Summary
この記事では、ゴキブリ腹神経索の解剖とcercal神経と結合子から細胞外記録を記述する。誘発反応はcercal神経またはcercusの複数形の直接的な機械的刺激の電気刺激によって生成されます。
Abstract
ゴキブリ腹側神経索調製物は神経動物行動学実験のために、ニューラルネットワークモデル、および殺虫剤の生理学的効果を試験するための扱いやすいシステムである。この記事では、昆虫の神経系は、環境摂動にどのように応答するかを分析するために使用することができゴキブリの感覚モダリティの範囲を説明しています。ここに重点がワモンゴキブリにおける巨大ファイバ伝送にcercusの複数形が介在する逃避行動である。これは、その場に備えて神経活動の再現性のある録音を生成するために、中程度の解剖技術および電気生理学的な専門知識を必要とします。ペプチドまたは他の化学試薬は、次いで生理食塩水を含む溶液中で、神経系に直接適用することができる。中枢神経系の興奮状態のためのプロキシとして働くことができる殺虫剤はまた、前の切開およびエスケープ回路に投与することができる。これに関連して本明細書中に記載のアッセイはまた、rに有用であろう四肢再生とどのPの神経系の発達の進化に興味esearchers アメリカーナは、確立されたモデル生物である。
Introduction
そこに4,000人以上のゴキブリ種があるが、約30の家庭害虫である。おそらく最も有名なアフリカに起源名前の誤りワモンゴキブリワモンゴキブリであり、現在では地球上のほぼどこにでも発見された。熱帯地方での急速な走行速度1と回避行動に加えて、P.アメリカーナは、飛行2,3することが可能である。
ゴキブリ中枢神経系（CNS）の主な特徴は、制御プロセス4,5のセグメント化され、その性質および分散化である。脳、胸部、および腹部神経節、腹側神経索（VNC）を形成する一対の神経節間の結合子によって結合されている。
各セグメントでの神経節はセンターを統合している。これらは、単にそれらの下に血液脳関門透過性を担う細胞を含む外、皮質領域、および神経細胞の細胞体のorigiから構成されているその神経節でのNAT変換。これらの細胞体はニューロン、調節ニューロン、または運動ニューロンに属していてもよい。彼らは、原点（ローカル介在ニューロン）の神経節内にとどまる軸索、またはCNSの神経節の間に突出した軸索（神経節間の介在ニューロン）を供給または周辺筋肉細胞（運動ニューロン）に終了します。ほとんどの細胞体は、神経節皮質5に腹または腹部外側に位置している。対になった、神経節間の結合子だけ軸索なし神経細胞体が含まれています。
神経節の神経網は、グリア細胞（神経膠）、軸索管、軸索の束、および神経細胞の樹状突起（神経突起）が含まれています。神経網は、神経細胞体を欠いている。これは神経細胞および入力の積分間の直接的な通信が発生するシナプス神経節内の領域である。
ワモンゴキブリPの能力（足、漢を検出して、急に近づいて捕食者への対応アメリカーナD などが 。）cercusの複数形と巨大な繊維系の6,7で構成されていますリフレックス回路に起因している。 cercusの複数形は、腹部の終わり（ 図1）上にある角状、風の影響を受けやすい構造のペアです。 Pにアメリカーナ各尾角の腹面は約200糸状（糸）14の列に編成された毛髪が含まれています。これらの列のうち9は、一貫して関連した受容体細胞および軸索の応答特性に応じて異なる動物で同定することができる。それぞれの髪は、それが列固有である1面内で最も容易に曲げることを可能にするソケットです。その面に沿って一方向に髪の動きは、受容体細胞内の脱分極および感覚神経における活動電位のバースト（AP）を誘導する。反対方向への移動が進行中の自発的APが8を阻害する。レスポンスのたわみや方向性の好ましい面は、各列に異なっている。このように、filiform本の毛髪 - レセプター複合体は空気の動きを検出するだけでなく、APは、気流が発信された方向の形で、「コーディング」のためだけでなく、担当している。 CNSによるこの情報の処理は、「適切な」逃避反応6,7になる。感覚毛のこの機能は、柱状特異性は、動物から動物に保存されている。
各糸状の毛の受容体細胞は、（受容体細胞の軸索9のAPのバーストまたは阻害をもたらす神経イベントに毛の機械的変位を伝達する責任があります。APはcercal介して端子腹部神経節（A6）に旅行彼らは腹側神経索（VNC）の巨大軸索とシナプス神経XIは、巨大軸索は、逃避行動6,10,11をもたらす、運動ニューロンの伝達およびその後の励起に関与すると考えられている。
