Summary
Células epiteliales nasales, obtenidas mediante biopsia raspadura superficial de voluntarios humanos, se expanden y se transfieren a insertos de cultivo de tejidos. Al llegar a la confluencia, las células se cultivan en la interfase aire-líquido, produciendo cultivos de células ciliadas y no ciliadas. Cultivos de células epiteliales nasales diferenciados proporcionan modelos experimentales viables para el estudio de la mucosa respiratoria.
Abstract
En modelos in vitro utilizando células epiteliales primarias humanas son esenciales en la comprensión de las funciones clave de la epitelio respiratorio en el contexto de infecciones microbianas o agentes inhalados. Las comparaciones directas de las células obtenidas de poblaciones enfermas nos permiten caracterizar diferentes fenotipos y diseccionar los mecanismos subyacentes que median cambios en la función de las células epiteliales. El cultivo de células epiteliales de la región traqueobronquial humano ha sido bien documentado, pero está limitada por la disponibilidad de tejido pulmonar humano o invasividad asociada con la obtención de los cepillos biopsias bronquiales. Células epiteliales nasales se obtienen a través de biopsias de raspado nasal superficiales mucho menos invasivas y los sujetos pueden hacer una biopsia varias veces sin efectos secundarios significativos. Además, la nariz es el punto de entrada para el sistema respiratorio y por lo tanto uno de los primeros sitios de estar expuestos a cualquier tipo de factor estresante transmitida por el aire, tales como agentes microbianos, contaminantes, o alérgenos.
Brevemente, las células epiteliales nasales obtenidas a partir de voluntarios humanos se expandieron en placas de cultivo de tejidos recubiertos, y luego se transfirieron a insertos de cultivo celular. Al llegar a la confluencia, las células continúan siendo cultivado en la interfase aire-líquido (ALI), durante varias semanas, lo que crea más fisiológicamente condiciones pertinentes. La condición de cultivo ALI utiliza medios definidos que conducen a un epitelio diferenciado que presenta características morfológicas y funcionales similares al epitelio nasal humano, con las células ciliadas y tanto moco produciendo. Insertos de cultivo de tejido con las células epiteliales nasales diferenciadas pueden ser manipulados en una variedad de formas dependiendo de las preguntas de investigación (tratamiento con agentes farmacológicos, la transducción con vectores lentivirales, la exposición a los gases, o la infección con agentes microbianos) y se analizaron para numerosos puntos finales diferentes que van desde vías celulares y moleculares, CH funcionalanges, morfología, etc
Los modelos in vitro de células epiteliales nasales humanas diferenciadas permitirá a los investigadores para abordar la novela y preguntas de investigación importantes mediante el uso de modelos experimentales organotypic que imitar en gran medida el epitelio nasal en vivo.
Introduction
Objetivo de la técnica
Las células epiteliales (ECS) en las vías respiratorias se encuentran entre los primeros sitios para ser expuestos directamente a los factores de estrés ambientales inhalados, tales como agentes patógenos, alérgenos o contaminantes del aire. Los CE son más que un obstáculo estructural: Actúan como un panel de control para iniciar y regular la respuesta inmune respiratoria 1-3 a través de la liberación de mediadores solubles 4-6 y la expresión de ligandos / receptores en sus superficies en 7-9. Mientras que las líneas celulares inmortalizadas pueden ser utilizados como modelos para estudiar las EC respiratoria in vitro, no logran diferenciarse en poblaciones de células heterogéneas compuestas de ciliado polarizado y células productoras de moco, similar a lo que se observa in vivo. Para recapitular características importantes de la epitelio respiratorio observado in vivo, se pueden utilizar los CE de las vías respiratorias primarias. Por lo tanto, nuestro objetivo fue optimizar nuestro método utilizando nasal ECs (CNE) obtuvo de voluntarios humanos. Los CNE se expanden y se cultivan in vitro, produciendo un modelo de cultivo celular de CNE diferenciadas que imita muchas de las características de la epitelio nasal visto in vivo.
