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Immunology and Infection

腫瘍標的の測定成長と遺伝子発現ダイナミクス Published: July 6, 2013 doi: 10.3791/50540
* These authors contributed equally

Summary

これらの実験の目的は、弱毒化の増殖および遺伝子発現の動態に関する定量経時データを生成することである

Abstract

これらの実験の目的は、弱毒Sの増殖および遺伝子発現の動態に関する定量経時データを生成することである腫瘍の内部で成長細菌コロニー。

我々は、OVCAR-8(NCI DCTD腫瘍リポジトリ、フレデリック、MD)、ヒト卵巣癌細胞系の皮下注射によってマウスにおける異種移植モデルの腫瘍を発生した。

私たちは、S.の弱毒株を変換可視化2用プラスミド構成的に発現ルシフェラーゼ(luxCDABE)と: ネズミチフス菌 (SL1344 phoPQ-1 ELH430)。マウス1〜本質的に非病原性を維持しながら、これらの株は、特に腫瘍を植民地化する。

測定可能な腫瘍が確立した後、細菌は、投与量を変化させた尾静脈を介して静脈内注射した。腫瘍局在化、細菌の遺伝子発現を用いた60時間かけてリアルタイムでモニターしたvivoイメージングシステム(IVIS) あっ 。各時点で、腫瘍を均質化し、切除し、そして遺伝子発現データとの相関のための細菌コロニーを定量するために播種した。

併せて、このデータは、腫瘍の内部に成長する細菌のin vivo増殖および遺伝子発現ダイナミクスの定量的尺度を与える。

Introduction

合成生物学は、過去10年間で急速に進んでおり、現在はエネルギーと健康に重要な問題に影響を与えるように配置されている。しかしながら、臨床分野への展開は安全上の懸念及びin vivoでの遺伝子回路の設計基準を開発するの有無によって遅くされている。加速高い衝撃の医療アプリケーションでは医療インフラ、管理されたラボ環境の外に機能する遺伝子回路、安全かつ臨床的に受け入れられる微生物ホストと直接インタフェースする方法を利用して必要になります。

菌株の数は、腫瘍において優先的に増殖する能力に起因する癌治療のために研究されてきた。これらは、C.が含まれているノビイ、大腸菌、V. cholorae、B.ロンガム 、およびS.ネズミチフス3-8。S.彼らは9-12ヒト臨床試験の数は、安全性と寛容性を示してきたようにネズミチフス菌は、特定の関心を生成しました。これらbacteri最初にホストの免疫系の刺激を介して、癌細胞代謝に必要な栄養素の欠乏による抗腫瘍効果を作成することが示された。治療上の貨物の生産は後で遺伝子改変を通して追加されました。これらの研究は、腫瘍治療のための細菌の使用における重要な進歩を表しているが、既存の努力の大半は、典型的に高い投与量、オフターゲット効果、およびホスト抵抗13-16の開発の送達をもたらす高レベルの発現に依存している。

さて、合成生物学は、高度なセンシングと配信17-20を実行できる計算に設計遺伝子回路を利用することによって、プログラム可能な貨物の生産を追加することがあります。これらの回路は、腫瘍特異的な刺激を感知し、必要に応じて貨物の生産を自己調節する送達システムとして機能するように設計することができる。しかし、 生体内でこれらの回路の機能を研究することはこれまで挑戦してきました。

ve_content ">プラスミド、合成回路の共通のフレームワークであるため、我々は、マウスモデルを用いたin vivoでプラスミドベースの遺伝子発現のダイナミクスを特徴づけるための方法を説明しますこれらのメソッドは、タイムラプス発光イメージングと生体内分布の定量的測定を利用しています一緒に、これらのアプローチは、臨床応用のための生体内でのプラスミドベースのネットワークを研究するためのフレームワークを提供します。

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Protocol

1。細胞調製

  1. 標準的な細胞培養技術を用いて継代細胞系。この実験では、OVCAR-8細胞(NCI DCTD腫瘍リポジトリ、フレデリック、MD)を用いた。 100% - 80のコンフルエントターゲットに細胞を成長させる。
  2. 5分間5ミリリットルトリプシンで細胞をインキュベートし、その後、5ミリリットルRPMI培地+ FBS、トリプシンを不活性化するために追加します。
  3. 収穫と血球のセルを数える。 5×10 7細胞/ ml、またはフラスコ当たり約200μlの目標濃度でフェノールレッド不含DMEMに再懸濁する。
  4. 減少増殖因子マトリゲル(BD Biosciences社)15%を追加して、移植まで氷上で細胞懸濁液を保つ。

