ölçümler 20 G kateter ile entübe fareler ile yapılan ve bir trakeostomize fare yapılan olanlardan ayırt edilemezler.
/ Files/ftp_upload/50269/50269fig3highres.jpg "src =" / files/ftp_upload/50269/50269fig3.jpg "/>
Şekil 3,. Basınç-hacim eğrisi. Bu pankuronyum felç 20 G intravenöz kateter ile entübe edilmiş 20 g fare bir temsilci basınç-hacim eğrisi, ve mekanik havalandırılır. Bu kateter 30 cm H2O basınç kadar sızıntı yoktur ve bu nedenle fare doğru ölçümler basınç-hacim ilişkileri yapmak için kullanılabileceğini göstermektedir.
Şekil 4. Alerjik iltihaplanma Ovalbümin modeli. Bu temsili hematoksilen ve bağışıklı ve ovalbüminin ile meydan olmuştur fare akciğer eosin ile boyanan bölümünde olduğunu. Bu ovalbu damlatılma genelleştirilmiş etkisini gösteriyormin entübasyon yöntemi (büyütme 4X) ile tatbik edilebilir.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
Bu yazıda travmatik olmayan ve aynı hayvanda tekrar tekrar kullanılabilir fareler entübe için basit, güvenilir bir tekniği açıklar. Bu teknik bir mütevazı toplamı için satın alınabilir basit laboratuar ya da tıbbi ekipman ile gerçekleştirilebilir. Ilk Hastings ve arkadaşları tarafından rapor edilen 4 doğrudan laringoskopide tekniği, çeşitli amaçlar için de kullanılabilir, ama esas olarak doğru bir alt solunum sistemine test maddesi sunmak için. Biz nedeniyle tekrarlanan ölçümler için kolaylığı, hız, basitlik, güvenilirlik, düşük gider, ve potansiyel bugüne kadar diğer araştırmacılar tarafından bildirilen bu üstün bu tekniği bulduk.
Fareler entübe Teknikleri yeni değildir. En eski raporlar biri, trakea kullanılan transillüminasyon bir 24 G kateter 5 oral entübasyon takip etmektedir. Ancak, bu çalışma ve diğerleri 6,7 tec çoğaltmak için yeterli bilgi vermediLaboratuvarımızda hnique. Son zamanlarda, diğer araştırmacılar büyük başarı 8,9 ile bu transillüminasyon tekniği kullandık. Brown ve arkadaşları tarafından ilk detaylı çalışma fareler, 45 ° sedyenin üzerinde asılı, onların tracheas transilluminated vardı ve onların trakea bir fabrikasyon larengoskop bıçak kullanarak 10 direkt görüş altında PE90 boru ile ağızdan entübe hangi bir çalışma bildirdi. Bu teknik edilmesi zordur ve bu yüzden, yaygın olarak kullanılmaktadır edilmemiştir kanıtlamıştır. Diğer raporlar tekniklerin güvenilirliğini artırmak için katı optik kapsamları veya fiberoptik kullanımını tarif eder. Vergari ve arkadaşları 11,12 ses telleri görselleştirmek için dış çapı bir katı artroskop 1.7 mm kullanılan tisin üzerinden bir kılavuz tel yerleştirilir. Yazarlar, özel ve pahalı ekipmanlar ile yapılan bu teknik ile% 100 başarı rapor. Bu cerrahi ekipmanın maliyeti farelerde yaygın kullanım için engelleyici görünmektedir. Ek teknikler arasında bir işletim mikroskop ve bir 2f kılavuz teli 13 ile geliştirilmiştir. Bu teknik, bizim için benzer, ancak, bir operasyon mikroskopunun kullanımını gerektirir, ve böylece önemli ölçüde daha az pahalı bir otoskop kullanımını tercih etmektedirler.
Fiberoptik entübasyon teknikleri de nispeten ucuz akülü fiberoptik kaynak 14 kullanılarak rapor edilmiştir. Biz bu fiberoptik tekniği kullanmaya çalıştılar, ama hiçbir karşılık gelen fiberoptik görselleştirme kanal olduğundan yararlı daha hafif daha az bulduk. MacDonald ve meslektaşları, bir daha güçlü halojen ışık kaynağı kullanılır ve küçük bir örnek başarı bildirdi. Onlar, defalarca da havayolu direnci 15 ölçmek başardık. Farklı zaman noktalarında hava yolu direncinin tekrar önlemler 16 diğerleri tarafından rapor edilmiştir. Zhao ve ark. Trakea delinmesiyle ve HYP ile bir kılavuz tel besleme tarafından bir retrograd tekniği kullanılıro-ve Orofarniks 17. Daha yakın zamanda Singer, et al. Kateterin 18 konumunu belge bir işletim mikroskop ve floroskopi kullanılarak faredeki sol ana bronş seçici entübasyon gerçekleştirdik. Daha sonra akciğer içine seçici test maddelerini aşılamak için bu yöntem kullanılır. Ancak, bu daha önemli bir gider ve son derece teknik eğitim olmadan kullanılabilecek bir yöntem olmaz. Ayrıca, floroskopi de çalışmaya bir radyasyon tehlikesi eklersiniz.
