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Biology

電気化学発光免疫測定法により血清心臓ミオシン結合タンパク質-Cの定量のための高感度で特異的な定量法

Published: August 8, 2013 doi: 10.3791/50786

Summary

複雑な生体試料中のバイオマーカーの測定はますます意思決定臨床指導されています。私たちは、同時に心臓ミオシン結合タンパク質C、クレアチンキナーゼMB、および心筋梗塞と健常者の被験者からの血清サンプル中の心筋トロポニンIを測定する高感度な方法を説明します。

Abstract

バイオマーカーだけでなく、基礎科学、意思決定の臨床でますます重要になってきています。診断心筋梗塞(MI)は、主に心筋障害の指標として患者の血清または血漿中の心臓特異的タンパク質を検出することによって駆動される。心臓ミオシン結合タンパク質-C(cMyBP-C)はMI後に血清中で検出可能であることが最近示されたので、我々は、MIの可能性バイオマーカーとして提案している。バイオマーカーは、典型的には、従来のサンドイッチ酵素免疫アッセイによって検出される。しかし、この技術は、大規模なサンプル量を必要とする小さいダイナミックレンジを有しており、同時に複数のタンパク質を測定することができる。

ここでは、3つの心臓タンパク質を高感度で同時に測定することができる多重イムノアッセイを示す。クレアチンキナーゼMBや心筋トロポニンとともにuniplexでcMyBP-Cを測定するか、または私が同等の感度を示した。この手法は、メソスケールディスカバリーを使用しています検出のための電気化学発光と組み合わせる96ウェルプレートに多重化(MSD)メソッド。わずかなサンプル量が必要とされているが、高感度、広いダイナミックレンジが得られる。このテクニックを使用して、我々はcMyBP-C、クレアチンキナーゼMB、および心筋トロポニンMIと16科目からの血清サンプル中の私はレベルを測定し、16対照被験者と比較を行った。我々は、これらのサンプルのすべての3つのマーカーを検出することができたとMI後に増加するすべての3つのバイオマーカーを発見した。この技術は、したがって、血清サンプル中の心臓マーカーの高感度検出に適している。

Introduction

血清などの複雑な生物学的サンプル中のタンパク質の少量の測定は、患者管理のための成長臨床的重要性、並びに​​基礎科学である。例えば、このようなトロポニンなどの心臓マーカーの血清レベルの増加は、私は、臨床で急性心筋梗塞(MI)1と一致する。それは、高感度を有しており、検体の絶対的定量を可能にするような血清試料中のタンパク質を検出するために、標準的な酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)は、最も頻繁に使用される技術である。しかしながら、従来のELISA法では、試料の比較的多量(典型的には100μl)を必要とするいくつかの生物学的液体中の高バックグラウンド信号を有し、ELISA 2ごとに1つだけの検体の測定に制限される。

最近では、新しい免疫測定技術は、これらの欠点の多くを回避することを導入されました。この修​​正されたアッセイは、MSDが開発した、electrochemiluminescを使用しています少量のサンプル量の使用を可能にする、非常に低いバックグラウンドおよび感度の向上を可能にする信号検出用リファレンス(ECL)。電気化学発光を検出抗体に添付されたレポーター分子ルテニウム(II)trisbipyridal、に基づいています。このレポーター分子は、それら3に一体化炭素電極を有する96ウェルプレートの底部の電気的な刺激により620nmで発光する。また、スポットコーティングを使用することによって、複数の捕捉抗体は、単一の試料4中の異なるタンパク質の同時定量を可能にする、1つのウェル(96ウェルプレート上で10まで)に塗布することができる。この技術は、近年、血清5,6の炎症性サイトカインプロファイルを測定するために使用されている。 MSDから多重プレートは他のマルチプレックスアッセイプラットフォームに好意的に7を比較します。