Razón fundamental
El uso de modelos in vitro con ECs primarios humanos que imitan en la situación in vivo - como se describe en este estudio - da posibilidades únicas para estudiar la enfermedad diferencias específicas de EC, parámetros fisiológicos asociados con el epitelio de las vías respiratorias, o las interacciones entre los ECs y otros tipos de células, tales como células dendríticas 10, células asesinas naturales o macrófagos 11. Varios métodos existentes utilizan ECs bronquiales, que se pueden obtener invasiva a través de biopsias de pincel durante broncoscopias, o de tejido pulmonar descartados 12-17. Además, existen fuentes comerciales para obtener cultivos de células epiteliales de la vía aérea humana completamente diferenciadas (modelo EpiAirway de MatTek, Ashland, MA, CloneticsLonza, Basilea, Suiza, MucilAir de Epithelix Sars, Ginebra Suiza), donde los investigadores pueden elegir entre los diferentes donantes. Sin embargo, debido a la cantidad limitada de células epiteliales comercialmente disponibles, limitados o conjunto determinado de parámetros, el coste asociado a la obtención en el mercado de las vías respiratorias humanas primarias EC, y el limitado acceso a los tejidos de los pulmones descartado o recién obtenida tejido de la biopsia bronquial humano, prohíben muchos investigadores desde la realización de estudios en ECs vías respiratorias humanas completamente diferenciadas. Por lo tanto, nos propusimos desarrollar una técnica que 1) utilizan NECs humanos no invasiva obtenidos, 2) proporcionar un protocolo que permitiese culturas diferenciadas epitelio respiratorio humano, y 3) sea reproducible en la mayoría de los ajustes de laboratorio con una infraestructura de cultivo de tejido existente.
Las ventajas sobre las técnicas existentes / Modelos
La obtención de los CNE frescas, en comparación con bronquial o de la vía aérea pequeña EC, es mucho menos invasiva, individuos puede hacer una biopsia varias veces sin efectos secundarios significativos, y superficiales biopsias de raspado nasal puede llevar a cabo en las poblaciones de enfermos que de otro modo no serían elegibles para broncoscopias relacionados con la investigación. Biopsias de raspado superficial no invasivas para obtener NECs permiten al investigador para establecer la especificación de los donantes a priori, incluyendo edad, sexo, estado de la enfermedad, etc, de acuerdo con el objetivo de la investigación a realizar. Por lo tanto, en el diseño de estudios de investigación de los investigadores no están limitados por los tejidos clínicamente disponibles / muestras epiteliales, comprar costosos modelos de cultivos celulares diferenciados de los proveedores comerciales, o de diseño de los estudios de broncoscopia invasivos. Además, la facilidad para obtener los CNE aumenta la capacidad para llevar a cabo experimentos en células de diferentes donantes, lo que mejora la validación estadística de los resultados observados. Por último, la nariz es uno de los primeros sitios a ser expuestos a cualquier tipo de estrés transmitidas por el aire. Por lo tanto, la generación de organotípicos ensistemas de cultivo in vitro que imitan el epitelio nasal son útiles para el estudio de inhalación de partículas virales, contaminantes, alérgenos, o gases, que se pueden conseguir fácilmente mediante el uso de este sistema de cultivo celular.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
1. Preparar Plastic Ware: Escudo Plate
- Añadir 500 l PureCol (1:100 diluidos con agua estéril) a cada pocillo de una placa de 12 pocillos.
- Incubar a 37 ° C en una incubadora durante 30 minutos, retirar el PureCol y enjuague con HBSS justo antes de añadir las células a la placa (véase el paso 3.1 más abajo).
2. La obtención y el tratamiento previo de la biopsia de CNE Humano
- Biopsia de raspado nasal
- Obtener ECs superficiales que recubren los cornetes nasales bajo visión directa a través de un espéculo nasal reutilizables de polipropileno 9 mm (modelo 22009) en un otoscopio operativo con espéculo (modelo 21700). Este dispositivo proporciona una visualización óptima de los cornetes nasales y flexibilidad de movimiento.
- Realice las biopsias con el sujeto sentado derecho en una silla de respaldo recto, con la cabeza ligeramente inclinada hacia atrás o acostado en posición supina sobre una mesa de examen.
- Introduzca el espéculo otoscopio en la fosa nasal y la turbi inferiornate visualizado con iluminación.
- Inserte una cureta termoplástico estéril a través del espéculo con la punta extendida distalmente a la parte posterior del cornete.
- El uso de una presión suave en la superficie inferior del cornete, la legra se dibuja a través de la superficie de la mucosa de 5x y retraído. Una recuperación exitosa de células de la mucosa en poder de la acción capilar será evidente en la copa de la cureta.
- Colocar la muestra en un tubo cónico de 15 ml que contiene 8 ml de RPMI 1640, el transporte en hielo.
- El uso de fórceps para recuperar la sonda, desalojar a los tejidos de la sonda rinoceronte con una pipeta P-1000, deseche la sonda
- Se centrifuga para sedimentar (4 ° C, 400 x g, 5 min), se aspira el sobrenadante (atención: cuidado de no aspirar el pellet).
- Resuspender el precipitado en 1 ml de BEGM con 10 l de 100x DNasa 1.
- Incubar a TA durante 20 min.
- Centrífuga (4 ° C, 400 x g, 5 min), no aspirar el sobrenadante!
3. SEED las células de plástico (día 0)
- Retire la PureCol de la placa y enjuague con HBSS (véase también el paso 1.2).