2。腫瘍移植

  1. イソフルラン3%を使用した4週齢の雌NCR / nuマウスを麻酔し、深い麻酔を確保するために、約5分待ちます。麻酔下ながら、乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を使用します。
  2. 1ミリリットルの注射器で細胞を(腫瘍あたり100μl)をロードし、27 1を添付/ 2ゲージの針。
  3. 2国間後肢フランク注射部位のそれぞれについて、テントを作るとベースで細胞を注入するためにピンセットで優しく肌を持ち上げます。血を生産、あまりに深く浸透しないように注意してください。優しくはねずにシリンジをピンセットで取り除いてください。
  4. 2の腫瘍直径まで20日 - - 4ミリメートルに達した10毎日腫瘍の成長を監視します。

3。細菌の準備

  1. -80℃の冷凍庫ストック又は冷蔵プレートから3ミリリットルLB培地+アンピシリン中の細菌の一晩培養を開始します。この実験では、使用されるS.ネズミチフス菌株ELH430(SL1344 PhoPQ-のaroA-)。
  2. 午前中は、フィルタリングLBに文化1:100に希釈し、OD600 0.4に成長 - 0.6。
  3. スピンダウンとリンで3回洗浄する生理食塩水(PBS)は、バッファリングされ、0.1の最終OD600(1×10 7細胞/ ml程度)で再懸濁します。

4。細菌インジェクション

  1. 動物を麻酔あなたの利き手に向かって指している尾を持つその側にDポジション。麻酔下ながら、乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を使用します。
  2. 温水または熱ランプを用いて尾静脈を拡張する。
  3. 1ミリリットルのシリンジ内細菌(マウス当たり100μlの)をロードし、90度弱の先端を曲げる。
  4. 尾静脈とシリンジ先端を合わせ、浅い深さ(全く抵抗を感じないはず)に浸透し、細菌を注入する。成功した注射用血流の変位を観察する。

5。マウスイメージング

  1. 誘導室に動物を麻酔はその後イメージングプラットフォーム上の各マウスを置きます。麻酔下ながら、乾燥を防ぐために、目に獣医軟膏を使用します。時点との間の定量的な結果を保証するために正確な位置決めを維持する。
  2. IVISスペクトラムイメージングシステム(キャリパーライフサイエンス)を使用して、画像の動物。それらの間のイメージング以上1動物、場所光バリア、クロスilluを防止する場合mination。動物は、細菌の局在を確認するために、腹側の第1の結像されるべきである。
  3. 画像の動物は背IVISの実験期間(36時間)ごとに2時間を使って。与えられたROIのタイムコースを生成します。

6。細菌の生体内分布を定量

  1. 吸収おむつで背中にCO 2と場所を使って動物を安楽死させる。
  2. 2後肢脇腹皮下腫瘍を露出するために動物を回します。腫瘍を分離除去するために周囲の皮膚組織をカット。ピンセットで腫瘍を保持し、逆はさみの動きを使って皮膚を除去。皮膚の大部分が分離されたときに、完全にピンセットを用いて腫瘍を取り除く。
  3. 予め秤量マイクロチューブ内の臓器を置きます。これらのチューブの質量が大きく異なりますので、それは定量的な結果のためにそれらを事前に比較検討することが重要です。

7。細菌の生体内分布を定量

  1. 各時点で、消費税のために、腫瘍重量を量る。
  2. 500μlのPBS + 15%のグリセロールを追加し、組織特異Tearor(BIOSPEC)を使用してホモジナイズする。サンプル間のエタノールでホモジナイザー3回すすいでください。
  3. 段階希釈し、細菌コロニーカウント用のプレートを生成します。単板を使用し、事前区分プレート上にプレートを複数の希釈に。

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Representative Results

このプロトコルを使用して、我々は腫瘍標的細菌のin vivo増殖および遺伝子発現ダイナミクスに関するデータを生成することができる。全体的なワークフローを図1に要約する。

第一段階では、細菌(緑)画像のレポーターとしてルミネッセンス(青)で遺伝子発現を測定するためにIVISを用いて動物を注入する。

次に、第二段階では、我々物品は、均質化、およびコロニー数についてのプレート腫瘍は、腫瘍の成長細菌の数を決定する。

菌株によって生成された生物発光を可視使用IVIS( 図2)である。 5×10 5の周り最小植民投与量( 図2A)を注入した投与量の信号が増加。すべての場合において、弱毒化細菌はいずれか一方のみの腫瘍特異的に定着するか、またはマウスにおいて成長しなかっすることができる。信号がnormaliに輝きユニットを用いて定量化され10の典型的な値^ 6以上は植民地化の指標である露光時間、のためにZE。