主要なアッセイプラットフォームとしてMSD使用して、我々はさらに3プレックスプレートCそのカスタムメイドを開発同時に心臓ミオシン結合タンパク質-C(cMyBP-C)、クレアチンキナーゼMB(CK-MB)、および心臓トロポニンI(cTnIの)のレベルを定量化し、その結果をcMyBP-Cのモノプレックス検出と比較した。 CK-MBとcTnIのはMIのための十分に確立されたバイオマーカーである。しかし、これらのバイオマーカーの増加はMI、 例えば心筋炎または腎不全8以外の病態が原因で発生することができます。これは、MI診断の特異性を増大させる付加的なバイオマーカーの付加のために主張している。我々は、最近cMyBP-Cはまた、MI 9の潜在的なバイオマーカーであることが示されている。 cMyBP-Cは心臓、10-12でなく、骨格または平滑筋に発現しているタンパク質を関連付け太いフィラメントです。このように、循環系におけるcMyBP-Cの増加レベルは、心臓障害13の具体的な指標である。

本研究では、血清レベルのを測定するためのカスタム3プレックスアッセイの使用とcMyBP-Cのuniplex検出を比較したMI患者の血清中cMyBP-C、CK-MB、およびcTnIの。将来的には、この署名技術は、緊急治療室での胸痛を呈する患者で心筋梗塞を診断するために使用されるかもしれません。

ロヨラ大学シカゴの機関審査委員会(IRB)はdeidentifiedヒトサンプルの使用とイムノアッセイの使用(LU#20392)のための研究を承認した。

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Protocol

1。 Uniplex cMyBP-Cアッセイ

  1. 実験前日、コート捕捉抗体と96ウェルMSD裸標準プレート。 cMyBP-Cの場合は、リン酸緩衝食塩水(PBS)で希釈した5μgの/ mlの濃度でマウスモノクローナル抗cMyBP-C抗体(ゼラチン無料)30μlのボリュームを使用しています。
  2. 、疎水性であるため、井戸の底の隅にソリューションをピペットで、次に全体を優に超えるソリューションを広めるために、プレートの側面をタップします。
  3. プレートは、プレートシーラーで覆い、振とうせずに4℃でO / Nインキュベートする。
  4. シンクの上にして、ペーパータオルのスタック上にソリューションをタップして、捕捉抗体溶液を除去。プレートへの非特異的結合を各ウェルに、PBS中の5%(w / v)のブロッカー(ハイグレードBSA)溶液を150μlを添加することにより遮断される。
  5. 700 rpmで振とうしながら室温で1時間、プレートとインキュベートを封印。
  6. ブロッキングステップの間、基準とsを準備amples。 1%(w / v)のブロッカー/ PBSで2,000 ngの/ mlでの出発濃度に - 換えcMyBP-Cタンパク質断片(271アミノ酸1)を希釈することによって標準のシリーズを作る。次いで、直列1%(w / v)のブロッカー/ PBSで5倍に希釈する。 7規格の合計+ 1ブランク(1%(w / v)のブロッカー/ PBS単独)を用いた。
  7. ブロッキング溶液を取り出し、150μlの0.05%(v / v)のTween-20/PBSで3回プレートを洗浄。たびに、シンク上反転プレートによって洗浄溶液を除去。第三の洗浄ステップの後、精力的にシンク上のプレートをフリックして、それが完全に乾燥するまで、ペーパータオルの層の上に積極的にプレートをなでる。インキュベーション体積が小さいので、これは重要なステップであり、残りの洗浄溶液が大幅次のインキュベーションを希釈する。
  8. ウェルに基準やサンプルのピペット25μlの。 1時間700rpmで振とうしながら、室温でプレートとインキュベートを封印。
  9. 1%ブロッカー/ PBSで1μgの/ mlで検出抗体溶液を準備します。 CUMSDスルホ-TAG標識検出抗体として働くと - STOMはcMyBP-C抗体(14エピトープのアミノ酸2)を作った。キットは、任意の抗体を標識するための比較的簡単な手順で作り、スルホ-TAGの標識に利用可能です。
  10. ステップ1.4で説明したように洗浄工程を繰り返します。
  11. 、各ウェルに検出抗体溶液25μlの追加プレートを密封し、シェーカーは700rpmでセットプレート上で1時間室温でインキュベートする。
  12. 潜伏期間中は、セクターイメージャとソフトウェア(試薬の項を参照)の適切な機能を確保するために、MSDのデモプレート(LEDライトが付いているプレート)を実行します。また、15リードバッファ4倍mlの蒸留水5mlを添加することにより、MSDによって提供され、読み取りバッファを希釈する。
  13. ステップ1.4で説明したように洗浄工程を繰り返します。
  14. マルチチャンネルピペットを使用して、各ウェルに読み取りバッファー150μlのを追加します。気泡(リバースピペッ​​ティングが適切な方法である)を回避してください。読み取りバッファの添加後、直ちに分野におけるプレートをスキャンイメージャ。