- Añadir un volumen mínimo de BEGM + Media + (80-100 mu l, hasta que aparezca un menisco de medios de comunicación en el centro del pozo) en los pozos 1-4 (dependiendo del tamaño de la biopsia) de la placa revestida.
- Utilizar una pipeta P-1000 para quitar cuidadosamente el sedimento del tejido de la biopsia del tubo, sin aspiración demasiado medios de comunicación.
- Transferir el sedimento en el medio de los pozos, mantener la biopsia juntos como un grupo de células, y no se rompen para hacer una suspensión de células individuales. A buenos rendimientos de biopsia hasta 4 pozos que pueden ser sembradas. Coloque la placa en el cultivo de tejidos incubadora (37 ° C, 5% de CO 2,> 90% humedad relativa).
- Compruebe después de dos horas para asegurar que hay suficiente papel (sin perturbar el menisco).
- Día 1, 24 horas después de la siembra: recoger todas las células no adherentes de todos los pozos (placa de inclinación y recoger los medios de comunicación con las células en un P-1000, collect todos los pocillos en un tubo de centrífuga de 1,5 ml).
- Centrífuga (4 ° C, 400 x g, 5 min).
- Mientras centrifugación suspensión de células: añadir alrededor de 250 l de BEGM + + y 250 l de mezcla de los medios de comunicación BEGM + para las células sembradas en el día 0.
- Repita los pasos 3.1 a 3.5 para las células no adherentes.
- Día 2-5: los medios de comunicación el cambio de las celdas diarias, añadir 500 medios mu l a cada pocillo, reducir la cantidad de BEGM + + gradual medios (día 2 después de la siembra: 125 l BEGM + + plus 375 l BEGM +, day3 después de la siembra y los siguientes días: 73 l BEGM + + Plus 427 l BEGM +).
4. La expansión de las células en los frascos
- Monitorear las células diariamente, una vez que hayan alcanzado el 80-90% de confluencia (generalmente 5-7 días después de la biopsia, si se tarda más tiempo no van a crecer con éxito) las células del elevador lo siguiente: los medios de comunicación cuidadosamente aspirados, añadir 500 l de tripsina al 0,25% por pozo, a mantenerlos a 37 º C hasta que se separan las células (por lo general toma 2-3 min).
- Preparar la necesidadvolumen ed de haba de la soja Inhibidor de Tripsina (SBTI) (750 l por 1 ml de tripsina) en un tubo de 15 ml.
- Desalojar células pipeteando repetidamente por toda la solución de tripsina; transferencia de células desprendidas en el tubo cónico de 15 ml con SBTI.
- Enjuague todos los pocillos con un total de 1 ml de HBSS, añadir HBSS para el tubo con las células.
- Se centrifuga para sedimentar (4 ° C, 400 x g, 5 min), aspirar los medios de comunicación, resuspender en 1 ml BEGM + medios de comunicación y agitar el tubo.
- Expandir las células en un matraz T25 o T75, dependiendo del tamaño de pellet (esto es p1; aproximadamente dos pozos confluentes entran en un frasco T75, uno confluentes bien es suficiente para un T25, por lo general 2 pozos confluentes producen una T75).
- Añadir BEGM + a los matraces (5 ml cada una para un T75, 3 ml cada una para un T25).
- Añadir la suspensión celular a los matraces. Transfiera los frascos en una incubadora de cultivo de tejidos.
- 24 horas después de la matraz de siembra: agregar elementos multimedia adicionales BEGM + al matraz (3 ml a un T25, 10 ml a un T75).
5. Sembrar las células en cultivo de tejidos inserciones
- Retire el papel del matraz y añadir tripsina (3 ml para T25, 4 ml de matraz T75).
- Incubar a 37 ° C hasta que se desprenden las células (aproximadamente 2-3 minutos).
- Preparar SBTI (750 l por 1 ml de tripsina> 2,25 ml para T25, 3 ml para T75) en un tubo de 15 ml.
- Separar las células con cinta adhesiva el matraz y pipeteando arriba y abajo y transferir al tubo cónico con el SBTI.
- Lavar el matraz con HBSS (1 ml para T25, 2 ml para T75), añadir el HBSS para el tubo de 15 ml.
- Centrífugopara sedimentar (4 ° C, 400 x g, 5 min), retire el sobrenadante con cuidado.
- Preparar las placas: decidir cuántos platos van a ser cabeza de serie, etiquetar las placas con código de muestra y número, número de pases (es decir, p2) y la fecha. Añadir 700 mu l BEGM + medios de comunicación a la cámara basal.
- Resuspender el sedimento celular en 1 ml de medio BEGM ALI por agitación del tubo.