行動レイテンシーOPの逃避反応F アメリカーナは、任意の動物7の最短の一つです。行動待ち時間が機械受容の刺激の到着と逃避応答の開始の間の時間です。攻撃ヒキガエルから試行脱出を記録するために、高速撮影技術を用いた実験では、ゴキブリを移動7,12ゴキブリ舌伸長の開始から約40ミリ秒（時間的に離れてヒキガエルからの回転を開始することが観察された。制御された風力パフを使用して、行動の待ち時間は11ミリ秒に減少させることができた。他の実験はさらに低い速度（3ミリメートル/つつ（2ミリ秒600ミリメートル/加速度付き）12ミリメートル/秒の最小風パフ速度は、逃避反応を呼び起こすことができることを明らかにした秒）は12を移動を停止する、ゆっくり歩いてゴキブリが発生していました。
通常、巨大ファイバシステムと逃避行動の間に存在する強い相関関係がうまく13,14文書化されています。 instの中特定のセルが必要な特定の行動を喚起するのに十分であるancesセルは、コマンドニューロン15,16と呼ばれている。 Pの風エスケープ回路巨大介在ニューロン（GIS） アメリカーナは反射的に必要ではない。実験的に切除されたGISを活用した動物は、まだそのため、これらのGIをコマンドニューロン17,18考慮されていない逃避行動を示す。感覚回路に吻側である子宮頸部接続詞を切断することも脳からの入力を下降するエスケープ19の方向に影響を与えることを示す、行動に影響を与える。細かい制御と冗長性のこれらの局面は、生物の生存にとって最も重要であり、生体アミン20を介して神経化学的変調によって補完されています。
P.アメリカーナ神経索の準備はRoederの<の先駆的な仕事から始めて、過去何十年にわたってneuroethologistsためのエレガントなモデルシステムでした> 21 SUP。これは、ディスプレイを記録し、それらの入力22,23,24に巨大介在ニューロンによる一次知覚活動とその結果応答を分析するために学生を可能にします。識別可能な神経回路は、環境への行動反応の根底にあるという考えを伝えることに加えて、これらの演習は、この一般的な家庭害虫によって行われた生物学的な貢献に感謝を植え付ける必要があります。
Protocol
1。解剖
このプロトコルを通して使用さゴキブリ食塩溶液は以下の組成を有する。
ゴキブリ食塩水36：（100ml 100ml用のグラム）
210のNaCl（1.227グラム）
2.9のKCl（0.0216グラム）
1.8のCaCl 2（0.0265グラム）
0.2のNaH 2 PO 4•2H 2 O（0.0032グラム）
1.8のNa 2 HPO 4•7H 2 O（0.0483グラム）
（pHは7.2。1 M NaOHまたは1M HClでpHを調整する）。
- 堅牢cercusの複数形（ 図1）があり、貯蔵タンクの男性ゴキブリを選択します。男性は解剖が容易であり、かつ全く卵巣と卵の塊を含まない、男の最後のセグメントは、女性に比べて狭い。 Pの男性アメリカーナは cercusの複数形の間の短いスタイラスのペアを持っている。これらのスタイラスは、女性では観察されない。
- 翼、足と頭を切り落とし、Diと体、腹側を上にして、ピンSHシリコーンエラストマーが並ぶ。
- 鉗子で腹側のプレートをピックアップし、細かいハサミでそれらを切断し、後端から始まり、前方に取り組んでいます。 cercusの複数形の乾燥を維持しようとしているときには、必ず生理食塩水で湿った内臓を保つ。一つはcercusの複数形を濡らすから生理食塩水を防ぐために腹部を上方に配置するために、ワックスやゴムの部分を使用することができます。彼らが濡れた場合は、ティッシュペーパーの切れ端で、それらを乾燥させます。側に内臓し、白質（脂肪体）を押します。 VNCは、フィールドの中央である腹部の長さを実行し、光沢のある気管の間に表示されるはずです。神経索は半透明であり、照明は（ 図2）が適切に調整されるまで、最初は見えにくくすることができる。鉗子や虫ピンとVNCを処理しない、代わりにガラスプローブを使用して操作します。
- ピンセットで、微細なガラスの必要一対の神経索から可能な最良のように、動物の気管システムを一掃LESは、非常に慎重に、A6およびA5やA5とA4神経節（ 図3）の間で長手方向のVNC接続詞を分割します。クレードルcercusの複数形と短縮昆虫ピンとワックスまたは調製（ 図4AおよびB）を合わせてカット可能なシリコーンエラストマーのウエッジと生理食塩浴から上向きに腹部。神経節（ 図2Dおよび5）内に突出cercal神経を損傷しないように、最後の腹部のセグメント内に追加できるように注意してください。
