Waiting
Login processing...

Trial ends in Request Full Access Tell Your Colleague About Jove
Click here for the English version

Immunology and Infection

PRP как новый подход для предотвращения инфицирования: подготовка и Published: April 9, 2013 doi: 10.3791/50351

Summary

Implant-инфекции, связанной значительное клиническое осложнение. Это исследование описывает подход с использованием богатой тромбоцитами плазмы (PRP), чтобы предотвратить имплантат-ассоциированных инфекций, представляет протокол для подготовки PRP с постоянной концентрацией тромбоцитов, и сообщает о вновь выявленных антимикробные свойства PRP и связанные с ними протоколы для рассмотрения таких антимикробными свойствами

Abstract

Implant-инфекции, связанной становится все более и более сложных услуг в области здравоохранения по всему миру в связи с ростом устойчивости к антибиотикам, передачи устойчивых к антибиотикам бактерий между животными и людьми, и высокая стоимость лечения инфекций.

В этом исследовании, мы раскрываем новые стратегии, которые могут быть эффективными в предотвращении имплантат-ассоциированной инфекции основана на потенциальных антимикробные свойства обогащенной тромбоцитами плазмы (PRP). Благодаря хорошо изученных свойств для стимулирования заживления, PRP (биологический продукт) все чаще используется для клинического применения, включая ортопедические операции, пародонта и устные хирургии, челюстно-лицевой хирургии, пластической хирургии, спортивной медицине и т. д.

PRP может быть передовых альтернативой обычным антибиотикам лечение в предотвращении имплантат-ассоциированных инфекций. Использование PRP может быть выгодным по сравнению с обычными лечения антибиотиками систь PRP менее вероятно, чтобы вызвать резистентность к антибиотикам и ПРП в антимикробным и исцеление способствующих свойства могут иметь синергетический эффект в профилактике инфекций. Известно, что патогенные микроорганизмы и клетки человека для гоночных поверхности имплантата и свойства PRP по содействию исцеление могло бы улучшить человеческие привязанности ячейки тем самым уменьшая шансы для инфекции. Кроме того, PRP изначально биосовместимых и безопасной и свободной от риска инфекционных заболеваний.

Для нашего исследования мы выбрали несколько клинических штаммов бактерий, которые обычно встречаются при инфекциях, ортопедических и изучали, может ли PRP имеет в пробирке антимикробными свойствами против этих бактерий. Мы подготовили PRP помощью центрифугирования дважды подход, который позволяет той же концентрации тромбоцитов, которые могут быть получены для всех образцов. Мы добились последовательного антимикробной выводы и обнаружил, что PRP имеет сильные в пробирке антимикробными свойствами против бактерий, таких как MethiCillin-чувствительные и метициллин-устойчивый золотистый стафилококк, стрептококк группы А, и Neisseria гонореи. Таким образом, использование PRP может иметь потенциал, чтобы предотвратить инфекцию и снизить потребность в дорогостоящих послеоперационного лечения имплантат-ассоциированных инфекций.

Introduction

Implant-инфекции, связанной значительное клиническое осложнение. Золотистый стафилококк (S. стафилококк) является одним из наиболее распространенных микроорганизмов, выделенных из имплантат-ассоциированных инфекций. Он способен производить биопленки, которая покрывает поверхность имплантата и может привести к антибиотикам инфекций 1,2. Лечение имплантат-ассоциированной инфекции часто требуется длительная госпитализация для повторного debridements и длительной парентеральной антибактериальной терапии. В устойчивых к антибиотикам случаев удаления имплантата может быть необходимым. Повышение устойчивости бактерий к антибиотикам также называют Центрами по контролю и профилактике заболеваний (CDC) как «один из наиболее актуальных проблем в мире здоровья". В свое время, без разработки новых и эффективных антимикробных лечения, не исключено, что с множественной лекарственной устойчивостью патогенных будет неизлечимыми с обычными антибиотиками. Предупреждение имплантата связанногоинфекции Поэтому важно и новых профилактических средств и подходов, необходимых для предотвращения таких инфекций.