2。 3プレックスcMyBP-C、CK-MB、およびcTnIのアッセイ

  1. 96ウェル-3 - プレックス板と希釈溶液は、使用前に室温に平衡化させている。このプレートは、MSDによるcMyBP-C、CK-MB、およびcTnIのための捕捉抗体で予めコーティングされている。
  2. 各ウェルに1%(w / v)のブロッカー/ PBS25μlのを追加します。全体をうまくが溶液で覆われていることを確認するために、プレートの側面をタップします。
  3. プレートシーラーでプレートをシールし、プレートシェーカー上にプレートを置き、30分間700rpmで振る。
  4. その間に、個々のカリブレータの希釈系列を調製する。各ウェル3捕捉抗体を持っているので3キャリブレータは混合されると、連続的に使用する前に希釈する必要があります。 2,000 ngの/ mlのcMyBP-C、100 ngの/ mlの一つのサンプルを作成するために1%を一緒に換えcMyBP-C、CK-MB(MSD)、およびcTnIの(MSD)(w / v)のブロッカー/ PBSを希釈CK- MB、および25 ngの/ mlのcTnIの(サンプル)。
  5. 少なくとも100μlの最終体積は、各規格のために準備される。へスタンダードシリーズを完了し、順次サンプルが5倍に希釈している。試料を25μl使用100μlの1%(w / v)のブロッカー試料Cを作成するために、100μlの1%(w / v)のブロッカー/ PBSで、サンプルBを25μl使用その後、試料Bを作成する/ PBSでなどが挙げられる。 MIの16科目と16の対照被験者からのヒト血清サンプルをcMyBP-C、CK-MB、およびcTnIのレベルを測定するために使用された。これらのサンプルを1%(w / v)のブロッカー/ PBSで2倍希釈した。
  6. 3プレックスプレートのウェル内に既に存在する25μlに25規格の添加および希薄化後のサンプルを追加します。また、空白にして(希釈剤のみ)を含めることが重要です。技術を確立するために、サンプルは技術的三連でロードされる。それ以外の場合は、重複で十分です。
  7. 再びプレートをシール(プレートシーラーを再利用できる)、2時間室温でプレートシェーカー(700 rpm)でのインキュベート。
  8. インキュベーションが完了する直前に、検出抗体溶液を調製する。使用される希釈剤は、PBS中1%(w / v)の遮断薬である。すべてTHReeのSULFO-タグ検出抗体は、1μgの/ mlの各々の最終濃度に一緒に希釈する。検出抗体は、典型的には50倍のストック濃度に設けられている。
  9. フル96ウェルプレートの場合は、合計希釈液の2,700μlを(エラーが含まれているピペッティングで)必要とされる。 2,538μlの1%(w / v)のブロッカーPBS /に各検出抗体54μLを加える。
  10. 2時間後、精力的にシンク上プレートをフリックでソリューションを削除します。のTween-20、PBS中の0.05%150μlのウェルに3倍を洗ってください。ウェルマルチチャンネルピペットを用いて各検出抗体溶液25μlを添加し、プレートの側面が全体ウェル溶液で覆われていることを確認するためにタップされている。
  11. プレートを密封し、700rpmで振とうしながら1時間インキュベートする。
  12. 潜伏期間中は、セクターイメージャとソフトウェアの適切な機能を確保するために、MSDのデモプレート(LEDライトが付いているプレート)を実行します。またの4倍の読み取り5ミリリットルを追加することで、MSDによって提供される読み取りバッファー、希釈15ミリリットルの蒸留水にバッファ。
  13. ステップ2.8で説明した洗浄手順を繰り返します。
  14. よくマルチチャンネルピペットを用いてそれぞれに読み取りバッファー150μlのを追加します。気泡を避けることが重要です(リバースピペッ​​ティングは、適切な方法である)。読み取りバッファーを添加した後、直ちにセクターイメージャでプレートをスキャン。