2。細胞外記録法
- 解剖し準備、顕微鏡、および記録装置（ 図6）ニューロンからの信号をオーバーライドすることができ、外部、特に交流、電場を遮断するために、ファラデーケージの中に設定する必要があります。
- それは顕微鏡のステージを見下ろすされるように顕微鏡を配置します。製剤は、ステージ上に配置されると、高強度の照明ビームの位置を調整するそれを最大限可視化のために。
- （特定のハードウェアとソフトウェアの設定については、以前に25を説明してきた）統合されたデータ記録部にAC / DC差動アンプを接続します。吸引電極を保持ヘッドステージは、アンプに接続する必要があります。 Clで被覆された銀のアース線-より安定したレコーディング中の腹部の結果に挿入。その理由は、体腔内の溶液が皿の中の入浴流体と接触していない場合には、記録電極に関連付けられた流体は、接地のままである。
- 4 kHzに記録周波数を設定します。 500 mVで（これは微量の可視化を最適化するように調整することができる）に電圧スケール（y軸）を設定する。刺激に反応して神経活動を記録するために、連続またはオシロスコープモードで録音ソフトウェアを実行します。
- A5に近いのVNC接続詞の1をカットし、吸引電極にA6に装着切り口を置く。 Pに確認してください神経を吸引する前に内部の銀線をカバーするために吸引電極に生理食塩水をULL。
- 各尾角に位置して毛の上の乾燥ピペットブロー空気と。記録された結合に尾角の同側の毛を刺激すると、反対側の1とは異なる応答を与えるかどうかを確認します。応答の振幅と刺激中の指定された時間間隔でのスパイクの数をメモします。
- 記録cercal神経に吸引電極を移動します。必要に応じて、より良いフィット感を得るために、より小さな開口部に電極先端に切り替える。
- A6に近いcercal神経を切断し尾角につながる神経を吸う。活動電位の自然発火があるはずです。今、尾角に空気を吹き付けると応答に注意してください。
3。電気的に募集を決定するために、感覚神経を刺激
- それはトレース（100〜500 MSEを記録するようにモードを掃引する録音ソフトを変更するC）たびに刺激がトリガされます。
- 刺激装置の出力に刺激電極を接続します。
- 2ミニフックリードまたはクリップで、刺激ケーブルを接続します。
- 記録部上のトリガ入力に刺激装置からのBNCトリガ出力を接続します。
- 10ミリ秒、周波数：1Hzで、電圧：必要に応じて（ちょうどしきい値を超えると、最大応答を得ることができること）のレコーディングに信号を得るために調整し、：時間：ディレイ0.3秒以下の刺激パラメータは、応答を呼び起こす必要があります。高電圧が神経にダメージを与えることができるように募集のための最大しきい値よりもはるかに高い電圧に行く理由はありません。
- 長い神経根を刺激吸引電極（ 図7、矢印の頭）に引き込むことができるように、可能な限り遠位としてcercal神経を切った。 A6およびA5または別のセグメントより前方の間の結合を使用することができます。
- 記録吸引電極を設定することができますので、PU電極中に切断された結合を事前にチェック！神経を吸引する前に内部の銀線をカバーするために、吸引電極にいくつかの生理食塩水を引くようにしてください。刺激電極はまた、（A3近い腹部に最適です）バス生理食塩水に接地されていることを確認します。
- 活動電位が画面に表示されるまで増加する電圧の単一刺激のシリーズを提供します。一つは、応答を募集する最小限の刺激電圧と継続時間の記録を確認する必要があります。接続詞におけるシナプス応答が観察されるまで、強度を上げる。巨大軸索からの大きなスパイク（細胞外のAP）が最初に表示され、その後、他の小さいのAPも観察することができる。
Representative Results
空気のパフによるcercusの複数形の毛の刺激は、いずれかの腹部神経節またはcercal神経自体（ 図8）との間に接続詞に付着した細胞外吸引電極を用いて記録することができ、一次感覚ニューロンの放電が発生します。二つの領域から記録されたスパイク振幅がミリボルト、数マイクロボルトのオーダーである。なぜなら神経節における感覚統合の複合活動電位またはcercal神経から記録された個々のスパイクとして観測スパイクの数は、連結語からの記録で観察されるよりも格段に大きい。しかしまた、原因電極と神経組織との間の緊密なシールするために、結合の記録が実質的にノイズの少ないがあることに注意してください。