Özetle, bir pediatrik otoskop kullanılarak farelerin doğrudan laringoskopi bir entübasyon için değerli bir tekniktir, tekrarlanan entübasyon ve entübasyon olmadan test maddesi teslim edilir. Biz trakeostomi için bu tekniği üstün bulmak ve daha önce noninvaziv farelerde endotrakeal entübasyon gerçekleştirme yöntemlerini bildirdi.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Yazarlar, hiçbir rakip mali çıkarlarını olmadığını beyan ederim.
Acknowledgments
Veteran İşleri Bölümü'nden bir Liyakat Grant ve Sağlık Ulusal Enstitüleri enstitünün bir T32-HL098062 hibe bu çalışmaları destekledi. Biz minnetle Randolph H. Hasting, MD, Ph.D. tavsiyesi teşekkür etmek istiyoruz ve tavsiye ve VA San Diego Sağlık Sistemi Veteriner Tıp Birimi desteği.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Operating Otoscope Head | Welch Allyn | 21700 | $188.98 |
| Otoscope Handle | Welch Allyn | 71000 | $112.20 |
| Reuseable Speculum | Welch Allyn | 22002 | $3.98 |
| Fine Forceps | Miltex | 18-779 | $107.18 |
| Small clamp stand to hold otoscope | |||
| Isoflurane Vaporizer (multiple circuit with vacuum waste gas handling) | Summit Medical | $3,000 | |
| Flexivent (Animal Ventilator) | SCIREQ | $35,000 | |
| Intravenous catheter (20 G, 1 in) | BD | 381233 | $9.62 |
| Polyethylene tubing (PE10) (0.011 in I.D., 0.024 in O.D.) 100 ft | Intramedic, Clay-Adams | 427401 | $115.70 |
| Ketamine 100 mg/ml (10 ml bottle) | Butler | 23061 | $10.00 |
| Xylazine (100 ml bottle) | Vedco | 24105 | $20.00 |
| Isoflurane (250 ml bottle) | $15.00 | ||
| Vecuronium bromide 10 mg/10 ml | Pfizer | NDC 0069-0094-01 | $15.00 |
References
- Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proc. natl. Acad. Sci. U.S.A. 88, 8277-8281 (1991).
- Watanabe, A., Hashimoto, Y., Ochiai, E., Sato, A., Kamei, K. A simple method for confirming correct endotracheal intubation in mice. Lab. Anim. 43, 399-401 (2009).
- Orebaugh, S. L. Succinylcholine: adverse effects and alternatives in emergency medicine. Am. J. Emerg. Med. 17, 715-721 (1999).
- Hastings, R. H., Summers-Torres, D. Direct Laryngoscopy in Mice. Contemp. Lab. Anim. Sci. 38, 33-35 (1999).
- Berul, C. I., Aronovitz, M. J., Wang, P. J., Mendelsohn, M. E. In vivo cardiac electrophysiology studies in the mouse. Circulation. 94, 2641-2648 (1996).
- Ewart, S. L., Gavett, S. H., Margolick, J., Wills-Karp, M. Cyclosporin A attenuates genetic airway hyperresponsiveness in mice but not through inhibition of CD4+ or CD8+ T cells. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 627-634 (1996).
- Ewart, S. L., Mitzner, W., DiSilvestre, D. A., Meyers, D. A., Levitt, R. C. Airway hyperresponsiveness to acetylcholine: segregation analysis and evidence for linkage to murine chromosome 6. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 14, 487-495 (1996).
- Spoelstra, E. N., et al. A novel and simple method for endotracheal intubation of mice. Lab. 41, 128-135 (2007).
- Boll, H., et al. High-speed single-breath-hold micro-computed tomography of thoracic and abdominal structures in mice using a simplified method for intubation. J. Comput. Assist. Tomogr. 34, 783-790 (2010).
- Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice. J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).
- Vergari, A., Polito, A., Musumeci, M., Palazzesi, S., Marano, G. Video-assisted orotracheal intubation in mice. Lab. Anim. 37, 204-206 (2003).
- Vergari, A., et al. A new method of orotracheal intubation in mice. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 8, 103-106 (2004).
- Hamacher, J., et al. Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination. Lab. Anim. 42, 222-230 (2008).
- Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies. Cont. Top. Lab. Anim. Sci. 44, 52-55 (2005).
- MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. An improved simple method of mouse lung intubation. J. Appl. Physiol. 106, 984-987 (2009).
- De Vleeschauwer, S. pI., et al. Repeated invasive lung function measurements in intubated mice: an approach for longitudinal lung research. Lab. Anim. 45, 81-89 (2011).
- Zhao, X., et al. A technique for retrograde intubation in mice. Lab. Anim. 35, 39-42 (2006).
- Singer, T., et al. Left-sided mouse intubation: description and evaluation. Exp. Lung Res. 36, 25-30 (2010).