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Representative Results

3 -プレックスアッセイの基本的な原理およびワークフローを図1に示し全体的なワークフローを表1に記載されている。 Uniplexアッセイは、底面全体が1つのウェル捕捉抗体で被覆されていることを除いて同じ原理に沿って動作する。信号検出は、電気信号​​がウェルの底部に適用したECLによって行われる。これは、順番に、検出抗体にSULFO-TAGラベルを読み取りバッファの化学反応を通る光の現地生産を開始する。これは、低バックグラウンドおよびアッセイの高感度につながる。 図2では、uniplexアッセイにおけるcMyBP-Cの標準曲線は、3プレックスアッセイにおいてcMyBP-Cのそれと比較される。両方のアッセイは、非常に高感度、高ダイナミックレンジを示す。検出レベルと定量化レベルは、 表2に示し、uniplexおよび3 -プレックスアッセイの両方に匹敵するている。 cTnIのとCK-MBの検出レベルは、ALSであるoが図3および表2に示す。オペレータ間ばらつきは、2つの異なる演算子と可変性(CV 8.5%)が低いことが判明したことにより、同一のサンプル(nは2,3の技術が複製)を測定することによって決定した。他の二つのキャリブレータ検出抗体との交差反応性は、単一の検出抗体( 図4)と3つすべてのカリブレータの個々の標準曲線をインキュベートすることによって調べた。の交差反応は、他のキャリブレータと検出抗体との間で観察されなかった交差反応性は低い量は、CK-MBとcTnIのキャリブレータとcMyBP-C検出用抗体の両方との間に見られた。

心臓の損傷を検出するためのアッセイの適用性を証明するものとして、MI、16被験体の血清レベルは、対照群(n = 16)と比較した。 3 - プレックスプレートを用いて、cMyBP-C、CK-MB、およびcTnIのの血清レベルを測定した。すべての3つのバイオマーカーは、(参照MI科目に増加した12.2倍(CK-MB)〜3.7倍(cMyBP-C)から図5)、血清レベルのばらつきがcMyBP-C群で最も低かったものの。

プロセス Uniplexアッセイ 3プレックスアッセイ
実験0日 捕捉抗体でコートプレート一夜 N / A
実験1日目 プレートをブロック 1時間 30分
サンプルおよびスタンダードシリーズを準備
サンプルおよび標準でインキュベート 1時間 2時間
検出用抗体とインキュベートする 1時間 1時間
検出試薬を追加し、読みプレート

表1。 uniplexとマルチプレックスアッセイのワークフローの概要。

LLOD(ngの/ ml)を LLOQ(ngの/ ml)を ULOQ(ngの/ ml)を
cMyBP-C(uniplex) 0.126±0.007 0.567±0.073 400 ngの/ mlの
cMyBP-C(3plex) 0.057±0.022 0.469±0.171 400 ngの/ mlの
CK-MB(3プレックス) 0.038±0.014 0.587±0.213 100 ngの/ mlの
cTnIの(3plex) 0.033±0.011 0.147±0.053 25 ngの/ mlの

表2。 uniplexと3プレックスがキャリブレータの検出限界。LLOD、検出の下限は、ブランク試料のブランク+標準偏差の3倍の信号の計算された濃度として定義される。 120% - LLOQ、定量下限は、変動係数(信号対雑音比の逆数)より低い20%と80との間の回復、LLODよりも大きい値として定義される。 120% - ULOQ、定量の上限は、変動係数20%未満と80の間の復旧を用いて測定することができる最高分析する濃度として定義される。

図1
図1。プレートとワークフローの概略概要。)96ウェルプレートが表示されます。各ウェルは、3つの異なる捕捉抗体、cMyBP-Cに対してすなわち 、CK-MBとcTnIので被覆されている。第四の無駄できるスポットは使用されず)BSA。Bで3プレックスELISAのワークフローをコーティングされている。プレコートされたプレート( ステップ1)が遮断され、次いで血清サンプルまたはキャリブレータする( ステップ2)を各ウェルに添加し、結合させる。 cMyBP-C(赤ダイヤモンド)、CK-MB(緑長方形)、およびそれぞれの捕捉抗体にcTnIの(オレンジ色楕円)バインド。未結合のタンパク質を洗い流した後、SULFO-TAG-標識検出抗体( ステップ3)を添加する。彼らは、捕捉抗体に結合しているcMyBP-C、CK-MB、またはcTnIのタンパク質に結合します。未結合検出抗体を洗い流した後、リードバッファを添加し、プレートを分析する。板の底面への電気信号は、光の生成する( ステップ4)に至る、読み取りバッファとSULFO-TAGの局所的な化学反応を開始する。光の量が結合したSULFO-TAG標識検出抗体の量に正比例する。 CCDイメージャ再コードは、光とよく、したがって、それぞれ内のさまざまなスポット各分析( ステップ5)からの信号を区別することができます。