Обогащенной тромбоцитами плазмы (PRP) является концентрация аутологичной крови, которая содержит более 30 факторов роста, которые могут помочь с костью и костным трансплантатом исцеления 3-5. Применение PRP по улучшению регенерации костных и мягких тканей созревания все чаще сообщается в клиниках из-за его высокой концентрации различных факторов роста выпущен тромбоцитов.

Некоторые характеристики PRP показывают, что PRP может также имеют антимикробные свойства 6-9. PRP содержит большое количество тромбоцитов, высокая концентрация лейкоцитов (которые могут обладать принимающей обороны действия против бактерий и грибков), а также несколько антимикробных пептидов 7,8,10. В недавнем исследовании большой группы кардиохирургических больных, было выявлено, что использование интраоперационной PRP-геля во время закрытия раны значиicantly снизилась заболеваемость поверхностной и глубокой грудиной инфекции 11. По этим причинам и наблюдения, мы предположили, что PRP, помимо своих хорошо изученный целебный способствующие свойства, обладает антимикробными свойствами. Потенциальные преимущества использования PRP, чтобы предотвратить инфекцию могут включать: (i) PRP менее вероятно, чтобы вызвать сопротивление по сравнению с обычными лечения антибиотиками. (II) PRP также обладает свойствами, которые способствуют заживлению, которая может иметь синергетический эффект по профилактике инфекций; PRP исцеления способствующих свойства могли бы обеспечить уплотнение, чтобы предотвратить прикрепление бактерий тем самым уменьшая шансы для инфекции, болезнетворных микроорганизмов и клеток человека участвуют в гонке для имплантата поверхностей 12 , 13. (III) PRP изначально биосовместимых и безопасной и свободной от риска инфекционных заболеваний.

Наша долгосрочная цель заключается в использовании PRP как новый подход к предотвращению имплантата связанных infectiДополнения. Цель данного исследования заключалась в подготовке PRP помощью центрифугирования дважды подход, изучить PRP в пробирке свойства антимикробных и для описания протоколов для оценки таких антимикробными свойствами.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Подготовка и активация PRP

1,1 взятия крови

  1. Anesthetize кролика при вдыхании изофлурана (2% в O 2 для индукции и 1% за обслуживание).
  2. Ничья 2 мл 0,129 M Tri-цитрат натрия (anticoagulent раствора) в 20 мл шприц. Тринатрийцитрата раствор готовят путем растворения 1,897 г три-цитрат натрия в 50 мл дистиллированной H 2 O и фильтрации с 0,22 мкм стерильный фильтр.
  3. Стерилизовать уха кролика с использованием 70% этанола.
  4. Ничья крови (например, 5 мл) из вены уха кролика через иглу бабочка (25 г), подключенный к шприцу.
  5. Смешайте кровь с тринатрийцитрата решение, нежная агитации. Соотношение объемов крови и тринатрийцитрата решение 9:1.

1,2 PRP подготовки (рис. 1)

  1. Передача антикоагулянтом крови в 50 мл трубки центрифуги пластик. Возьмите аликвоты по 10 мклкрови для определения количества тромбоцитов использованием базовых hemocytometry.
  2. Центрифуга крови при 300 мкг в течение 10 мин при комнатной температуре (RT) на центрифуге с поворотно-откидной ротор. Установить ускорение и тормоз низкой скорости (рис. 1).
  3. После центрифугирования кровь разделяется на три слоя. Нижний слой в основном красные кровяные клетки, средний слой (как правило, называют "лейкомассы") состоит из концентрированных тромбоцитов и лейкоцитов, а верхний слой в основном плазмы, которая является жидкой составляющей крови и тромбоцитов ( рис. 1). Осторожно транспортировки центрифуги трубки капот культуре клеток; не беспокоить слоев. Передача всех плазмы, лейкомассы и толщиной 2-3 мм красный слой клеток крови в 15 мл пластиковые трубки, используя 1 мл пластиковые пипетки.
  4. Центрифуга переданы образцы во второй раз в 3000 х г в течение 15 мин при комнатной температуре. Верхний слой (супернатант) считается бедной тромбоцитами плазме (PPP)D переносится в новую пробирку.
  5. Получение PRP, регулируя концентрацию тромбоцитов в оставшихся образцов крови с использованием PPP получить 2,0 х 10 6 тромбоцитов / мкл (определяется hemocytometry).