- Contar las células con un hemocitómetro (un T25 normalmente produce alrededor de 4 millones de células, un T75 puede tener hasta 20 millones de células en función del islote, el uso de 1-2 million de las células de una placa de 12 pocillos) y diluir la suspensión celular con medios BEGM ALI con el volumen total necesario para la cantidad de placas que deben ser cabeza de serie (1,2 x 10 6 células en 2,5 ml de medio por placa) (Nota:. Si una parte de las células quieren congelar, etiquetar el tubo y eliminar las células aquí solemos congelamos 2 x 10 6 células en 2 ml de medio de congelación)
- Añadir 200 l de suspensión celular a la parte apical de cada célula Corning 12well sin revestirinsertar (> este período es de 80,000-150,000 células / inserto; 12 transwells mm con 0,4 micras de poliéster de poros (polietileno tereftalato (PET)) inserto de membrana), la transferencia en el cultivo de tejidos incubadora.
- Después de 24 horas, cambiar el soporte apical (200 medio de expansión l).
- El mantenimiento de los cultivos celulares: Cambia los medios de comunicación (medios BEGM ALI; 700 l basolateral y 200 l apical) en días alternos. Inserta tienen que mantenerse sumergido hasta que las células son totalmente confluente (sin agujeros en monocapa son visibles). Dependiendo del número de células esta toma generalmente entre 2-6 días, si se necesita más tiempo que las células lo más probable es que no sea viable.
6. Establecer Aire interfaz Liquid Una vez que las células son completamente confluentes (Cuando las células de la Transwells son completamente confluentes)
- Una vez que las células son completamente confluente reemplazar ambos medios apical y basolateral con medios BEGM ALI suplementado con 500 nM de ácido retinoico durante 48 horas.
- 48 horas después de añadir el ácido retinoico medio suplementado BEGM ALI: Preparar PneumaCult-ALI Medio de Mantenimiento (siguiendo las instrucciones del fabricante): Calcular el volumen de medio necesario (para una placa, por lo general 8,5 ml para compartimentos basales); añadir por cada 1 ml PneumaCult medio completo Base :
10 l PneumaCult 100x Suplemento Mantenimiento
2 l de heparina (de una solución madre 2 mg / ml)
5 l de hidrocortisona (de una solución madre 96 l / ml). - Quite todos los medios de comunicación y añadir 700 l PneumaCult-ALI medios de mantenimiento en el lado basolateral sólo (sin soporte en la parte apical).
- Mantener los cultivos celulares durante 4 semanas en el ALI:
- Cambie los medios de comunicación en días alternos (lunes, miércoles y horario Viernes funciona bien para nosotros).
- Después de una semana en ALI, una vez a la semana (miércoles) la superficie apical se aclara: añadir 200 l HBSS a la parte apical, mantenerlos durante 10 minutos en la incubadora, aspirar con cuidado laHBSS (utilice un 9 en pipeta de vidrio unido a la trampa de vacío en la cabina de seguridad biológica, utilizar 200 l consejos en la punta de la pipeta para succionar de la HBSS).
Nota: Cambie las puntas entre las placas, así como el cambio de las puntas cuando se pasa de la superficie apical frente basolateral. Después de aproximadamente 2 semanas en el Ali, las células comienzan a diferenciarse y aparecen cilios. Los cultivos de células alcancen una diferenciación después de 4 semanas en el ALI.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
CNE cultivó siguiendo el protocolo aquí descrito de re-diferenciarse en una capa heterogénea de ECs compuesto de células ciliadas y no ciliadas, que representan la situación in vivo (Figura 1). Algunos de los CNE diferenciadas son moco que producen (células de la tinción de azul usando AB / PAS, Figura 1B). A pesar de que el protocolo aquí presentado está optimizado, la diferenciación puede variar con respecto a la distribución de las poblaciones de células totales (es decir, diferentes proporciones de células ciliadas: células productoras de moco: células no ciliadas) o incluso producir un epitelio escamoso más. Estas variaciones pueden depender de la población de donantes y por lo tanto representan la recapitulación de un fenotipo de la enfermedad subyacente, como hemos demostrado anteriormente utilizando los CNE de los fumadores 18. Figura 2 muestra ejemplos de los CNE re-diferenciada subóptimas utilizando un protocolo diferente y formulaciones de medios. Las células son escamosas yni cúbico ni ciliadas y no imitar un epitelio respiratorio pseudostratified (Figura 2).
Figura 1. Diferenciado Re cultura NEC humana. NECs fueron fijadas con 4% PFA y embebidos en parafina. Los cultivos se tiñeron con hematoxilina y eosina (A) y azul alcián / ácido peryódico de Schiff (B) (siguiendo los métodos descritos en 19). Las imágenes muestran los CNE con una organización clara, una estructura cúbica, células caliciformes productoras de moco, así como ciliadas ECs.