cercusの複数形大きなスパイクで空気を吹くことによって結合子（ 図8A）で観察することができる。この刺激法を用いて、A3とA4との間の典型的なレコーディング LY巨大ニューロン（単数または複数）の大きなスパイク特性を示す。物理的に鉗子でcercusの複数形をこすりながらcercal神経からの記録は、活動の強力なバスト（ 図8B 1）を生成した。他の記録では、空気の2パフは、それぞれcercal神経の急激なつぶし応答（ 図8B 2）を生成した。電気A3とA4の間の結合における吸引電極と記録とのcercal神経を刺激すると、1は（ 図8C 1）の応答を誘発する刺激閾値を観察することができます。 cercal神経の電気刺激は、明らかにこのような温度（ 図8C 2）のような操作的薬理学的薬剤を用いた研究や、地域の環境を取り囲んで、ために定量することができる接続詞での応答を誘発する。
fig1.jpg "/>
図1。そのままcercusの複数形とワモンゴキブリ 。
図2。取り外し腹キューティクルに見られるようなゴキブリ神経索の腹側図（A）。矢印で概説されたセグメントの拡大図（B）に見られる。 （C）において、接続詞は、ガラスプローブとA4とA3の間にこぼれた。 6 番目の腹部神経節は2 cercal神経が尾終わりに出ると、（D）に示されている。
図3。ゴキブリ神経索の概略腹側のビュー。
図4。cercusの複数形は、生理食塩水浴から上向きに配置されている。開いた腹部が出cercusの複数形を保つために、シリコーンエラストマーの小さな楔形状片を上昇さローチの尾の端に生理食塩水（A）が殺到することができます浴の（B）。
図5。（矢印で概説さ）cercal神経と6 番目の腹部神経節。
図6。機器が設置しました。 LARを見るにはここをクリックしてくださいGER図。
図7。刺激と記録電極を設置しました。
図8。様々な刺激手順に接続詞やcercal神経の神経録音。cercusの複数形で空気を吹かしながら、A3とA4の間に接続詞から吸引電極で記録（A）。物理的に（B 1）または空気パフを提供する、（B 2）cercal神経の活動の急速なバーストで結果をこすりながら、どちら吸引電極を有する一次cercalニューロンから記録。電気cercal神経を刺激することは接続詞で応答を生成します（
Discussion
この古典的な製造のための技術を発揮する理由の一つは、cercusの複数形のシステムがあったことであり、まだ神経回路の発達の問題に対処するだけでなく、シナプスの修復および再生26〜31についての質問での研究の活発な分野である。ゴキブリ腹側神経索において活性を誘発するいずれかの方法は、神経系機能に対する薬理学的物質又は殺虫剤の効果を調べるために使用することができる。これらの実験は、単純に生理食塩水に神経活性化学物質を溶解することによって行われます。接続詞または運動神経から記録しながら、通常の入浴培地でこの溶液を交換した後、誘発または自発的活動の変化は、CNSの機能に対する化学物質の効果の一貫性のある読み出しを与えるように観察することができる。
すべての神経生理学の実験のように、一般的な問題は、電気的なノイズです。これらの製剤のための信号品質の、おそらく最大の要因I神経組織のSの吸引電極シール。完全cercal神経または結合で描画しないタイトなシールが理想的です。記録はまた、神経索および鉱物油およびワセリンの混合物でVNC絶縁膜下に置かれた二重フック電極を作製することができる。この混合物をシリンジに充填し、神経索32の周囲に排出することができる。また、慎重な解剖は、いかなる中枢神経系の調製と、ここのように非常に重要です。いくつかは、それが簡単に背キューティクルを解剖によってCNSにアクセスするために見つけることができます。これは、腹側神経索を損傷する可能性を低減しながら、このアプローチを用いて内臓の全てを除去することはより困難であることができる。
それはここでは説明しませんが、この準備は巨大介在ニューロン32,33の細胞内記録に適している。全体の神経索はまた、同時に複数の記録及び刺激電極を収容するために除去することができる。触角葉、キノコBOのファクト探査DY、およびその他の前部CNS構造が進行中34〜35のままです。ゴキブリ中枢神経系は、現代の神経生物学的研究に光を当てるために続けているが、この特定の準備は、学部学術の研究室で使用するのに十分に簡単です。