1,3 PRP активации

  1. Подготовка PRP активации раствор путем растворения 5000 МЕ бычьего тромбина с 5 мл 10% хлорида кальция, чтобы рабочие концентрации 1000 МЕ / мл.
  2. Добавить активация решение PRP и PPP, и смешивать раствор пипеткой несколько раз, чтобы сформировать PRP-и PPP-гели. Соотношение объемов активация решение PRP или PPP 1:4.

2. Экстракорпоральное антимикробной Тест PRP Использование убийство Кривой анализа (рис. 2)

  1. С помощью стерильного посева петлю, добавить несколько колоний S. золотистого от ночной культуры пластины в 5 мл Мюллера Хинтона (MHB) в пластиковой трубке. Vortex кратко и затем инкубировать образец в течение 2 часов при температуре 37 ° C. Следующий, Оптическая плотность бактериальных средств массовой информации определяли с помощью спектрофотометра и доводят до оптическая плотность равна ~ 1 х 10 8 КОЕ / мл на основе заранее определенной стандартной кривой.
  2. Сделать 100x разбавления с использованием PBS для получения 1 х 10 6 КОЕ / мл и поместите амеб на льду.
  3. Настройка и маркировать стерильный, одноразовый 5 мл с круглым дном трубы полистирола, а также подготовить следующие группы образцов, как указано в таблице 1 для конечного объема 2 мл в каждую пробирку.
  4. Добавить PRP, PPP, или PBS первый полистирола трубы, а затем тромбина решение для активации (геля). Затем добавьте MHB, а затем S. золотистого амеб (1 х 10 6 КОЕ / мл) для получения конечной концентрации 1 х 10 5 КОЕ / мл.
  5. Инкубировать пробирки при 37 ° C с орбитальной агитации при 150 оборотах в минуту.
  6. На заранее определенных временных точках (0, например, 1 и 2 часа), смешать решений в каждой трубе через повтор пипетирования (этошаг важен, так как бактерии могут попасть внутрь геля PRP). Возьмите 10 мкл образца, развести серийно стерильным 0,9% физиологическим раствором, и пипеткой 100 мкл каждого разведения на Триптический соевый агар (TSA, с 5% овечьей крови) пластины для подсчета КОЕ.
  7. Культура агара в течение ночи при 37 ° C, то рассчитывать и записывать пластинки колонии. Участок данные о масштабах logarithimic со временем (час) на оси х и КОЕ / мл на оси ординат.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

ПРП воспроизводимо подготовлен с использованием подхода в два раза центрифугированием (рис. 1). PRP находится представить сильные (до 100-кратное снижение КОЕ) в пробирке антимикробными свойствами против метициллин устойчивый С. стафилококк (MRSA) (рис. 3), которая обычно находится в больницах по всему миру 14. Точно так же, PRP имеет сильные антибактериальные свойства против метициллин чувствительными С. стафилококка (MSSA), стрептококка группы А, и Neisseria гонореи.

Дважды подход центрифугирования позволяет получать PRP с той же концентрацией тромбоцитов (т.е. 2,0 х 10 6 тромбоцитов / мкл), но концентрированным (~ 10 раз выше исходного уровня в крови; рис. 4) и позволяет получить последовательное антимикробной выводы; никаких существенных различий В КОЕ выводы из ФРП из различных отдельных животных (например,кролики) не наблюдается.