Figura 2. Hematoxilina y eosina sección incluido en parafina de las culturas subóptimas manchadas. Culturas NEC con diferenciación subóptima. Las células escamosas aparecen, sin cuboidal estructura, no hay células ciliadas.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
EC respiratorios proporcionan no sólo una barrera física para proteger el cuerpo humano de estímulos exógenos 20, sino que también actúan como un cuadro de distribución para iniciar y regular las respuestas de defensa inmune respiratorias 1-3 a través de la secreción de mediadores solubles o interacciones célula-célula directos receptor-ligando. Con el fin de estudiar más a fondo el papel de ECs en la respuesta inmune, para examinar las diferencias potenciales entre los CE de poblaciones enfermas, o para estudiar los efectos de los factores de estrés exógenos sobre las CE, es importante para recapitular la situación in vivo. Las vías respiratorias humanas contienen más de 40 tipos diferentes de células, incluyendo 20 diferentes células epiteliales, tales como las células ciliadas, células caliciformes y células basales 20. Nuestro protocolo describe cómo una biopsia de raspado nasal superficial puede ser procesado para producir CNE que se puede ampliar y cultivadas a someterse a re-diferenciación, produciendo culturas NEC, que imitan en gran medida el epitelio nasal en vivo.
El uso de este modelo in vitro de los CNE diferenciadas humanos primarios organotípicos ofrece posibilidades únicas para diversas aplicaciones. Permite el estudio de la enfermedad diferencias específicas de los CNE (por ejemplo, la fibrosis quística, el asma, el tabaquismo), los mecanismos subyacentes de la enfermedad, así como de las exposiciones controladas a los contaminantes del aire (por ejemplo, ozono, gases de escape diesel, el humo del cigarrillo) 18,21-23. Además, los CNE diferenciadas cultivadas en insertos de cultivo de tejido se prestan a co-cultivo con otros tipos de células (por ejemplo, células dendríticas, células asesinas naturales, o macrófagos) 10,11, lo que permite examinar las interacciones célula-célula en un entorno controlado.
Se describe el cultivo y de re-diferenciación de CNE, y no las células epiteliales bronquiales, que se han utilizado en muchos estudios publicados anteriormente 24-27. Vemos varias razones por las que el uso de CNE puede ser ventajoso en comparación con el uso debronquial ECs. En primer lugar, la obtención de biopsias superficiales rascado nasal es menos caro que la realización de una broncoscopia para obtener biopsias de pincel. En segundo lugar, para una variedad de enfermedades pre-existentes (por ejemplo, cortar los asmáticos) no es realista para llevar a cabo una broncoscopia relacionada con la investigación de las células epiteliales de las vías respiratorias inferiores obtenidos. Sin embargo, el procedimiento menos invasivo de raspado de la superficie inferior del cornete nasal inferior con una sonda de Rhino se puede realizar en estos sujetos. En tercer lugar, las biopsias de raspado nasales se pueden realizar en los mismos individuos en múltiples ocasiones (generalmente cerca de 4 semanas entre las biopsias), sin efectos secundarios significativos 28-30. En cuarto lugar, los CNE están entre las primeras células para ser expuestos a la inhalación de estrés ambientales, como los contaminantes del aire, patógenos o alergenos y, por tanto, representan valiosos modelos in vitro para estudiar los efectos de estos factores de estrés en las células epiteliales de la vía aérea.
Diversos sistemas de cultivo de células de re-diferirrenciadas ECs humana están disponibles en el mercado (por ejemplo, modelo de EpiAirway MatTek, Ashland, MA, Clonetics de Lonza, Basilea, Suiza, MucilAir de Epithelix Sars, Ginebra Suiza). Esos cultivos celulares disponibles en el mercado permanecen estables durante un largo período de tiempo y están bien caracterizados. Sin embargo, son caros y los estudios se limitan generalmente a un bajo número de muestras de diferentes individuos. Además, es difícil controlar la población de donantes, lo que depende de la disponibilidad presentado por el proveedor. Obteniendo recién CNE con biopsias de raspado superficial permite al investigador controlar características de los sujetos (como la edad, el género, la raza, peso, índice de masa corporal, el estado de la enfermedad, uso de medicamentos, etc) y para volver a la llamada voluntarios traseros para un seguimiento potencial arriba.