図2
図2。 cMyBP-C校正器の標準曲線は、同じ標準シリーズはuniplexアッセイで測定した。uniplexにまたは3プレックス内の測定し、3プレックスプレート上。標準シリーズは、2,000 ngの/ mlで開始し、順次0.128 ngの/ mlであること最低濃度で5倍希釈した。また、希釈剤は、ブランク試料とした。アッセイの検出領域は灰色で表示されている。下の行は空白信号ブランク値+標準偏差の3倍の計算された濃度として定義されている検出下限(LLOD)を示しています。検出の上限値をtとして定義される彼は確実に測定することができる標準的なシリーズの最高濃度。 uniplexと3プレックスcMyBP-C標準曲線の両方が同等である。検出限界を表2に表示されている。 AU:任意の単位。

図3
図3:CK-MBとcTnIのの標準曲線。 3プレックスプレートにcMyBP-Cと同時に測定したCK-MBとcTnIの標準曲線は、。両方のキャリブレータは、高感度と広いダイナミックレンジを示しています。灰色でアッセイの検出領域が表示される。下の行は空白信号ブランク値+標準偏差の3倍の計算された濃度として定義されている検出下限(LLOD)を示しています。検出の上限は、標準自体の最高濃度として定義される信頼性をもって測定できるリース。検出限界を表2に表示されている。 AU:任意の単位。

図4
図4。 3プレックス検出抗体の交差反応 。 cMyBP-C、CK-MB、およびcTnIの別個の標準曲線は、3プレックスのプレート上に調製し、インキュベートした。各標準曲線は、個々の検出抗体( 例えば cMyBP-C)およびその他のキ ​​ャリブレータ( 例えば、CK-MBとcTnIの)との間に交差反応性の量を評価するために、個々の検出抗体でプローブ未満であった。交差反応性は、3プレックスアッセイで低かった。 より大きい数字を表示するには、ここをクリックしてください

図5 "のfo:コンテンツ幅=" 3インチ "のfo:srcは=" / "SRC =" / files/ftp_upload/50786/50786fig5.jpg "をfiles/ftp_upload/50786/50786fig5highres.jpg />
図5。 MIの血清および3プレックスアッセイで測定し、対照被験者におけるバイオマーカーのレベルは。cMyBP-C、CK-MB、およびcTnIののレベルは16、対照被験者とMIの16被験者の血清サンプルにおける3プレックスアッセイにより同時に測定した。データは、ボックスとウィスカープロット(ウィスカが10 番目と90 番目のパーセンタイル値を表す)で表示されます。すべての3つのバイオマーカーのレベルの増加は、対照群と比較MIを有する被験者の血清中で観察された。データが正規分布(ダゴスティーノピアソンオムニバスによってテスト)表示されませんでしたので、ノンパラメトリックマンホイットニー統計テストは制御およびMI群間の差をテストするために使用されていました。#P <0.001

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Discussion

本研究では、患者からの血清中の複数の心臓のバイオマーカーの検出のためのマルチプレックスイムノアッセイの適用可能性を示しています。この技術は、伝統的なELISA比べて数多くの利点を有する。まず、アッセイキットでECLを比色検出の代わりに使用されている。 ECLにおいて、電気信号は、このような背景14を減少させる信号から刺激イベントを切り離す、測定された特性(光)の現地生産を刺激する。これは、 表2に見られるように、高感度を可能にする。

アッセイを多重化すると、 図2及び表2に見られるように、cMyBP-Cを検出するための感度の損失をもたらさない。 uniplexで測定cMyBP-Cは、CK-MBとcTnIの13で同時に測定cMyBP-Cに匹敵する感度と検出範囲を示した。同時測定は、実質的measuremenに必要な試料の量を減らす希少生物試料と同様、複数uniplexアッセイを実行に費やす時間を減らすことで作業する際の重要な要因となりうるTS、。