Группы PRP / PPP / PBS MHB MRSA посевной
Управление Никто 1800 мкл 200 мкл
Управление Никто 2000 мкл Никто
Управление PBS + тромбин (200 мкл) 1600 мкл 200 мкл
PPP PPP + тромбин (200 мкл) 1600 мкл 200 мкл
PRP PRP + тромбин (200 мкл) 1600 мкл 200 мкл

Таблица 1. Экспериментальные образцы для оценки антимикробной PRP.


Рисунок 1. PRP подготовке использовании дважды процедуру центрифугирования. (А) Первая центрифугирования. После первого центрифугирования, три слоя сформированы, и два верхних слоя (т.е. слоя плазмы и лейкомассы) и 2-3 мм от нижнего слоя (т.е. красных клеток крови слоя) передаются на вторую стерильную пробирку центрифуги. (B) второго центрифугирования. После второго центрифугирования, верхний слой переносили в новую стерильную пробирку и обозначенные как ГЧП. Остальные регулируется с помощью ГЧП тромбоцитов концентрации 2,0 · 10 6 тромбоцитов / мкл и обозначены как PRP.

Рисунок 2
Рисунок 2. Экспериментальная установка для оценки антимикробной СВОЙСТВс ПРП помощью убийства анализа кривой. Во-первых, PRP или PPP добавляется в пробирках, и сразу же активировать раствора тромбина. Далее, MHB с последующим добавлением бактериальных амеб. Аликвоты образцов, взятых в различные моменты времени и покрытие для подсчета КОЕ.

Рисунок 3
Рисунок 3. PRP, PPP, или PBS помещают в стерильный 5 мл трубки полистирола вместе с тромбином, MHB бульон, и MRSA материалом, а затем инкубировали при 37 ° C с орбитальной агитации при 150 оборотах в минуту. В заранее определенные моменты времени (например, 1 и 2 ч), аликвоты пробы отбирают и помещают для подсчета КОЕ. (A) КОЕ данных и (б) представитель пластине изображений на 10 -2 разведения. Значительное снижение (~ 100-кратное на 2 часа) рост MRSA получается УсинPRP г по сравнению с ППС и PBS управления. Это верно и для бактерий, таких как MSSA, стрептококка группы А, и Neisseria гонореи, а также.

Рисунок 4
Рисунок 4. Мазках крови цельной крови (слева) и PRP (справа). PRP получают из дважды подход центрифугирования имеет ~ 10 раз количество тромбоцитов по сравнению с цельной кровью.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Обогащенной тромбоцитами плазмы все чаще используется для клинического применения благодаря своим целебным свойствам способствующих 15-17. В настоящем исследовании, PRP был представлен в качестве нового подхода к профилактике инфекции. PRP было обнаружено сильное антимикробными свойствами в отношении MRSA, MSSA, стрептококка группы А, и Neisseria гонореи. Основные преимущества PRP, по сравнению с обычными лечения антибиотиками, для профилактики инфекции, включают: (1) данной терапии антибиотиками сталкиваются с проблемами в том числе все чаще сообщают устойчивость к антибиотикам 14,18-20. PRP может быть передовых альтернативных потому что (я) PRP автора тромбоцитов бактерицидных белков могут обладать хемотаксических свойства иммунных клеток, таких как нейтрофилы, моноциты и Т-клеток, которые играют важную роль в защите от патогенных вторжения 21, и (II) по сравнению с обычными антибиотиками, тромбоцитов бактерицидных белков в меньшей степени подвержены яnducing бактериальной резистентности в связи с трудностями в изменении бактериальные мембранные структуры 22. (2) PRP не только снижает инфекций, но и способствует заживлению ран, оба они являются дорогостоящими в плане травм, времени и денег.