En general, todos los protocolos publicados para volver a la diferenciación de las vías respiratorias humanas (ya sea bronquial o nasal) ECS en el ALI incluyen procedimientos similares: obtaining EC, la expansión de las células en matraces de cultivo de tejidos, y su transferencia a cultivo celular porosa inserta para la diferenciación en el Ali. Los protocolos varían en el tipo de medios de comunicación, los suplementos de factores de crecimiento, el número de pases, el revestimiento de los insertos, y la activación de los CNE antes de establecer la ALI. Mientras que en un protocolo, después de la obtención y digerir, las células se siembran directamente en insertos sin recubrimiento y sólo mantienen unos días en el ALI antes de su uso 13; otros protocolos incluyen el cultivo durante varias semanas para volver a diferenciarse en el ALI 12,14,15 . No hay consistencia sobre el recubrimiento de las placas con colágeno u otros componentes de la matriz extracelular: mientras que algunos protocolos requieren recubrimiento otros 12,15 utilizan insertos sin revestir 13,14. Sin embargo, las condiciones de cultivo son de gran importancia, especialmente la configuración de la incubadora. La humedad relativa, que debe ser> 90%, y el CO 2, que debe ser regulado en 5% son muyfactores importantes para evitar la desecación del cultivo de células LPA y ayudan a amortiguar los medios de comunicación. Con el fin de compartir nuestra experiencia, queremos mencionar aquí que no existe una tasa de éxito del 100%. Algunas muestras de biopsia de raspado nasal no se adhieren a la placa de cultivo de tejidos, mientras que algunas muestras de NEC no se adhieren a los insertos o nunca llegará a la confluencia. Con los años, nuestra tasa de éxito global utilizando el protocolo descrito aquí es de aproximadamente 80%. Nuestra experiencia muestra que el cultivo de CNE de poblaciones enfermas definidos, como los fumadores, es más difícil que los CNE de los no fumadores sanos
Nuestro protocolo para el cultivo de CNE humanos primarios incorpora varios pasos clave que hemos optimizado en los últimos años: 1. Los CNE sólo se expanden dos veces antes de que se siembran sobre los insertos de cultivo de tejido. 2. Los insertos se utilizan sin recubrir. 3. Una vez sembradas en placas de cultivo de tejidos, la cantidad de Suero Nu se reduce paso a paso para evitar que las células se despegan del cultivo de tejidosplacas. 4. Los CNE se mantienen al menos 25-28 días en el Ali antes de usarlos en los experimentos para asegurar completa re-diferenciación. En resumen, el protocolo aquí descrito incluye un protocolo optimizado para la cultura y la re-diferenciar NECs humanos a ALI.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Los autores no tienen nada que revelar.
Acknowledgments
Los autores desean agradecer a Lisa Dailey para las entradas de ayuda.
Este trabajo fue apoyado por becas de los Institutos Nacionales de Salud (ES013611 y HL095163), el asistente de vuelo del Instituto Médico de Investigación (FAMRI), y la Agencia de Protección Ambiental (CR83346301) y declara no tener conflicto de intereses. El contenido es de exclusiva responsabilidad de sus autores y no representa necesariamente las opiniones oficiales de los Institutos Nacionales de Salud. Aunque la investigación descrita en este artículo ha sido financiado en parte por la Agencia de Protección Ambiental de los EE.UU. a través de un acuerdo de cooperación con CR83346301 el Centro de Medicina Ambiental, Asma y Biología de pulmón en la Universidad de Carolina del Norte-Chapel Hill, no ha sido sometido a la del par requerido y revisión de la política y por lo tanto no refleja necesariamente la opinión de la agencia, y ningún patrocinio oficial de la agencia se debe inferir. Mencionar onombres comerciales f o productos comerciales no constituye aprobación o recomendación para su uso. Loretta Müller es apoyado por la Fundación Nacional de Ciencia de Suiza con una donación personal.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Nasal speculum | Welch Allyn | Model 22009 | 9 mm, reusable polyproylene | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Operating otoscope | Welch Allyn | Model 21700 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Rhino probe cell cuvette | Arlington Scientific | SY-96-092 | bend the head of the cuvette a little more | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| 12-well culture plates | Corning | 3512 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Transwell membrane cell culture inserts | Corning | 3460 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Tissue culture flask | Corning | 430639 and 430641 | T25 and T75 vented flask | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| RPMI 1640 media (with L-Glutamine) | Gibco | 11875 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Bronchial/Tracheal Epithelial Cell Growth Medium | Cell applications | 511-500 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| BEGM Bronchial Epithelial Cell Growth Medium | Lonza | CC-3170 | This comes as a kit of one bottle of medium and vials with supplements. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Sodium Bicarbonate 7.5% solution | Gibco | 25080 | Use as it is. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| NuSerum | BD Biosciences | 355104 | Use as it is. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| BAMBANKER freezing media | BAMBANKER | 302-14681 | Use as it is. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| CoolCell | Biocision | HTBCS-136 | (CryoPrep alcohol-free cell freezing container) | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| PureCol | AdvancedBioMatrix | 5005-B | dilute 1:100 with sterile water (should be roughly 0.03 mg/ml)use 500 μl/well of a 12-well plate | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| HBSS with Ca2 and Mg2+ | Gibco | 14025 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| DNAse 1 | Sigma | DN25 | Dissolve at 1.5 mg/ml, which is a 100x solution, add 10 μl to each ml of media | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Trypsin, 0.25%, 1x, with phenol red | Gibco | 25200-056 | Use at it is | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Soy Bean Trypsin Inhibitor (SBTI) | Sigma | T6522 | Use dissolved in HBSS at a concentration of 1 mg/ml | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Retinoic acid | Sigma | R7632 | Make it up 100 μM stock solution (see below), dilute to 10 μM with absolute alcohol, take 5 μl of this and add it to 1 ml BEGM media (our working solution). All-trans Retinol has a coefficient of extinction of 52,480 in ethanol at 325 nm. Dissolve 25 mg in 50 ml absolute ethanol. Serial dilutions need to be made, dilute 50 ml of stock in 450 ml absolute ethanol, take 50 ml of this, dilute in 450 ml absolute ethanol, take 50 ml of this, dilute in 450 ml absolute ethanol, and again take 50 ml of this, dilute in 450 ml absolute Ethanol, take 100 ml of this and dilute in 900 ml absolute ethanol and read in the spectrophotometer at 325 nm, this number is then multiplied by its’ dilution factor, then divided by the extinction coefficient of 52,480, this will give a number in mM. Make a 100 mM stock (store at -20 °C) and from this stock a 10 mM aliquot is made, the daily retinoic acid needed would be 5 ml of this 10 mM aliquot in 995 ml ALI media. Example: 325nm reading is 1.15. 1.15 x 10,000 (dilution factor) / 52,480 = 0.219 = 219 mM, make a 100 mM stock from this, in absolute ethanol. |
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| DMEM high glucose (1x), liquid, with L-glutamine and sodium pyruvate | Gibco | 11995 | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Bovine Pituitary Extract | Gibco | 13028-014 | Used for BEGM ALI media. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Nystatin | Sigma | N4014-50 mg | Make up a solution of 3.3 mg/ml. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Bovine Serum Albumin | Fisher Scientific | BP1600-100 | Make up a solution of 10 mg/ml solution in milliQ water. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| PneumaCult-ALI media | StemCell | 5001 | This comes as a kit of one bottle of medium and vials with supplements. For details see below. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Hydrocortisone | StemCell | 7904 | Dissolve 2.4 mg hydrocortisone in 1 ml ddH2O (used to make the 200x Hydrocortisone stock solution) | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Heparin Sodium Salt in PBS (2 mg/ml) | StemCell | 7980 | Use at it is. | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Filter flasks (500 ml) | Corning | 431097 | 0.22 μm pore size | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Filter tubes (50 ml) | Millipore | SCGP00525 | Steriflip, 0.22 μm pore size | ||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Pipette tips - ART Barrier Tips | Molecular Bioproducts | 2139RI, 2069RI, 2179RI | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| Conical tubes, sterile, 15 ml and 50 ml | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| ddH2O, absolute ethanol, ice | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| CO2 incubator | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| refrigerated centrifuge | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| biological safety cabinet | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| pipettes (p2, p200, p1000), 9 in glass pipettes | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| gloves | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
| lab coat with tight cuffs | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
|
|||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
References
- Swamy, M., Jamora, C., Havran, W., Hayday, A. Epithelial decision makers: in search of the 'epimmunome. Nat. Immunol. 11, 656-665 (2010).
- Vareille, M., Kieninger, E., Edwards, M. R., Regamey, N. The airway epithelium: soldier in the fight against respiratory viruses. Clin. Microbiol Rev. 24, 210-229 (2011).
- Muller, L., Jaspers, I. Epithelial cells, the "switchboard" of respiratory immune defense responses: Effects of air pollutants. Swiss Med. Wkly. , (2012).
- Sanders, C. J., Doherty, P. C., Thomas, P. G. Respiratory epithelial cells in innate immunity to influenza virus infection. Cell Tissue Res. 343, 13-21 (2011).
- Robertson, M. J. Role of chemokines in the biology of natural killer cells. J. Leukoc. Biol. 71, 173-183 (2002).
- Adachi, M., Matsukura, S., Tokunaga, H., Kokubu, F. Expression of cytokines on human bronchial epithelial cells induced by influenza virus. A. Int. Arch. Allergy Immunol. 113, 307-311 (1997).
- Borchers, M. T., Harris, N. L., Wesselkamper, S. C., Vitucci, M., Cosman, D. NKG2D ligands are expressed on stressed human airway epithelial cells. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 291, L222-L231 (2006).