任意のイムノアッセイと同様に、使用されるアッセイは、抗体の品質に大きく依存する。捕捉および検出抗体の親和性、特異性、親和性とは、アッセイの感度は15の主要な決定要因である。異なる抗体ペアは最高の感度とダイナミックレンジを与え捕捉および検出抗体のどの組み合わせを参照しようとしなければならない。多重化技術を使用する場合は、捕捉抗体はよく上のスポット被覆する必要がある。これは、低容積は、高濃度の溶液をuniplexアッセイにおいて又は従来のELISAにおいて使用される溶液コーティングとは対照的に、ウェルの一部( 図1参照)上にスポットされることを意味する。それは溶液塗布して行うように捕捉抗体は、スポットコーティングで同様に実行する場合には、評価すべきである。の交差反応性他の抗体のペアを有する抗体またはキャリブレータも偽陽性の結果2,15を生じさせることができる。

この研究では、カスタムメイドの多重板はMSDと協力して設計されました。プレコート多重プレートの範囲は、市販されているが、小説(cMyBP-C)ターゲットは以前に最適化されたカタログアッセイ(CK-MBとcTnIの)と多重化されたため、この特定の技術革新は、アッセイの最適化を必要とした。このように、この方法の明らかな欠点は、特殊なプレートリーダーとECL信号を検出するための電極を含有するプレートを添加するための要件である。複数uniplexアッセイ対1のマルチプレックスアッセイを実行すると、全体的なコストを削減しますが、プレートリーダーは、最初2を購入する必要があります。

3 - プレックスイムノアッセイを用いcMyBP-C、CK-MB、およびcTnIのバイオマーカーの放出のレベルがMIの被験者で測定し、対照群と比較した。目の上の増加の倍の変化電子制御グループは、MI群では変化しました、( 図4を参照)3バイオマーカーとの間で異なっていた。そう循環における心臓タンパク質およびその後の劣化の放出に寄与する採血、梗塞の大きさ、ならびに他の要因のホストのタイミングとバイオマーカーレベルの変化が、MI患者のコレクションに期待されている。個々のバイオマーカーのレベルは、このような梗塞サイズなどの臨床パラメータと相関するかどうか、ワラントさらなる研究。

MIを検出するために、緊急治療室で使用するために直接これらの調査結果を翻訳すると、克服すべき課題の番号が必要です。そのうち総理は、プロトコルがさえプレコートプレートで3½時間を要する結果を生成するのにかかる時間です。今日使用トロポニンアッセイと同様に、アッセイは迅速な診断を可能にし、迅速に検出するために最適化されるべきである。

結論として、我々は2つ​​に知られている署名アッセイを開発したnは心臓のバイオマーカーとつの潜在的な心臓バイオマーカー、cMyBP-Cは、同時に心臓タンパク質の血清力価を定量することによって心筋梗塞の患者において心筋障害の存在を検出することが実証された。

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Disclosures

人間の体液にcMyBP-Cの劣化やリリースに関連するリスク要因を決定するために:完全特許出願(05/04/12。出願番号464分の13、466、パブ号米国2012/0282618 A1と日付)保留されているおよびヒト体液中cMyBP-Cのレベルを定量する。

Acknowledgments

11PRE7240022(氏Barefield)と13POST14720024(博士ゴヴィンダン)、本研究では、健康補助R01HL105826とK02HL114749(博士Sadayappan)とアメリカ心臓協会中西部フェローシップの国立研究所によって資金を供給された。作者は感謝してアッセイを開発する上で、その優れた技術とサポートのための文学博士のジミー·ペイジ、ジルClampitとドクタージョンハドソン、MSD、の支援を認める。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Reagents
MSD Read-Buffer T (4X) with surfactant Meso Scale Discovery R92TC-2  
Tween-20 Acros 9005-64-5  
MSD Blocker A Meso Scale Discovery R93BA-1  
Phosphate buffered saline, 10X Fisher BioReagents BP399-4 Filter before use
Myosin binding protein C antibody, mouse monoclonal (E7), gelatin free Santa Cruz SC-137180L For coating, antibody has to be gelatin free
Plates and Equipment
Multi-Array 96-well standard plate Meso Scale Discovery L15XA-3  
A prototype 3-plex, four-spot, 96-well plate with cMyBP-C, cTnI and CK-MB Meso Scale Discovery N452A-1  
ThermaSeal Sealing Film Life Science Products Inc. ST-3098  
MSD SECTOR Imager 2400A Meso Scale Discovery  
MTS 2/4 digital microtiter shaker IKA 3208001  