PRP в последнее время привлекает повышенный интерес. Тем не менее, существуют многочисленные сложные различия между PRP протоколы подготовки, включая начиная число тромбоцитов, применение антикоагулянтов, включение лейкоцитов, а также использование активаторов 23-27. Изменения в подготовке PRP способствует отчасти спорным результатам как в животных и клинических исследований 28. В результате, большая проблема для PRP исследования заключается в контроле вариаций. В текущем исследовании, дважды подход центрифугирования была выполнена, и концентрация тромбоцитов PRP была зафиксирована на уровне 2 х 10 6 тромбоцитов / мкл (~ 10 раз выше исходного уровня в крови) по стандартизации протокола PRP подготовки и ограничить изменчивостьВ подготовке PRP. Дважды подход центрифугирования представлена ​​простая, можно с легкостью применить для изоляции PRP из крови других животных и человека, и привел к последовательной в пробирке антимикробные свойства кролика PRP в настоящем исследовании. Тем не менее, различия все же может существовать, так как факторы роста и другие химические вещества в пределах или освобождены от тромбоцитов может варьироваться между отдельными клетками и животных, некоторые клеточные популяции (например, лейкоцитов) не контролируется. Обратите внимание, что лейкоциты богатых PRP была подготовлена ​​и использована в данном исследовании, так как лейкоциты, участвующие в прямом бактериальных убийства и антиген-специфические иммунные реакции. Протоколы могут быть дополнительно модифицированы для получения лейкоцитов бедных PRP путем проведения второго центрифугирования только верхний слой (то есть плазмы и тромбоцитов часть) после первого центрифугирования (рис. 1).

В этом исследовании, 50 мл цельной крови был использован для получения приблизительно 5 мл PRP. Если объем крови вызывает беспокойство, объединенных кровью от многочисленных животных могут быть использованы для получения PRP. Если сгустки форме во время ничьей крови и / или центрифугирования, скорее всего, некоторые тромбоциты активируются, что приведет к низкой тромбоцитов выход. Таким образом, достаточное антикоагулянтов и кротким, но тщательное перемешивание является важным шагом для успешной изоляции PRP.

PRP была активирована с помощью тромбина в настоящем исследовании. Другие подходы, включая хлористый кальций, экзогенных или аутологичных тромбина с или без хлорида кальция, механического напряжения (дополнительного высокоскоростного центрифугирования), и батроксобин также может быть применен для активации PRP 29-32. Обратите внимание, что тромбоциты активируются тромбином может, вероятно, освободить их содержание гранул намного быстрее, чем тромбоциты активируются другие химические вещества. Причина в том, что, кроме того, его способность преобразовывать фактора XI Ся, VIII в VIIIa, V в Va, и фибриноген в фибрин, тромбин может способствовать активации и агрегации тромбоцитов с помощьюctivation протеазы активируются рецепторы на мембранах клеток тромбоцитов 33-35.

Анализ кривой убийства были представлены для оценки в пробирке антимикробной активности PRP. В отличие от диффузии анализа диска агар, убийство анализ кривой позволяет количественно оценить скорость бактерицидную активность с течением времени. Одним из важнейших шага правильно разогнать бактерий при подсчете КОЕ это смешать всю культуру тщательно энергичные пипетирования до выборка и встряхивают для серийных разведений, как PRP гель может вносить путаницу в своей способности правильно разогнать бактерий.

В целом, обогащенной тромбоцитами плазмы имеет сильные антибактериальные свойства против бактерий, таких как S. стафилококка, стрептококка группы А, и Neisseria гонореи. Помимо хорошо изученных исцеления способствующие свойства, PRP может служить новый подход к предотвращению имплантат-ассоциированных инфекций. Механизм антимикробные свойства PRP является сдо неизвестный и дальнейшие исследования в этой области необходимы.