与えられた感染症のために、24〜48時( 図2B)を介して時間とともに信号が増加。ピーク発症は注射後36時間程度ですが、タイミングが使用されている菌株とプラスミドによって異なる場合があります。定量的な結果を確保するために、まったく同じように毎回マウスを配置してください。

次の実験では、細菌biodistrutionは、時間( 図3)上の細菌の増殖を測定するために定量化される。腫瘍における生菌を連続希釈( 図3A)における腫瘍およびめっきを切除し、均質化することによって定量される。他の器官も同様に定量することができる。腫瘍脾臓比は、細菌の特異21,22の典型的な尺度であるので、ここでは、脾臓を使用している。

これらのカウントは、私たちは細菌の人口を測定することができます時間をかける( 図3B)。左側には、我々は、バッチ培養実験の場合より大幅に遅い1-3時間の倍加時間で、実験期間を通して細菌数は、腫瘍で着実に成長することがわかります。この減少率は、おそらく腫瘍環境の貧しい栄養条件によるものです。右側には、我々は、腫瘍脾臓比を定量化し、それが実験を通して増加することを観察しました。この知見は、細菌が腫瘍の成長を続けながら、脾臓数は本質的に一定であるという点で、特異性を示しています。

図1
図1。全体的な実験的プロセスの概略図。(a)は、細菌を尾静脈に注射し、腫瘍特異的にコロニーを形成している。(b)の各時点で、腫瘍を切除し、均質化し、コロニー数のためにメッキ。許可25を得て転載。著作権2012年米国化学会。

図2
図2。 IVISを用いた全動物発光イメージング。注射剤、(b)は経時的に(a)は、信号が増加する。パーミッション25に適応した。著作権2012年米国化学会。

図3
図3。成長のダイナミクスを測定するためのメッキやコロニーカウント。()連続希釈は、個々のコロニーを代表脾臓サンプル(下)にカウントすることができます。(b)これらのカウントに従うことにより、我々は、腫瘍内部の細菌の生体内人口対策作成することができます( Bのように</ strong>の脾臓比)(Cのように)と、プラスミドない細胞の数や腫瘍(Dのように)。パーミッション25に適応した。著作権2012年米国化学会。

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Discussion

この手順を用いて、腫瘍を定着細菌の増殖および遺伝子発現動態のタイムコースを生成することができる。これらの測定は、定期的にバッチ培養又はマイクロ流体デバイスにおいてインビトロで行われるが、それらはインビボで行うことがはるかに困難である。

これらの方法を適用することができるいくつかの変更がある。我々はマウスモデルを生成するためにOVCAR-8細胞株を使用しながら、他の細胞株の数を同等に使用することができる。例えば、luciferized細胞株は、腫瘍および細菌ルシフェラーゼチャネルの3D局在を可能にすることを使用することができる。我々は、バイラテラル後肢脇腹モデルを使用しながらさらに、異なる数および注入部位の位置が異なる現象を研究するためのモデルを生成するために使用することができる。例えば、もし腫瘍の大きさは重要な変数である、細胞の連続希釈物を調製することができ、Smalの生成、同時に異なる部位に注入LERと大きいサイズの腫瘍。最後に、我々はSを使用しながらネズミチフス菌株ELH430、Sの他の株Cなどのやその他の細菌注射のための細菌数を調整する必要があるかもしれませんがノビイは、大腸菌、V. cholorae、B.ロンガムは 、これらの方法で同等に使用することができる。

このプロトコルにおいて最も重要なステップは、マウス癌モデルの作成、および細菌の調製および注入を含む。癌モデルを作成するために、細胞数および濃度、注入量および注入部位の配置精度が大幅に生成された腫瘍の整合性を強化する。我々は同等に、寸法、形状、および配置腫瘍が最も定量的に比較可能なデータを作成することを発見した。細菌の調製のために、それは完全に注入する前に、それらを洗浄するために、慎重に菌濃度、量、及び注射部位をコントロールすることが重要である。これらの手順は、AVOに必要とされるイド過度の免疫注射の影響、および独立したマウスモデルとの間に定量的な比較を維持するために。腫瘍を入力して細菌の数が注入された用量のほんの一部であるので、マウスの間に注入された細菌数の変動は、コロニーの進行に劇的な違いをもたらすことができる。追加情報については、in vivo試験 3、4 定量するための細菌の準備に関するいくつかの追加の資料を参照してください