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References

  1. Thygesen, K., et al. Third universal definition of myocardial infarction. Eur. Heart J. 33, 2551-2567 (2012).
  2. Leng, S. X., et al. ELISA and multiplex technologies for cytokine measurement in inflammation and aging research. J. Gerontol. A. Biol. Sci. Med. Sci. 63, 879-884 (2008).
  3. Thompson, I., et al. Competitive electrochemiluminescence wash and no-wash immunoassays for detection of serum antibodies to smooth Brucella strains. Clin. Vaccine Immunol. 16, 765-771 (2009).
  4. Kingsmore, S. F. Multiplexed protein measurement: technologies and applications of protein and antibody arrays. Nat. Rev. Drug. Discov. 5, 310-320 (2006).
  5. Altan, Z. M., et al. A long-acting tumor necrosis factor alpha-binding protein demonstrates activity in both in vitro and in vivo models of endometriosis. J. Pharmacol. Exp. Ther. 334, 460-466 (2010).
  6. Patel, K. D., et al. High sensitivity cytokine detection in acute coronary syndrome reveals up-regulation of interferon gamma and interleukin-10 post myocardial infarction. Clin. Immunol. 133, 251-256 (2009).
  7. Fu, Q., Zhu, J., Van Eyk, J. E. Comparison of multiplex immunoassay platforms. Clin. Chem. 56, 314-318 (2010).
  8. Mahajan, V. S., Jarolim, P. How to interpret elevated cardiac troponin levels. Circulation. 124, 2350-2354 (2011).
  9. Govindan, S., et al. Cardiac myosin binding protein-C is a potential diagnostic biomarker for myocardial infarction. J. Mol. Cell Cardiol. 52, 154-164 (2012).
  10. Barefield, D., Sadayappan, S. Phosphorylation and function of cardiac myosin binding protein-C in health and disease. J. Mol. Cell Cardiol. 48, 866-875 (2010).
  11. Kuster, D. W., et al. Cardiac myosin binding protein C phosphorylation in cardiac disease. J. Muscle Res. Cell Motil. 33, 43-52 (2012).
  12. Sadayappan, S., de Tombe, P. P. Cardiac myosin binding protein-C: redefining its structure and function. Biophys. Rev. 4, 93-106 (2012).
  13. Sadayappan, S. Cardiac myosin binding protein-C: a potential early-stage, cardiac-specific biomarker of ischemia-reperfusion injury. Biomark Med. 6, 69-72 (2012).
  14. Fichorova, R. N., et al. Biological and technical variables affecting immunoassay recovery of cytokines from human serum and simulated vaginal fluid: a multicenter study. Anal. Chem. 80, 4741-4751 (2008).
  15. Malekzadeh, A., et al. Challenges in multi-plex and mono-plex platforms for the discovery of inflammatory profiles in neurodegenerative diseases. Methods. 56, 508-513 (2012).

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分子生物学、発行78、細胞生物学、生化学、遺伝学、医用生体工学、医学、心臓病、心疾患、心筋虚血、心筋梗塞、心血管疾患、心血管疾患、免疫測定法、心筋ミオシン結合タンパク質C、心筋トロポニンI、クレアチンキナーゼMB、電気化学発光、マルチプレックスバイオマーカー、ELISA、アッセイ
電気化学発光免疫測定法により血清心臓ミオシン結合タンパク質-Cの定量のための高感度で特異的な定量法
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Cite this Article

Kuster, D. W. D., Barefield, D.,More

Kuster, D. W. D., Barefield, D., Govindan, S., Sadayappan, S. A Sensitive and Specific Quantitation Method for Determination of Serum Cardiac Myosin Binding Protein-C by Electrochemiluminescence Immunoassay. J. Vis. Exp. (78), e50786, doi:10.3791/50786 (2013).

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