Ограничения этого исследования включают PRP, что не в полной мере устранить бактерии в наших экспериментальных условиях (1 х 10 5 КОЕ / мл). Это может быть связано с высокой вирулентностью наших клинических штаммов бактерий, которые были использованы, 1 х 10 2 КОЕ (0,1 мл) С. золотистого индуцированных тяжелых инфекций в естественных условиях 36-38. Кроме того, количество PRP может быть увеличена для достижения лучшего бактериальной ликвидации, или PRP могут быть использованы вместе с системной или местной администрации обычные антибиотики для профилактики инфекции; двойной эффект (т.е. антимикробное и исцеление способствующих свойства) PRP может быть выгодным В способствуя заживлению при предотвращении инфекции. Еще одним ограничением является то, что в основном режиме не должна быть использована для пациентов, которые уже были системно инфицированных (например, больных сепсисом). Это потому, что бактерии в крови может пройтиред с PRP в месте применения, если соответствующие методы стерилизации применяются. Мы рекомендуем тщательное изучение возможных бактериальных загрязнений PRP перед его использованием.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Acknowledgments

Авторы благодарят Therwa Хамза, John E. Tidwell, Нина Кловис, и Сюзанна Смит для экспериментальных помощи и Сюзанна Смит для корректуры. Авторы также благодарят Джон Томас, доктор философии для обеспечения бактериальной клинических изолятов и Джон Б. Барнет, PhD за поддержку и использование биологических лабораторий безопасности на кафедре микробиологии, иммунологии и клеточной биологии в Университете Западной Вирджинии. Авторы признают, финансовой поддержки со стороны остеосинтеза и травматологической помощи Фонда и Национального научного фонда (# 1003907). Микроскоп экспериментов и анализа изображений были также проведены в Университете Западной Вирджинии изображений фонд, который при частичной поддержке Марии Babb Randolph онкологический центр и NIH грант P20 RR016440.

Животное использование крови привлекает были одобрены Университета Западной Вирджинии Институциональные уходу и использованию животных комитета. Все эксперименты были выполнены в соответствии со всеми guidelinES, правил и регулирующих органов.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Bovine thrombin King Pharmaceuticals, Inc 60793-215-05 Thrombin (bovine origin)
Calcium chloride King Pharmaceuticals, Inc 60793-215-05 10% calcium chloride
Ethanol Sigma-Aldrich E7023
Isoflurane Baxter 1001936060
Mueller Hinton broth Becton, Dickinson and Company 275710
Phosphate-buffered saline Sigma-Aldrich D8662
Tri-sodium citrate Sigma-Aldrich W302600
Tryptic soy agar Fisher Scientific R01202
Centrifuge Kendro Laboratory Products 750043077
Syringe filter Millipore SLGP033RS