これらの技術は、特定の研究の様に高度に適応可能であるが、いくつかの制限は、特定のアプリケーションに拡張するために存在する。例えば、高細菌数の静脈内送達は、特定の細菌および/または免疫学的影響によるマウスモデルのために望ましくないかもしれません。政権の一つの代替経路は経口デリバリー(強制経口投与)、Joveの23に記載されている手法である。さらに、タイムラプスイメージングは​​、仕様に応じて、非常に労働集約的なことができますFIC実験の長さ、時間分解能、および利用可能な機器。イメージングプロセスを自動化するこれらの負担の多くを軽減するだけでなく、新たな技術的課題を紹介します。例えば、心拍数、呼吸数、温度などのマウスバイタルを連続的に追加の装置によって監視されなければならない。また、長期的な麻酔のために、眼軟膏は、適切な水分を維持するために使用されなければならない。最後に、マウスに送達麻酔薬のレベルを連続的に麻酔の適切な深さを維持するように調整されなければならない。麻酔薬送達にマウス不可​​欠な測定値を統合し、閉ループフィードバック制御システムが大きく、このプロセスを容易にするであろう。

合成生物学は、多くの成功17、19、20を達成しているが、 生体内のアプリケーションするように操作する遺伝子回路を適用する設計原理を知らせるために生体時間のコース 、定量的な必要になります。S.ネズミチフス菌は、臨床合成BIOLための優れた株である癌治療のためのOGYそれはE.と同様であるので大腸菌は 、特に腫瘍を定着し、そしてヒト臨床試験6、12、14、22に安全に示されている。さらに、最近の研究では、多くの公開回路Sに機能することを発見した変更せずに24 。ここに記載の実験プラットフォームを使用して、我々は、最近、プラスミドベクター25の固有の不安定性を使用してプログラムすることができる方法を動的インビボ発現プロファイル記載。さらに、最近の研究では、安定インビボ 23 プラスミドベクターを維持するための新規な方法を開発した。

ルシフェラーゼは、その感度5 vivoイメージングのために使用される一般的な記者ですが、GFP 26を用いてin vivoでの遺伝子発現定量的に優れた研究の例がある。 GFPを使用する研究者が、生体内での個々の細菌の時空間ダイナミクスを研究することができるでしょう。我々は皮下モデルを使用しながら、さらに、癌のより関連性の高いモデルに向かってこれらの研究を拡張することは、さらにそれらの予測力7に増加するであろう。このような将来の研究では、臨床応用のための生体内で合成生物学における次世代のを可能にすることができる。

コンサートの両方の実験と計算手法を開発する生体遺伝子回路における工学に重要になります。計算モデルは、急速に潜在的な出力を探索するシステムパラメータを調べることができますが、密接に関連したままにした実験結果に結び付けておく必要があります。これまでのところ、これらの結果は、部分的に生体内で遺伝子回路を研究するための方法が不足しているため、定量的に得ることは困難であった。

このプラットフォーム上に構築、将来のアプリケーションは、さらに、腫瘍特異的刺激および自己調節の貨物生成物を検知する、発現ダイナミクスの範囲を拡張組み換え遺伝子回路が含まれイオンは、必要に応じて。 生体回路増加これらの高度化として、それらを調整するために必要な定量的なデータに対する要求も増加します。我々は長期的なマウスのイメージングの新たな技術革新とともに、このプロセスが可能となり、方法はここで説明すると信じています。

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Disclosures

利害の衝突は宣言されていない。

Acknowledgments

私たちは、原稿の重要な読書や編集のためにH.フレミングに感謝します。この作品はMisrockポストドクトラルフェローシップ(TD)とNDSEG大学院生フェローシップ(AP)によってサポートされていました。 SNBはHHMIの研究者でもある。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1 ml syringe BD Biosciences 309602
3/10 cc Insulin Syringe BD Biosciences 309301
PrecisionGlide Needle BD Biosciences 301629
RPMI Medium 1640 (1X), liquid, with L-glutamine Invitrogen 11875-119
Ampicillin Sigma Aldrich A0166-5G
LB Agar Broth Sigma Aldrich L2897
Luria-Bertani broth BD Biosciences 244610

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References

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Tags

感染号77、がん生物学、免疫学、感染症、微生物学、遺伝学、分子生物学、細胞生物学、生物工学、医用生体工学、細菌、合成生物学、生物剤、タイムラプスイメージング、合成生物学、力学(物理学)、合成生物学、癌治療、細菌の個体群動態、
腫瘍標的の測定成長と遺伝子発現ダイナミクス<em&gt; S.ネズミチフス菌</em&gt;バクテリア
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Danino, T., Prindle, A., Hasty, J.,More

Danino, T., Prindle, A., Hasty, J., Bhatia, S. Measuring Growth and Gene Expression Dynamics of Tumor-Targeted S. Typhimurium Bacteria. J. Vis. Exp. (77), e50540, doi:10.3791/50540 (2013).

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