Disclosures
著者らは、利害の対立が存在しないことを宣言します。
Acknowledgments
私たちは、イラストHyewonクーパーに感謝します。
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Reagent | |||
| Sylgard | Dow Corning | 182 silicone kit | 182 silicone elastomer kit |
| NaCl | Sigma-Aldrich | S7653 | |
| KCl | Sigma-Aldrich | P9333 | |
| CaCl2 | Sigma-Aldrich | C5670 | |
| NaH2PO4•2H2O | Sigma-Aldrich | 71505 | |
| Na2HPO4•7H2O | Sigma-Aldrich | S9390 | |
| NaOH | Sigma-Aldrich | 221465 | To adjust pH |
| HCl | Sigma-Aldrich | H1758 | To adjust pH |
| Material Name | |||
| Dissecting tools | World Precision Instruments | assortment | |
| Insect Pins | Fine Science Tools, Inc | 26001-60 | |
| Dissecting microscope | World Precision Instruments | PZMIII-BS | |
| Glass electrodes | Sigma-Aldrich | CLS7095B5X | Box of 200, suction electrodes |
| Micromanipulator | World Precision Instruments | MD4-M3-R | Can fix for base or on a metal rod |
| Silver wire (10/1,000 inch) | A-M Systems | 782500 | |
| Computer | any company | ||
| AC/DC differential amplifier | A-M Systems | Model 3000 | |
| PowerLab 26T |  AD Instruments |
27T | |
| Head stage | AD Instruments |
Comes with AC/DC amplifier | |
| LabChart7 | AD Instruments |
||
| Electrical leads | any company | ||
| Glass tools | make yourself | For manipulating nerves | |
| Cable and connectors | any company | ||
| Pipettes with bulbs | Fisher Scientific | 13-711-7 | Box of 500 |
| Beakers | any company | ||
| Wax or modeling clay | any company or local stores | ||
| Stimulator | Grass Instruments | SD9 or S88 | |
| Plastic tip for suction electrode | local hardware store (Watt's brand) | ¼ inch OD x 0.170 inch ID | Cut in small pieces. Pull out over a flame and cut back the tip to the correct size. |
References
- Full, R. J., Tu, M. S. Mechanics of a rapid running insect: two-, four- and six-legged locomotion. J. Exp. Biol. 156, 215-231 (1991).