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Gristina, A. G. Biomaterial-centered infection: microbial adhesion versus tissue integration. Science. 237, 1588-1595 (1987).
  2. Gristina, A. G., Costerton, J. W. Bacterial adherence to biomaterials and tissue. The significance of its role in clinical sepsis. J. Bone Joint Surg. Am. 67, 264-273 (1985).
  3. Everts, P. A., et al. Reviewing the structural features of autologous platelet-leukocyte gel and suggestions for use in surgery. Eur. Surg. Res. 39, 199-207 (2007).
  4. Marx, R. E. Platelet-rich plasma (PRP): what is PRP and what is not PRP. Implant. Dent. 10, 225-228 (2001).
  5. Toscano, N., Holtzclaw, D. Surgical considerations in the use of platelet-rich plasma. Compend. Contin. Educ. Dent. 29, 182-185 (2008).
  6. Cieslik-Bielecka, A., Gazdzik, T. S., Bielecki, T. M., Cieslik, T. Why the platelet-rich gel has antimicrobial activity? Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 103, 303-306 (2007).
  7. Yeaman, M. R. The role of platelets in antimicrobial host defense. Clin. Infect. Dis. 25, 951-970 (1997).
  8. Tang, Y. Q., Yeaman, M. R., Selsted, M. E. Antimicrobial peptides from human platelets. Infect Immun. 70, 6524-6533 (2002).
  9. El-Sharkawy, H., et al. Platelet-rich plasma: growth factors and pro- and anti-inflammatory properties. J. Periodontol. 78, 661-669 (2007).
  10. Krijgsveld, J., et al. Thrombocidins, microbicidal proteins from human blood platelets, are C-terminal deletion products of CXC chemokines. J. Biol. Chem. 275, 20374-20381 (2000).
  11. Trowbridge, C. C., et al. Use of platelet gel and its effects on infection in cardiac surgery. J. Extra Corpor. Technol. 37, 381-386 (2005).
  12. Gristina, A. G., Naylor, P., Myrvik, Q. Infections from biomaterials and implants: a race for the surface. Med. Prog. Technol. 14, 205-224 (1988).
  13. Subbiahdoss, G., Kuijer, R., Grijpma, D. W., vander Mei, H. C., Busscher, H. J. Microbial biofilm growth vs. tissue integration: "the race for the surface" experimentally studied. Acta Biomater. 5, 1399-1404 (2009).
  14. Klevens, R. M., et al. Invasive methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections in the United States. JAMA. 298, 1763-1771 (2007).
  15. Foster, T. E., Puskas, B. L., Mandelbaum, B. R., Gerhardt, M. B., Rodeo, S. A. Platelet-rich plasma: from basic science to clinical applications. Am. J. Sports Med. 37, 2259-2272 (2009).
  16. Carlson, N. E., Roach, R. B. Platelet-rich plasma: clinical applications in dentistry. J. Am. Dent. Assoc. 133, 1383-1386 (2002).
  17. Man, D., Plosker, H., Winland-Brown, J. E. The use of autologous platelet-rich plasma (platelet gel) and autologous platelet-poor plasma (fibrin glue) in cosmetic surgery. Plast. Reconstr. Surg. 107, 229-237 (2001).
  18. Fridkin, S. K., et al. Epidemiological and microbiological characterization of infections caused by Staphylococcus aureus with reduced susceptibility to vancomycin, United States, 1997-2001. Clin. Infect. Dis. 36, 429-439 (1997).
  19. Jackson, C. R., Fedorka-Cray, P. J., Davis, J. A., Barrett, J. B., Frye, J. G. Prevalence, species distribution and antimicrobial resistance of enterococci isolated from dogs and cats in the United States. J. Appl. Microbiol. 107, 1269-1278 (2009).
  20. Murray, C. K., et al. Recovery of multidrug-resistant bacteria from combat personnel evacuated from Iraq and Afghanistan at a single military treatment facility. Mil. Med. 174, 598-604 (2009).
  21. Durr, M., Peschel, A. Chemokines meet defensins: the merging concepts of chemoattractants and antimicrobial peptides in host defense. Infect Immun. 70, 6515-6517 (2002).
  22. Hancock, R. E. Peptide antibiotics. Lancet. 349, 418-422 (1997).
  23. Dohan Ehrenfest, D. M., Rasmusson, L., Albrektsson, T. Classification of platelet concentrates: from pure platelet-rich plasma (P-PRP) to leucocyte- and platelet-rich fibrin (L-PRF). Trends Biotechnol. 27, 158-167 (2009).