- Groh, V., et al. Costimulation of CD8alphabeta T cells by NKG2D via engagement by MIC induced on virus-infected cells. Nat. Immunol. 2, 255-260 (2001).
- Obeidy, P., Sharland, A. F. NKG2D and its ligands. Int J. Biochem. Cell Biol. 41, 2364-2367 (2009).
- Horvath, K. M., Brighton, L. E., Zhang, W., Carson, J. L., Jaspers, I. Epithelial Cells From Smokers Modify Dendritic Cell Responses in the Context of Influenza Infection 1. Am. J. Resp. Cell. , (2010).
- Muller, L., Brighton, L. E., Jaspers, I. Ozone exposed epithelial cells modify co-cultured natural killer cells. AJP Lung. , (2013).
- Turi, J. L. Oxidative stress activates anion exchange protein 2 and AP-1 in airway epithelial cells. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 283, 791-798 (2002).
- Zimmermann, G. S., Neurohr, C., Villena-Hermoza, H., Hatz, R., Behr, J. Anti-inflammatory effects of antibacterials on human Bronchial epithelial cells. Respir. Res. 10, 89 (2009).
- Lopez-Souza, N., Avila, P. C., Widdicombe, J. H. Polarized cultures of human airway epithelium from nasal scrapings and bronchial brushings. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 39 (2003), 266-269 (2003).
- Gray, T. E., Guzman, K., Davis, C. W., Abdullah, L. H., Nettesheim, P. Mucociliary differentiation of serially passaged normal human tracheobronchial epithelial cells. Am. J. Respir. Cell Mo.l Biol. 14, 104-112 (1996).
- Adler, K. B., Schwarz, J. E., Whitcutt, M. J., Wu, R. A New Chamber System for Maintaining Differentiated Guinea-Pig Respiratory Epithelial-Cells between Air and Liquid-Phases. Biotechniques. 5, 462 (1987).
- Whitcutt, M. J., Adler, K. B., Wu, R. A biphasic chamber system for maintaining polarity of differentiation of cultured respiratory tract epithelial cells. In Vitro Cell. Dev. Biol. 24, 420-428 (1988).
- Jaspers, I. Reduced expression of IRF7 in nasal epithelial cells from smokers after infection with influenza. Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 43, 368-375 (2010).
- Muller, L., Brighton, L. E., Jaspers, I. Ozone exposed epithelial cells modify cocultured natural killer cells. Am. J. Physiol. Lung Cell Mol. Physiol. 304, 332-341 (2013).
- Ochs, M., Weibel, E. R. Fishman's Pulmoary Diseases and Disorders. Fishmanetal, A. P., et al. 4, Mc Graw Hill. New York, NY. 23-69 (2008).
- Kesic, M. J., Meyer, M., Bauer, R., Jaspers, I. Exposure to Ozone Modulates Human Airway Protease/Antiprotease Balance Contributing to Increased Influenza A Infection. PLoS ONE. 7, e35108 (2012).
- Jaspers, I. Diesel exhaust enhances influenza virus infections in respiratory epithelial cells. Toxicol. Sci. 85, 990-1002 (2005).
- Jaspers, I., Flescher, E., Chen, L. C. Ozone-induced IL-8 expression and transcription factor binding in respiratory epithelial cells. Am. J. Physiol. 272, L504-L511 (1997).
- Blume, C., et al. Barrier responses of human bronchial epithelial cells to grass pollen exposure. Eur. Respir. J. , (2012).
- Bauer, R. N. Influenza enhances caspase-1 in bronchial epithelial cells from asthmatic volunteers and is associated with pathogenesis. J. Allergy Clin. Immunol. 130, 958-967 (2012).
- Ostrowski, L. E., Stewart, D., Hazucha, M. Interferon gamma stimulates accumulation of gas phase nitric oxide in differentiated cultures of normal and cystic fibrosis airway epithelial cells. Lung. 190, 563-571 (2012).
- Jardim, M. J., Fry, R. C., Jaspers, I., Dailey, L., Diaz-Sanchez, D. Disruption of microRNA expression in human airway cells by diesel exhaust particles is linked to tumorigenesis-associated pathways. Environ. Health Perspect. 117, 1745-1751 (2009).
- Horvath, K. M., Brighton, L. E., Herbst, M., Noah, T. L., Jaspers, I. Live Attenuated Influenza Virus (LAIV) induces different mucosal T cell function in nonsmokers and smokers. Clin. Immunol. 142, 232-236 (2012).
- Horvath, K. M. Nasal lavage natural killer cell function is suppressed in smokers after live attenuated influenza virus. Respir. Res. 12, 102 (2011).
- Noah, T. L. Tobacco smoke exposure and altered nasal responses to live attenuated influenza virus. Environ. Health Perspect. 119, 78-83 (2011).