- Ritzmann, R. E., Tobias, M. L., Fourtner, C. R. Flight activity initiated via giant interneurons of the cockroach: Evidence for bifunctional trigger interneurons. Science. 210, 443-445 (1980).
- Libersat, F., Camhi, J. M. Control of cercal position during flight in the cockroach: a mechanism for regulating sensory feedback. J. Exp. Biol. 136, 483-488 (1988).
- Ganihar, D., Libersat, F., Wendler, G., Cambi, J. M. Wind-evoked evasive responses in flying cockroaches. Journal of Comparative Physiology. A, Sensory, Neural, and Behavioral Physiology. 175, 49-65 (1994).
- Pipa, R. aD., F, The American Cockroach. , Chapman and Hall. 175-216 (1981).
- Westin, J., Langberg, J. J., Camhi, J. M. Responses of giant interneurons of the cockroach; Periplaneta americana to wind puffs of different directions and velocities. Journal of Comparative Physiology A: Neuroethology, Sensory, Neural, and Behavioral Physiology. 121, 307-324 (1977).
- Camhi, J. M., Tom, W., Volman, S. The escape behavior of the cockroach Periplaneta americana. J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sens. Neural Physiol. 128, 203-212 (1978).
- Nicklaus, R. Die Erregung einzelner Fadenhaare von Periplaneta americana in Abhängigkeit von der Grösse und Richtung der Auslenkung. Z. Vgl. Physiol. 50, 331-362 (1965).
- Westin, J. Responses to wind recorded from the cercal nerve of the cockroach Periplaneta americana. J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sens. Neural Physiol. 133, 97-102 (1979).
- Ritzmann, R. E. Neural Mechanisms of Startle Behavior. , Plenum Press. 93-131 (1984).
- Ritzmann, R. E., Pollack, A. J. Identification of thoracic interneurons that mediate giant interneuron-to-motor pathways in the cockroach. J. Comp. Physiol. A Neuroethol. Sens. Neural Physiol. 159, 639-654 (1986).
- Plummer, M. R., Camhi, J. M. Discrimination of sensory signals from noise in the escape system of the cockroach - the role of wind acceleration. J. Comp. Physiol. 142, 347-357 (1981).
- Bullock, T. H. Neural Mechanisms of Startle Behavior. , Plenum Press. 1-14 (1984).
- Pollack, A. J., Ritzmann, R. E., Watson, J. T. Dual pathways for tactile sensory information to thoracic interneurons in the cockroach. J. Neurobiol. 26, 33-46 (1995).
- Atwood, H. L., Wiersma, C. A. Command interneurons in the crayfish central nervous system. J. Exp. Biol. 46, 249-261 (1967).
- Olson, G. C., Krasne, F. B. The crayfish lateral giants as command neurons for escape behavior. Brain Res. 214, 89-100 (1981).
- Comer, C. M. Analyzing cockroach escape behavior with lesions of individual giant interneurons. Brain Res. 335, 342-346 (1985).