  24. Kalen, A., Wahlstrom, O., Linder, C. H., Magnusson, P. The content of bone morphogenetic proteins in platelets varies greatly between different platelet donors. Biochem. Biophys. Res. Commun. 375, 261-264 (2008).
  25. Weibrich, G., Kleis, W. K., Hafner, G., Hitzler, W. E. Growth factor levels in platelet-rich plasma and correlations with donor age, sex, and platelet count. J. Craniomaxillofac. Surg. 30, 97-102 (2002).
  26. Mazzucco, L., Balbo, V., Cattana, E., Guaschino, R., Borzini, P. Not every PRP-gel is born equal. Evaluation of growth factor availability for tissues through four PRP-gel preparations: Fibrinet, RegenPRP-Kit, Plateltex and one manual procedure. Vox Sang. 97, 110-118 (2009).
  27. Lei, H., Gui, L., Xiao, R. The effect of anticoagulants on the quality and biological efficacy of platelet-rich plasma. Clin. Biochem. 42, 1452-1460 (2009).
  28. Redler, L. H., Thompson, S. A., Hsu, S. H., Ahmad, C. S., Levine, W. N. Platelet-rich plasma therapy: a systematic literature review and evidence for clinical use. Phys. Sportsmed. 39, 42-51 (2011).
  29. Whitman, D. H., Berry, R. L., Green, D. M. Platelet gel: an autologous alternative to fibrin glue with applications in oral and maxillofacial surgery. J. Oral Maxillofac. Surg. 55, 1294-1299 (1997).
  30. Anitua, E. Plasma rich in growth factors: preliminary results of use in the preparation of future sites for implants. Int. J. Oral Maxillofac. Implants. 14, 529-535 (1999).
  31. Whitman, D. H., Berry, R. L. A technique for improving the handling of particulate cancellous bone and marrow grafts using platelet gel. J. Oral. Maxillofac. Surg. 56, 1217-1218 (1998).
  32. Currie, L. J., Sharpe, J. R., Martin, R. The use of fibrin glue in skin grafts and tissue-engineered skin replacements: a review. Plast. Reconstr. Surg. 108, 1713-1726 (2001).
  33. Nikulin, A. A. Effect of calcium, thrombin and nucleotides (ADP, cAMP, cGMP) on blood platelet glycolysis and energy metabolism. Farmakol. Toksikol. 43, 585-590 (1980).
  34. Hantgan, R. R., Taylor, R. G., Lewis, J. C. Platelets interact with fibrin only after activation. Blood. 65, 1299-1311 (1985).
  35. Hantgan, R., Fowler, W., Erickson, H., Hermans, J. Fibrin assembly: a comparison of electron microscopic and light scattering results. Thromb. Haemost. 44, 119-124 (1980).
  36. Li, B., Jiang, B., Boyce, B. M., Lindsey, B. A. Multilayer polypeptide nanoscale coatings incorporating IL-12 for the prevention of biomedical device-associated infections. Biomaterials. 30, 2552-2558 (2009).
  37. Li, B., Jiang, B., Dietz, M. J., Smith, E. S., Clovis, N. B., Rao, K. M. K. Evaluation of local MCP-1 and IL-12 nanocoatings for infection prevention in open fractures. J. Orthop. Res. 28, 48-54 (2010).
  38. Boyce, B. M., Lindsey, B. A., Clovis, N. B., Smith, E. S., Hobbs, G. R., Hubbard, D. F., Emery, S. E., Barnett, J. B., Li, B. Additive effects of exogenous IL-12 supplementation and antibiotic treatment in infection prophylaxis. J. Orthop. Res. 30 (2), 196-202 (2012).

Tags

Инфекция выпуск 74 инфекционным болезням иммунологии микробиологии медицины клеточной биологии молекулярной биологии бактериальных инфекций и микозов заболеваний опорно-двигательной биологических факторов богатой тромбоцитами плазмы бактериальные инфекции противомикробным убить кривой анализа, Клинический изолят кровь клетки клинические методы
PRP как новый подход для предотвращения инфицирования: подготовка и<em&gt; В пробирке</em&gt; Антимикробные свойства PRP
Play Video
PDF DOI DOWNLOAD MATERIALS LIST

Cite this Article

Li, H., Li, B. PRP as a New Approach More

Li, H., Li, B. PRP as a New Approach to Prevent Infection: Preparation and In vitro Antimicrobial Properties of PRP. J. Vis. Exp. (74), e50351, doi:10.3791/50351 (2013).

Less
Copy Citation Download Citation Reprints and Permissions
View Video

Get cutting-edge science videos from JoVE sent straight to your inbox every month.

Waiting X
Simple Hit Counter