- Comer, C. M., Dowd, J. P., Stubblefield, G. T. Escape responses following elimination of the giant interneuron pathway in the cockroach, Periplaneta americana. Brain Res. 445, 370-375 (1988).
- Keegan, A. P., Comer, C. M. The wind-elicited escape response of cockroaches (Periplaneta americana) is influenced by lesions rostral to the escape circuit. Brain Res. 620, 310-316 (1993).
- Casagrand, J. L., Ritzmann, R. E. Biogenic amines modulate synaptic transmission between identified giant interneurons and thoracic interneurons in the escape system of the cockroach. J. Neurobiol. 23, 644-655 (1992).
- Roeder, K. D. Organization of the ascending giant fiber system in the cockroach, Periplaneta americana. J. Exp. Zool. 108, 243-261 (1948).
- Ramos, R. L., Moiseff, A., Brumberg, J. C. Utility and versatility of extracellular recordings from the cockroach for neurophysiological instruction and demonstration. J. Undergrad. Neurosci. Educ. 5, (2007).
- Oakley, B., Schafer, R. Experimental neurobiology. , University of Michigan Press. Ann Arbor. (1978).
- Welsh, J. H., Smith, R. I., Kammer, A. E. Laboratory exercises in invertebrate physiology. , Burgess Publishing Company. Minneapolis. (1968).
- Leksrisawat, B., Cooper, A. S., Gilberts, A. B., Cooper, R. L. Muscle receptor organs in the crayfish abdomen: a student laboratory exercise in proprioception. J. Vis. Exp. (45), e2323 (2010).
- Bacon, J. P., Blagburn, J. M. Ectopic sensory neurons in mutant cockroaches compete with normal cells for central targets. Development. 115, 773-784 (1992).
- Blagburn, J. M. Co-factors and co-repressors of Engrailed: expression in the central nervous system and cerci of the cockroach, Periplaneta americana. Cell Tiss. Res. 327, 177-187 (2007).
- Blagburn, J. M., Gibbon, C. R., Bacon, J. P. Expression of engrailed in an array of identified sensory neurons: comparison with position, axonal arborization, and synaptic connectivity. J. Neurobiol. 28, 493-505 (1995).
- Booth, D., Marie, B., Domenici, P., Blagburn, J. M., Bacon, J. P. Transcriptional control of behavior: engrailed knock-out changes cockroach escape trajectories. J. Neurosci. 29, 7181-7190 (2009).
- Schrader, S., Horseman, G., Cokl, A. Directional sensitivity of wind-sensitive giant interneurons in the cave cricket Troglophilus neglectus. J. Exp. Zool. 292, 73-81 (2002).
- Libersat, F., Goldstein, R. S., Camhi, J. M. Nonsynaptic regulation of sensory activity during movement in cockroaches. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 84, 8150-8154 (1987).
- Stern, M., Ediger, V. L., Gibbon, C. R., Blagburn, J. M., Bacon, J. P. Regeneration of cercal filiform hair sensory neurons in the first-instar cockroach restores escape behavior. J. Neurobiol. 33, 439-458 (1997).
- Blagburn, J. M. Synaptic specificity in the first instar cockroach: patterns of monosynaptic input from filiform hair afferents to giant interneurons. J. Comp. Physiol A. 166, 133-142 (1989).
- Watanabe, H., Ai, H., Yokohari, F. Spatio-temporal activity patterns of odor-induced synchronized potentials revealed by voltage-sensitive dye imaging and intracellular recording in the antennal lobe of the cockroach. Front. Sys. Neurosci. (6), 55 (2012).
- Nishino, H., et al. Visual and olfactory input segregation in the mushroom body calyces in a basal neopteran, the American cockroach. Arthropod Struct. Dev. 41, 3-16 (2012).
- Elia, A. J., Gardner, D. R. Long-term effects of DDT on the behavior and central nervous system activity in Periplaneta americana. Pestic. Biochem. Physiol. 21, 326-335 (1984).
